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Artículo de método

Obtención de imágenes de ca2+ mitocondrial en astrocitos y neuronas utilizando indicadores de Ca2+ codificados genéticamente (GECI)

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DOI:

10.3791/62917

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22 de enero de 2022

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En este artículo

Resumen

Este proctocol tiene como objetivo proporcionar un método para imágenes de Ca2+ mitocondrial in vitro e in vivo en astrocitos y neuronas.

Resumen

El Ca2+ mitocondrial desempeña un papel fundamental en el control de la amortiguación citosólica del Ca2+, el metabolismo energético y la transducción de señales celulares. La sobrecarga de Ca2+ mitocondrial contribuye a diversas afecciones patológicas, incluida la neurodegeneración y la muerte celular apoptótica en enfermedades neurológicas. Aquí presentamos un enfoque molecular específico de tipo celular y dirigido a mitocondrias para imágenes mitocondriales de Ca2+ en astrocitos y neuronas in vitro e in vivo. Construimos plásmidos de ADN que codifican indicadores de Ca2+ codificados genéticamente (GECI) GCaMP5G o GCaMP6s (GCaMP5G/6s) dirigidos a mitocondrias con promotores específicos de astrocitos y neuronas gfaABC1D y CaMKII y secuencia dirigida a mitocondrias (mito-). Para las imágenes mitocondriales in vitro de Ca2+, los plásmidos se transfectaron en astrocitos y neuronas cultivados para expresar GCaMP5G/6s. Para las imágenes mitocondriales in vivo de Ca2+, se prepararon vectores virales adenoasociados (AVA) e inyectaron en los cerebros de los ratones para expresar GCaMP5G/6s en mitocondrias en astrocitos y neuronas. Nuestro enfoque proporciona un medio útil para obtener imágenes de la dinámica mitocondrial de Ca2 + en astrocitos y neuronas para estudiar la relación entre la señalización citosólica y mitocondrial de Ca2 +, así como las interacciones astrocito-neurona.

Introducción

Las mitocondrias son orgánulos subcelulares dinámicos y se consideran como las centrales eléctricas celulares para la producción de energía. Por otro lado, las mitocondrias pueden absorber Ca2+ a la matriz en respuesta a las elevaciones locales o citosólicas de Ca2+. La absorción mitocondrial de Ca2+ afecta la función mitocondrial, incluidos los procesos metabólicos como las reacciones en el ciclo del ácido tricarboxílico (TCA) y la fosforilación oxidativa, y regula las proteínas sensibles al Ca2+en condiciones fisiológicas1,2,3

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Protocolo

Los procedimientos que involucran animales han sido aprobados por el Comité Institucional de Cuidado y Uso de Animales (IACUC) de la Universidad de Missouri-Columbia.

1. Construcción de plásmidos de ADN

NOTA: Para imágenes in vitro e in vivo, se construyen plásmidos de ADN que codifican GCaMP5G/6s con promotores específicos de astrocitos y neuronas y secuencias de orientación mitocondrial.

  1. Insertar la secuencia dirigida a la matriz mitocondrial (MM) (mito-) ATGT CCGTCCTGAC GCCGCTGCTG CTGCGGGGCT TGACAGGCTC GGCCCGGCGG CTCCCAGTGC CGCGCGCCAA GATCCATTCG TTG

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Resultados

El objetivo de este estudio fue proporcionar una metodología para obtener imágenes de señales mitocondriales de Ca2+ utilizando GECI en astrocitos y neuronas in vitro e in vivo. Aquí se presentan los resultados de las imágenes mitocondriales de Ca2+ in vitro e in vivo.

Señalización in vitro mitocondrial de Ca2+ en astrocitos y neuronas cultivadas

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Discusión

En este artículo, proporcionamos un método y protocolo para obtener imágenes de señales mitocondriales de Ca2 + en astrocitos y neuronas. Implementamos estrategias específicas de mitocondrias y tipo de célula para expresar GECI GCaMP5G/6s. Para dirigirnos a GCaMP5G/6s en mitocondrias, incluimos una secuencia dirigida a mitocondrias en los plásmidos. Para expresar GCaMP5G/6s en astrocitos y neuronas in vivo,insertamos un promotor específico de astrocitos gfaABC1D y un promotor específico de neuronas Ca.......

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Divulgaciones

Los autores no tienen nada que revelar.

Agradecimientos

Este trabajo fue apoyado por el Instituto Nacional de Salud Del Instituto Nacional de Trastornos Neurológicos y Accidentes Cerebrovasculares (NINDS) otorga R01NS069726 y R01NS094539 a SD. Agradecemos a Erica DeMers por la grabación de audio.

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Pomada de lágrimas artificialesRugbyNDC-0536-6550-9183% vaselina blanca
Pegamento de cianoacrilatoWorld Precision Instruments3M Vetbond Adhesivo
Microscopio estereoscópico de disecciónNikonSMZ 2BSurgery
Pinzas Dumont con punta finaFine Science Tools11255-20para la extracción de
duramadre Deslizamientos de cubierta de vidrio, 0,13-0,17 mm de espesorFisher Scientific12-542Apara cubierta de ventana craneal
Microtaladro de alta velocidadFine Science Tools18000-17con broca para pulir huesos
Jeringa de inyecciónHamilton2,5 mlpara inyección viral
KetaminaVEDCONDC-50989-996-06100 mg/kg de peso corporal
Agarosa de bajo punto de fusiónSigma-AldrichA9793Artefactos de movimiento reductor Estructura
metálicaHecho a medidaver Fig. 1para la fijación del cerebro a la etapa del microscopio
Controlador de bomba de microjeringaWorld Precision InstrumentsUMP3Controlador de velocidad de inyección
Dispositivo estereotáxico de ratónStoelting51725para sujetar ratones
Cámara de perfusiónWarner Instruments64-0284
Sistema de perfusiónALA Scientific InstrumentsALA-VM8
Almohadilla térmica autorregulableFine Science Tools21061para prevenir la hipotermia de ratones
Sulforhodamina 101InvitrogenS-359colorante fluorescente rojo para marcar astrocitos
Tijeras quirúrgicas, 12 cmFine Science Tools14002-12para disección
TrephineFine Science Tools18004-23para la limpieza de material
XilacinaVEDCONDC-50989-234-1110 mg/kg de peso corporal

Referencias

  1. Griffiths, E. J., Rutter, G. A. Mitochondrial calcium as a key regulator of mitochondrial ATP production in mammalian cells. Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Bioenergetics. 1787 (11), 1324-1333 (2009).
  2. Pizzo, P., Drago, I., Filadi, R., Pozzan, T.

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Reimpresiones y permisos

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