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Artículo de método

Ensayo de uracilo-ADN glicosilasa mediante desorción láser asistida por matriz/análisis de espectrometría de masas de tiempo de vuelo

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DOI:

10.3791/63089

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22 de abril de 2022

* These authors contributed equally

En este artículo

Resumen

Se desarrolló un método no radioisotópico no marcado para evaluar la actividad de la uracilo-ADN glicosilasa utilizando la espectrometría de masas MALDI-TOF para el análisis directo de productos que contienen sitios apurínicos/apirimidínicos. El ensayo demostró ser bastante simple, específico, rápido y fácil de usar para la medición de la GLICosilasa de ADN.

Resumen

La uracilo-ADN glicosilasa (UDG) es un componente clave en la vía de reparación de la escisión de base para la corrección del uracilo formado por la desaminación hidrolítica de la citosina. Por lo tanto, es crucial para el mantenimiento de la integridad del genoma. Se desarrolló un método altamente específico, no etiquetado, no radioisotópico para medir la actividad de UDG. Un dúplex de ADN sintético que contenía un uracilo específico del sitio fue escindido por UDG y luego sometido a un análisis de espectrometría de masas de tiempo de vuelo asistido por láser / ionización asistido por matrix (MALDI-TOF MS). Se estableció un protocolo para preservar el producto del sitio apurínico/apirimidínico (AP) en el ADN sin rotura de hebra. El cambio en el valor m/z del sustrato al producto se utilizó para evaluar la hidrólisis de uracilo por UDG. Se utilizó un sustrato G:U para el análisis cinético UDG que arrojó el Km = 50 nM, Vmax = 0.98 nM/s y Kcat = 9.31 s-1. La aplicación de este método a un ensayo de inhibidor de la uraciloglicosasa (UGI) arrojó un valor de IC50 de 7,6 pM. La especificidad de UDG utilizando uracilo en varias posiciones dentro de sustratos de ADN de cadena simple y doble cadena demostró diferentes eficiencias de escisión. Por lo tanto, este método SIMPLE, rápido y versátil MALDI-TOF MS podría ser un excelente método de referencia para varias glucosilasas de ADN monofuncionales. También tiene el potencial como una herramienta para la detección de inhibidores de la GLUCosilasa de ADN.

Introducción

Aunque el uracilo es una base normal en el ARN, es una lesión común y altamente mutagénica en el ADN genómico. El uracilo puede surgir de la desaminación hidrolítica espontánea/enzimática de una desoxicitidina. En cada célula viva, esta desaminación ocurre 100-500 veces al día en condiciones fisiológicas1,2. Si estas alteraciones no se reparan, puede haber un cambio en la composición de la secuencia de ADN, causando mutación. Como el uracilo en el ADN prefiere emparejarse con dATP durante la replicación, si la citosina se desamina a uracilo, en dos eventos de replicación, habrá una nueva mutación de transición....

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Protocolo

1. Preparación de sustrato/plantilla

  1. Diseñe sustrato de uracilo / dúplex de plantilla con un contenido equilibrado de G + C de ~ 50 ± 10% y una temperatura de fusión mínima de 50 ° C para la región dúplex.
    NOTA: Una diferencia de nucleótidos entre sustratos de 18 nt y plantillas de 19 nt (Tabla 1 y Figura 1) ayuda a una mejor interpretación de la señal de EM y al recocido apropiado. La hebra de plantilla sirve como ADN complementario para generar desajustes A-U o G-U (Tabla 1), pero también se puede utilizar como señal de referencia en las mediciones de EM. El uso de oligonuc....

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Resultados

Plantillas y sustratos
Tomando como ejemplo los oligonucleótidos sintéticos con U en el centro (U+9) emparejados con una plantilla G (Figura 1A), se puede utilizar un control en blanco de las cantidades equimolares de plantilla y sustrato que contiene uracilo para el control de calidad de la pureza de los oligonucleótidos sintéticos (Figura 1B; las señales coinciden con el m/z designado y el bajo ruido de fondo). Para el análisis de los datos.......

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Discusión

Este documento proporciona un procedimiento detallado para el uso de un método de ensayo UDG MALDI-TOF MS para detectar directamente productos de ADN que contienen AP. Las principales ventajas de este método son que los sustratos que contienen uracilo no contienen etiquetas, son escalables, fáciles de trabajar y ofrecen una mayor flexibilidad en el diseño del sustrato.

