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Artículo de método

Ultracentrifugación de gradiente de densidad para investigar el reciclaje endocítico en células de mamíferos

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DOI:

10.3791/62621

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30 de junio de 2021

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En este artículo

Resumen

Este artículo tiene como objetivo presentar un protocolo para la preparación de endosomas de reciclaje de células de mamíferos utilizando ultracentrifugación por gradiente de densidad de sacarosa.

Resumen

El tráfico endosomal es un proceso celular esencial que regula una amplia gama de eventos biológicos. Las proteínas se internalizan desde la membrana plasmática y luego se transportan a los endosomas tempranos. Las proteínas internalizadas podrían ser transitadas al lisosoma para su degradación o recicladas de vuelta a la membrana plasmática. Se requiere una vía de reciclaje endocítica robusta para equilibrar la eliminación de materiales de membrana de la endocitosis. Se informa que varias proteínas regulan la vía, incluido el factor de ribosilación ADP 6 (ARF6). La ultracentrifugación por gradiente de densidad es un método clásico para el fraccionamiento celular. Después de la centrifugación, los orgánulos se sedimentan en su superficie isopícnica. Las fracciones se recogen y se utilizan para otras aplicaciones posteriores. Aquí se describe un protocolo para obtener una fracción de reciclaje que contiene endosomas de células de mamíferos transfectadas utilizando ultracentrifugación por gradiente de densidad. Las fracciones aisladas fueron sometidas a Western blotting estándar para analizar su contenido proteico. Al emplear este método, identificamos que la orientación de la membrana plasmática de la envoltura y la motilidad celular 1 (ELMO1), un sustrato de toxina botulínica C3 relacionada con Ras 1 (Rac1) factor de intercambio de nucleótidos de guanina, es a través del reciclaje endocítico mediado por ARF6.

Introducción

El tráfico endosomal es un proceso fisiológico esencial que implica diversos eventos biológicos1,por ejemplo, el transporte de receptores de señalización, canales iónicos y moléculas de adhesión. Las proteínas localizadas en la membrana plasmática se internalizan porendocitosis 2. Las proteínas internalizadas se clasifican por el endosoma temprano3. Algunas de las proteínas están dirigidas a los lisosomas para su degradación4. Sin embargo, una cantidad significativa de proteínas se reciclan de vuelta a la superficie celular mediante procesos de reciclaje rápido y reciclaje ....

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Protocolo

1. Cultivo y transfección de células de mamíferos

  1. Placa 2 x 106 celdas en una placa de cultivo de 100 mm. Use cuatro platos para cada transfección.
    NOTA: El número de celdas necesarias puede variar para diferentes líneas celulares. La optimización puede ser necesaria antes de proceder al paso de aislamiento.
  2. Al día siguiente, transfecte las células con lipofectamina de acuerdo con las instrucciones del fabricante.

2. Cosecha de células

  1. Desechar el medio de cultivo 48 h después de la transfección.
  2. Lave las células con PBS helado (fosfatos de sodio de 10 mM, cloruro de potasio de 2,6....

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Resultados

Después de fraccionar las células HEK293 no transfectadas por ultracentrifugación por gradiente de densidad, se recolectaron 12 fracciones a partir de la parte superior del gradiente. Las fracciones cosechadas se diluyeron con el tampón de dilución en una proporción de 1:1 y se sometieron a una segunda ronda de centrifugación. Las muestras se sometieron a western blotting para analizar su contenido de proteínas. Como se muestra en la Figura 1,el marcador de endosoma de reciclaje Rab11 se det.......

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Discusión

El protocolo anterior describe los procedimientos para aislar el reciclaje de endosomas de células cultivadas por ultracentrifugación. La fiabilidad de este método ha sido demostrada por la última publicación22,demostrando que el reciclaje de endosomas se aísla con éxito de otros orgánulos(Figura 1),como el aparato de Golgi y las mitocondrias. Se debe prestar atención a algunos pasos críticos para obtener un buen resultado de separación. Al preparar las soluciones de .......

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Divulgaciones

Los autores declaran que no tienen conflictos de intereses con el contenido de este artículo.

Agradecimientos

Este trabajo fue apoyado por fondos del Consejo de Becas de Investigación de Hong Kong, el esquema de subvenciones directas de CUHK, el fondo de dotación de United College y el TUYF Charitable Trust. Las figuras de este trabajo fueron adaptadas de nuestra publicación anterior, "ARF6-Rac1 signaling-mediated neurite outgrowth is potentiated by the neuronal adaptor FE65 through orchestrating ARF6 and ELMO1" publicado en faseb Journal en octubre de 2020.

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
1 mL, tubo de polipropileno de pared gruesa abierto, 11 x 34 mmBeckman Coulter347287
plato de cultivo de tejidos de 100 mmSPL20100
13,2 mL, Tubo ultratransparente de pared delgada abierto libre certificado, 14 x 89 mmBeckman CoulterC14277
5x Tampón de muestrasGenScriptMB01015
cOmplete, cóctel de inhibidores de proteasa sin EDTARoche11873580001
COX IV (3E11) Tecnologíade señalización de célulasde conejo 4850SAnticuerpo monoclonal de conejo para la detección de COX IV.
CicloheximidaSigma-AldrichC1988
Dounce Tissue Grinder, 7 mLDWK Life Sciences357542
Dulbecco's Modified Eagle Medium (DMEM) con baja glucosaHyCloneSH30021.01 ELMO1
anticuerpo (B-7)Santa Cruz BiotechnologySC-271519Anticuerpo monoclonal de ratón para la detección de ELMO1.
EndoFree Plasmid Maxi KitQIAGEN12362
FE65 anticuerpo (E-20)Santa Cruz BiotechnologySC-19751Anticuerpo policlonal de cabra para la detección de FE65.
Suero fetal bovino, grado de investigaciónHyCloneSV30160.03
GAPDH Anticuerpo monoclonal (6C5)AmbionAM4300Anticuerpo monoclonal de ratón para la detección de GAPDH.
ImageLab SoftwareBio-RadMedición de la intensidad de la banda
ImidazolSigma-AldrichI2399
Lipofectamina 2000 Reactivo de transfecciónInvitrogen11668019
Anticuerpo monoclonal anti-β-COPSigmaG6160Anticuerpo monoclonal de ratón para la detección de β-COP.
Myc-tag (9B11) mAbcell Signaling Technology2276SAnticuerpo monoclonal de ratón para la detección de proteínas marcadas con myc.
OmniPur EDTA, Sal disódica, DihidratadoCalbiochem4010-OP
Optima L-100 XPBeckman Coulter392050
Optima MAX-TLBeckman CoulterA95761
Opti-MEM I Medios de suero reducidosGibco31985070
PBS ComprimidosGibco18912014
PhosSTOPRoche
Anticuerpo policlonal específico de RAB11AProteintech20229-1-APAnticuerpo policlonal de conejo para la detección de Rab11.
SacarosaAffymetrixAAJ21931A4
SW 41 Ti Rotor de cuchara oscilanteBeckman Coulter331362
TLA-120.2 Rotor de ángulo fijoBeckman Coulter362046
Trypsin-EDTA (0,05%), rojo fenolGibco25300062
mAb 4906845001

Referencias

  1. Elkin, S. R., Lakoduk, A. M., Schmid, S. L. Endocytic pathways and endosomal trafficking: a primer. Wiener Medizinische Wochenschrift. 166 (7-8), 196-204 (2016).
  2. Kumari, S., Mg, S., Mayor, S. Endocytosis unplugged: multiple ways to enter the cell. Cell Research.

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Reimpresiones y permisos

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