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Artículo de método

Medición de la composición del complejo de señalización inductor de muerte CD95 y procesamiento de la procaspasa-8 en este complejo

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DOI:

10.3791/62842

2 de agosto de 2021

En este artículo

Resumen

Aquí, se presenta un flujo de trabajo experimental que permite la detección del procesamiento de caspasa-8 directamente en el complejo de señalización inductor de muerte (DISC) y determina la composición de este complejo. Esta metodología tiene amplias aplicaciones, desde desentrañar los mecanismos moleculares de las vías de muerte celular hasta el modelado dinámico de las redes de apoptosis.

Resumen

La apoptosis extrínseca está mediada por la activación de receptores de muerte (DR) como CD95 / Fas / APO-1 o ligando inductor de apoptosis relacionado con el factor de necrosis tumoral (TRAIL) receptor 1 / receptor 2 (TRAIL-R1 / R2). La estimulación de estos receptores con sus ligandos cognados conduce al ensamblaje del complejo de señalización inductor de muerte (DISC). DISC comprende DR, la proteína adaptadora asociada a Fas con dominio de la muerte (FADD), procaspasas-8/-10 y proteínas inhibidoras de enzimas convertidoras de interleucina (IL)-1β similares a FADD celulares (c-FLP). El DISC sirve como plataforma para el procesamiento y la activación de la procaspasa-8. Este último ocurre a través de su dimerización/oligomerización en los filamentos del dominio efector de la muerte (DED) ensamblados en el DISC.

La activación de la procaspasa-8 es seguida por su procesamiento, que ocurre en varios pasos. En este trabajo se describe un flujo de trabajo experimental establecido que permite la medición de la formación de DISC y el procesamiento de la procaspasa-8 en este complejo. El flujo de trabajo se basa en técnicas de inmunoprecipitación apoyadas por el análisis de western blot. Este flujo de trabajo permite un seguimiento cuidadoso de los diferentes pasos del reclutamiento de la procaspasa-8 para el DISC y su procesamiento y es muy relevante para investigar los mecanismos moleculares de la apoptosis extrínseca.

Introducción

Uno de los receptores de muerte (DR) mejor estudiados es CD95 (Fas, APO-1). La vía apoptótica extrínseca comienza con la interacción de la DR con su ligando cognado, es decir, CD95L interactúa con CD95 o TRAIL se une a TRAIL-Rs. Esto da como resultado la formación del DISC en el DR. DISC correspondiente consiste en cd95, FADD, procaspasa-8/-10 y proteínas c-FLIP1,2. Además, el DISC se ensambla mediante interacciones entre proteínas que contienen dominio de muerte (DD), como CD95 y FADD, y proteínas que contienen DED como FADD, procaspasa-8/-10 y c-FLIP(Figura 1). La proca....

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Protocolo

Los experimentos con células T se realizaron de acuerdo con el acuerdo ético 42502-2-1273 Uni MD.

1. Preparación de células para el experimento

NOTA: El número promedio de células para esta inmunoprecipitación es de 1 × 107. Las células adherentes tienen que ser sembradas un día antes del experimento para que haya 1 × 107 células el día del experimento.

  1. Preparación de células adherentes para el experimento
    1. Sembra 5-8 × 106 células adherentes en 20 mL de medio (ver la Tabla de Materiales para la composición) para cada condición en plat....

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Resultados

Para analizar el reclutamiento de caspasa-8 para el DISC y su procesamiento en el DISC CD95, este documento describe un flujo de trabajo clásico, que combina IP del DISC CD95 con análisis de western blot. Esto permite la detección de varias características clave de la activación de la caspasa-8 en el DISC: el ensamblaje de la plataforma macromolecular activadora de la caspasa-8, el reclutamiento de procaspasa-8 en el DISC y el procesamiento de esta caspasa iniciadora(Figura 1 y

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Discusión

Este enfoque fue descrito por primera vez por Kischkel et al.27 y ha sido desarrollado con éxito desde entonces por varios grupos. Se deben considerar varias cuestiones importantes para la eficiencia de la inmunoprecipitación DISC y el monitoreo del procesamiento de la caspasa-8 en este complejo.