La extracción de fenol/cloroformo recomendada por el proveedor de UDG permite la inactivación de la enzima para evitar la degr.......

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Divulgaciones

Los autores no tienen conflictos de intereses que revelar.

Agradecimientos

Agradecemos al NCFPB Integrated Core Facility for Functional Genomics (Taipei, Taiwán) y al Laboratorio de Farmacogenómica del NRPB (Taipei, Taiwán) por su apoyo técnico. Este trabajo fue apoyado por el Ministerio de Ciencia y Tecnología, Taiwán, R.O.C. [número de subvención MOST109-2314-B-002 -186 a K.-Y.S., MOST 107-2320-B-002-016-MY3 a S.-Y.C., MOST 110-2320-B-002-043 a W.-h.F.]. H.-L.C. ha recibido una beca de doctorado de la Universidad Nacional de Taiwán. Financiación para la tasa de acceso abierto: Ministerio de Ciencia y Tecnología, R.O.C.

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
2-Amino-2-hidroximetil-propano-1,3-diol (base Tris)J.T BakerProtocolo 1,2
Agua desionizada esterilizada en autoclaveMILLIPORE1,2
EDTAJ.T BakerProtocolo 1,2
GuantesAQUAGLOVEProtocolo 1,2,3
Ácido clorhídrico (HCl)Protocolo SIGMA1,2
Cubo de hieloTaiwan.IncProtocol 2
Puntas de pipeta de baja retención (0.5-10 y micro; L)Protocolo de gen1,2
Puntas de pipeta de baja retención (1,250 y micro; L)suministro científico nacional co, Inc.Protocolo 1,2
Puntas de pipeta de baja retención(200 µ L)suministro científico nacional co, Inc.Protocolo 1,2
MassARRAY  Losprogramas de control de espectrometría de masas Agena Bioscience, CA Protocol 4, 5
incluyen Typer Chip Linker, SpectroACQUIRE y Start RT Process.
Nanodispensador MassARRAYAAT Bioquest, Inc.Protocolo RS10003
MicrocentrífugaKubota2
MicrocentrífugaClubioProtocolo 2
Tubo de microcentrífuga (1,5 mL)National scientific supply co, Inc.Protocolo 2
Bastidor de tubos de microcentrífugaTaiwan.IncProtocolo 1,2
Micropipeta  (P1000)GilsonProtocol 1,2
  (P2)Gilson1,2
Micropipeta (P10)Gilson1,2
Micropipeta (P100)Gilson1,2
Micropipeta (P200)Gilson1,2
Micropipeta (SL2)Protocolo Rainin1,2
OligonucleótidosTecnologías integradas de ADN (Singapur)Protocolo 1,2
Calculadora Quest Graph IC50 (v.1)AAT Bioquest, Inc.Fig. 4
https://www.aatbio.com/tools/ic50-calculator-v1
Hidróxido de sodio (NaOH)WAKOProtocol 2
SpectroCHIP array  Agena Bioscience, CA# 01509Protocolo 3, 5
temporizadoresTaiwán.IncProtocolo 2
Typer 4.0 software  Agena Bioscience, CA#10145Protocol 6
Typer 4.0 consta de cuatro programas, que incluyen Assay Designer, Assay Editor, Plate Editor y Typer Analyzer.
Tampón de reacción UDG (10x)New England Biolabs, MAB0280SProtocolo 2
Inhibidor de la glicosilasa uraciloNew England Biolabs, MAM0281SProtocolo 2
Uracil-ADN glicosilasaNew England Biolabs, MAM0280LProtocolo 2
Espectrofotómetro UV-VISBLE UV-1601Protocolo SHIMADZU1
Baño de aguaZETA ZC-4000 ( Taiwán.Inc)Protocolo 2
Protocolo extra Protocolo Micropipeta Protocolo Protocolo Protocolo Protocolo

Referencias

  1. Frederico, L. A., Kunkel, T. A., Shaw, B. R. A sensitive genetic assay for the detection of cytosine deamination: determination of rate constants and the activation energy. Biochemistry. 29 (10), 2532-2537 (1990).
  2. Kavli, B., Otterlei, M., Slupphaug, G., Krokan, H. E.

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Reimpresiones y permisos

Etiquetas

Espectrometría de masas MALDI-TOFreparación por escisión de basesdetección de sitios APmecanismos de reparación del ADNhidrólisis de uracilocribado de inhibidores de la glicosilasadúplex de ADN sintéticoensayo de actividad enzimática