Este proctocol tiene como objetivo proporcionar un método para imágenes de Ca2+ mitocondrial in vitro e in vivo en astrocitos y neuronas.
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Artículo de método
Este proctocol tiene como objetivo proporcionar un método para imágenes de Ca2+ mitocondrial in vitro e in vivo en astrocitos y neuronas.
El Ca2+ mitocondrial desempeña un papel fundamental en el control de la amortiguación citosólica del Ca2+, el metabolismo energético y la transducción de señales celulares. La sobrecarga de Ca2+ mitocondrial contribuye a diversas afecciones patológicas, incluida la neurodegeneración y la muerte celular apoptótica en enfermedades neurológicas. Aquí presentamos un enfoque molecular específico de tipo celular y dirigido a mitocondrias para imágenes mitocondriales de Ca2+ en astrocitos y neuronas in vitro e in vivo. Construimos plásmidos de ADN que codifican indicadores de Ca2+ codificados genéticamente (GECI) GCaMP5G o GCaMP6s (GCaMP5G/6s) dirigidos a mitocondrias con promotores específicos de astrocitos y neuronas gfaABC1D y CaMKII y secuencia dirigida a mitocondrias (mito-). Para las imágenes mitocondriales in vitro de Ca2+, los plásmidos se transfectaron en astrocitos y neuronas cultivados para expresar GCaMP5G/6s. Para las imágenes mitocondriales in vivo de Ca2+, se prepararon vectores virales adenoasociados (AVA) e inyectaron en los cerebros de los ratones para expresar GCaMP5G/6s en mitocondrias en astrocitos y neuronas. Nuestro enfoque proporciona un medio útil para obtener imágenes de la dinámica mitocondrial de Ca2 + en astrocitos y neuronas para estudiar la relación entre la señalización citosólica y mitocondrial de Ca2 +, así como las interacciones astrocito-neurona.
Las mitocondrias son orgánulos subcelulares dinámicos y se consideran como las centrales eléctricas celulares para la producción de energía. Por otro lado, las mitocondrias pueden absorber Ca2+ a la matriz en respuesta a las elevaciones locales o citosólicas de Ca2+. La absorción mitocondrial de Ca2+ afecta la función mitocondrial, incluidos los procesos metabólicos como las reacciones en el ciclo del ácido tricarboxílico (TCA) y la fosforilación oxidativa, y regula las proteínas sensibles al Ca2+en condiciones fisiológicas1,2,3
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Los procedimientos que involucran animales han sido aprobados por el Comité Institucional de Cuidado y Uso de Animales (IACUC) de la Universidad de Missouri-Columbia.
1. Construcción de plásmidos de ADN
NOTA: Para imágenes in vitro e in vivo, se construyen plásmidos de ADN que codifican GCaMP5G/6s con promotores específicos de astrocitos y neuronas y secuencias de orientación mitocondrial.
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El objetivo de este estudio fue proporcionar una metodología para obtener imágenes de señales mitocondriales de Ca2+ utilizando GECI en astrocitos y neuronas in vitro e in vivo. Aquí se presentan los resultados de las imágenes mitocondriales de Ca2+ in vitro e in vivo.
Señalización in vitro mitocondrial de Ca2+ en astrocitos y neuronas cultivadas
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En este artículo, proporcionamos un método y protocolo para obtener imágenes de señales mitocondriales de Ca2 + en astrocitos y neuronas. Implementamos estrategias específicas de mitocondrias y tipo de célula para expresar GECI GCaMP5G/6s. Para dirigirnos a GCaMP5G/6s en mitocondrias, incluimos una secuencia dirigida a mitocondrias en los plásmidos. Para expresar GCaMP5G/6s en astrocitos y neuronas in vivo,insertamos un promotor específico de astrocitos gfaABC1D y un promotor específico de neuronas Ca.......
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Los autores no tienen nada que revelar.
Este trabajo fue apoyado por el Instituto Nacional de Salud Del Instituto Nacional de Trastornos Neurológicos y Accidentes Cerebrovasculares (NINDS) otorga R01NS069726 y R01NS094539 a SD. Agradecemos a Erica DeMers por la grabación de audio.
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| Nombre | Empresa | Número de catálogo | Comentarios |
|---|---|---|---|
| Pomada de lágrimas artificiales | Rugby | NDC-0536-6550-91 | 83% vaselina blanca |
| Pegamento de cianoacrilato | World Precision Instruments | 3M Vetbond Adhesivo | |
| Microscopio estereoscópico de disección | Nikon | SMZ 2B | Surgery |
| Pinzas Dumont con punta fina | Fine Science Tools | 11255-20 | para la extracción de |
| duramadre Deslizamientos de cubierta de vidrio, 0,13-0,17 mm de espesor | Fisher Scientific | 12-542A | para cubierta de ventana craneal |
| Microtaladro de alta velocidad | Fine Science Tools | 18000-17 | con broca para pulir huesos |
| Jeringa de inyección | Hamilton | 2,5 ml | para inyección viral |
| Ketamina | VEDCO | NDC-50989-996-06 | 100 mg/kg de peso corporal |
| Agarosa de bajo punto de fusión | Sigma-Aldrich | A9793 | Artefactos de movimiento reductor Estructura |
| metálica | Hecho a medida | ver Fig. 1 | para la fijación del cerebro a la etapa del microscopio |
| Controlador de bomba de microjeringa | World Precision Instruments | UMP3 | Controlador de velocidad de inyección |
| Dispositivo estereotáxico de ratón | Stoelting | 51725 | para sujetar ratones |
| Cámara de perfusión | Warner Instruments | 64-0284 | |
| Sistema de perfusión | ALA Scientific Instruments | ALA-VM8 | |
| Almohadilla térmica autorregulable | Fine Science Tools | 21061 | para prevenir la hipotermia de ratones |
| Sulforhodamina 101 | Invitrogen | S-359 | colorante fluorescente rojo para marcar astrocitos |
| Tijeras quirúrgicas, 12 cm | Fine Science Tools | 14002-12 | para disección |
| Trephine | Fine Science Tools | 18004-23 | para la limpieza de material |
| Xilacina | VEDCO | NDC-50989-234-11 | 10 mg/kg de peso corporal |
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