En primer lugar, es esencial seguir todos los pasos de lavado durante la inmunoprecipitación. Especialmente importantes son los pasos finales de lavado de las cuentas de sefalr.......

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Divulgaciones

Los autores no tienen conflictos de intereses que revelar.

Agradecimientos

Reconocemos a la Fundación Wilhelm Sander (2017.008.02), al Centro de Sistemas Dinámicos (CDS), financiado por el programa de la UE FEDER (Fondo Europeo de Desarrollo Regional) y al DFG (LA 2386) por apoyar nuestro trabajo. Agradecemos a Karina Guttek por apoyar nuestros experimentos. Reconocemos al Prof. Dirk Reinhold (OvGU, Magdeburgo) por proporcionarnos células T primarias.

....

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
12,5% Gel SDSautofabricadopara dos geles separadores:
3,28 mL destilado H2O
2,5 mL Tris; pH 8,8; 1,5 M
4,06 mL acrilamida
100 µ L 10% SDS
100 y micro; L 10% APS
7.5 y micro; L TEMED

para dos geles colectores:
3,1 mL de H2O
1,25 mL de Tris; pH 6,8; 1,5 M
0,5 mL de acrilamida
50 y micro; L 10% SDS
25 µ L 10% APS
7.5 y micro; L TEMED
Placas de celda de 14,5 cmGreiner639160
acrilamidaCarl RothA124.1
Puntas de pipeta con filtro de alta recuperación y orificio anchoVWR46620-664 (Norteamérica) o 732-0559 (Europa)Se utiliza para pipetear perlas en el lisado
antiactina AbSigma AldrichA2103dilución: 1:4000 en PBST + 1:100 NaN3
anti-APO-1 Abproporcionado en estos experimentos por el Prof. P. Krammer o puede ser comprado por EnzoALX-805-038-C100utilizado solo para la inmunoprecipitación
anti-caspasa-10Ab Biozol BiozolMBL-M059-3dilución: 1:1000 en PBST + 1:100 NaN3
3 Señalización9662 S: 1:2000 en PBST + 1:100 NaN3
anti-caspasa-8 Ab C15proporcionado en estos experimentos por el Prof. P. Krammer o puede ser comprado por ENZOALX-804-242-C100dilución: 1:20 en PBST + 1:100 NaN3
>anti-CD95 AbSanta Cruzsc-715dilución: 1:2000 en PBST + 1:100 NaN3
>anti-c-FLIP NF6 Abproporcionado en estos experimentos por el Prof. P. Krammer o puede ser comprado por ENZOALX-804-961-0100dilución: 1:10 en PBST + 1:100 NaN3
>anti-FADD 1C4 Abproporcionado en estos experimentos por el Prof. P. Krammer o puede ser comprado por ENZOADI-AAM-212-Edilución: 1:10 en PBST + 1:100 NaN3
>anti-PARP Abseñalización9542dilución: 1:1000 en PBST + 1:100 NaN3
APSCarl Roth9592.3
β-mercaptoetanolCarl Roth4227.2
Bradford solution
Protein Assay Dye Reagent Concentrate 450ml
Bio Rad500-0006utilizado de acuerdo con las instrucciones del fabricante
CD95Lproporcionado en estos experimentos por el Prof. P. Krammer o puede ser comprado por ENZOALX-522-020-C005
detector de quimioluminiscencia
Chem Doc XRS+
Bio Rad
cCóctel completo de inhibidores de protesa (PIC)Sigma Aldrich11 836 145 001preparado según las instrucciones del fabricante
DPBS (10x) sin Ca, MgPAN BiotechP04-53500dilución 1:10 con H2O, almacenamiento en la nevera
tampón de eletroforesisde fabricaciónpropia10x tampón de electroforesis:
60,6 g Tris
288 g glycine
20 g SDS
ad 2 L H2O
dilución 1:10 antes de usar
glicinaCarl Roth3908.3
Cabra Anti-Ratón IgG1 HRPSouthernBiotech1070-05dilución 1:10.000 en PBST + 5% leche
Cabra Anti-Ratón IgG2b HRPSouthernBiotech1090-05dilución 1:10.000 en PBST + 5% leche
Cabra Anti-Conejo IgG-HRPSouthernBiotech4030-05dilución 1:10.000 en PBST + 5% leche
Interleucina-2 Humana(hIL-2)Merckgroup/ Roche11011456001para la activación de células T
KClCarl Roth6781.2
KH2PO4Carl Roth3904.1
tampón de carga
4x Tampón de muestra Laemmli, 10 mL
Bio Rad161-0747preparado según las instrucciones del fabricante
Luminata Forte Western HRP sustratoMilliporetampón
fabricaciónpropia13,3 mL Tris-HCl; pH 7,4; 1,5 M
27,5 mL de NaCl; 5 M
10 mL de EDTA; 2 mM
100 mL Triton X-100
añadir 960 mL H2O
para células adusibles DMEM F12 (1:1) con glutamina estable,  2.438 g/LPAN BiotechP04-41154añadiendo 10% FCS, 1% Penicilina-Estreptomicina y 0,0001% Puromicina al
medio medio para linfocitos T primariosgibco de Life Technologie21875034añadiendo 10% FCS y 1% Penicilina-Estreptomicina al medio
leche en polvoCarl RothT145.4
Na2HPO4Carl RothP030.3
NaClCarl Roth3957.2
PBSTde fabricación20x PBST:
230 g NaCl
8 g KCl
56.8 g Na2HPO4
8 g KH2PO4
20 mL Tween-20
ad 2 L H2O
dilución 1:20 antes de usar
PBST + 5% de lechepropia50 g de leche en polvo + 1 L PBST
PHAThermo Fisher ScientificR30852801para la activación de las células T
Power Pac HCBio Rad
Precision Plus Protein Standard All BlueBio Rad161-0373uso entre 3-5 y micro; L
Proteína A Sepharose CL-4B perlasNovodirect/ Th.GeyerGE 17-0780-01perlas de resina de afinidad preparadas según las instrucciones del fabricante
raspadorVWR734-2602
SDSCarl Roth4360.2
agitadorHeidolph
azida sódicaCarl RothK305.1
TEMEDCarl Roth2367.3
Trans Blot Turbo pilas de transferencia de tamaño miniBio Rad170-4270usado de acuerdo con las instrucciones del fabricante
TransBlot Turbo 5x Tampón de transferenciaBio Rad10026938preparado de acuerdo con las instrucciones del fabricante
TransBlot Turbo Membrana de nictrocelulosa de tamaño miniBio Rad170-4270utilizado según las instrucciones del fabricante
Trans-Blot-TurboBio Rad
TrisChem Solute8,08,51,000
Triton X-100Carl Roth3051.4
Tween-20Pan Reac Appli ChemA4974,1000
de células Ab de lisis WBLUFO500 de propia

Referencias

  1. Lavrik, I. N., Krammer, P. H. Regulation of CD95/Fas signaling at the DISC. Cell Death and Differentiation. 19 (1), 36-41 (2012).
  2. Krammer, P. H., Arnold, R., Lavrik, I. N. Life and death in peripheral T cells. Nature Reviews Immunology. 7 (7), 532-542 (2007).
  3. Dicke....

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Reimpresiones y permisos

Etiquetas

Procesamiento de la procaspasa-8formación del DISC de CD95apoptosis extrínsecatécnica de inmunoprecipitaciónWestern blotactivación de la caspasa-8reclutamiento de FADDproteínas c-FLIPensayo de actividad de la caspasa-8