RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
Spanish
Menu
Menu
Menu
Menu
A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.
Research Article
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Erratum Notice
Important: There has been an erratum issued for this article. View Erratum Notice
Retraction Notice
The article Assisted Selection of Biomarkers by Linear Discriminant Analysis Effect Size (LEfSe) in Microbiome Data (10.3791/61715) has been retracted by the journal upon the authors' request due to a conflict regarding the data and methodology. View Retraction Notice
El presente protocolo describe la construcción de matrices de microelectrodos hechas a medida para registrar potenciales de campo locales in vivo de múltiples estructuras cerebrales simultáneamente.
Los investigadores a menudo necesitan registrar potenciales de campo locales (LFP) simultáneamente de varias estructuras cerebrales. La grabación desde múltiples regiones cerebrales deseadas requiere diferentes diseños de microelectrodos, pero las matrices de microelectrodos disponibles comercialmente a menudo no ofrecen tal flexibilidad. Aquí, el presente protocolo describe el diseño sencillo de matrices de microelectrodos hechas a medida para registrar LFP de múltiples estructuras cerebrales simultáneamente a diferentes profundidades. Este trabajo describe la construcción de los microelectrodos bilaterales corticales, estriatales, talámicos ventrolaterales y nigrales como ejemplo. El principio de diseño esbozado ofrece flexibilidad, y los microelectrodos se pueden modificar y personalizar para registrar LFP de cualquier estructura calculando coordenadas estereotáxicas y cambiando rápidamente la construcción en consecuencia para apuntar a diferentes regiones del cerebro en ratones que se mueven libremente o anestesiados. El ensamblaje de microelectrodos requiere herramientas y suministros estándar. Estas matrices de microelectrodos personalizadas permiten a los investigadores diseñar fácilmente matrices de microelectrodos en cualquier configuración para rastrear la actividad neuronal, proporcionando grabaciones LFP con resolución de milisegundos.
Los potenciales de campo local (LFP) son los potenciales eléctricos registrados desde el espacio extracelular en el cerebro. Se generan por desequilibrios de concentración de iones fuera de las neuronas y representan la actividad de una pequeña población localizada de neuronas, lo que permite monitorear con precisión la actividad de una región específica del cerebro en comparación con los registros de EEG a macroescala1. Como estimación, los microelectrodos LFP separados por 1 mm corresponden a dos poblaciones de neuronas completamente diferentes. Mientras que la señal de EEG se filtra por el tejido cerebral, el líquido cefalorraquídeo, el cráneo, el músculo y la piel, la señal de LFP es un marcador confiable de la actividad neuronal local1.
Los investigadores a menudo necesitan registrar simultáneamente LFP de varias estructuras cerebrales, pero las matrices de microelectrodos disponibles comercialmente a menudo no ofrecen tal flexibilidad. Aquí, el presente protocolo describe microelectrodos totalmente personalizables y fáciles de construir para registrar simultáneamente LFP de cualquier región del cerebro deseada a diferentes profundidades. Aunque los LFP se han utilizado ampliamente para registrar la actividad neuronal de una región cerebral específica 2,3,4,5,6,7,8,9, el diseño actual fácilmente personalizable permite registrar LFP desde cualquier región cerebral superficial o profunda múltiple 11,12 . El protocolo también se puede modificar para construir cualquier matriz de microelectrodos deseada mediante la determinación de coordenadas estereotáxicas de las regiones cerebrales y el ensamblaje de la matriz en consecuencia. Estos microelectrodos con una frecuencia de muestreo de 10 kHz y una resistencia de 60-70 kΩ (longitud de 2 cm) nos permiten registrar LFP con precisión de milisegundos. Los datos pueden ser amplificados por un amplificador de 16 canales, filtrados (paso bajo 1 Hz, paso alto 5 kHz) y digitalizados.
El presente trabajo está aprobado por el Comité de Cuidado y Uso de Animales de la Universidad de Virginia. Se utilizaron ratones C57Bl/ 6 de ambos sexos (7-12 semanas) para los experimentos. Los animales se mantuvieron en un ciclo de luz de 12 h / 12 h de oscuridad y tuvieron acceso ad libitum a alimentos y agua.
1. Construcción de microelectrodos

Figura 1: Esquema de la construcción del microelectrodo. (A) Instalación de cables en la plataforma con barras de tensión debajo de los cables. (B) El espacio entre los cables. (C) Cuatro piezas de plástico están pegadas a los cables. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
| Ctx | Str | VL | SNR | |
| AP (Anterior/Posterior) | 2.2 | 1.2 | -1.3 | -3.3 |
| ML (Medial/Lateral) | 1.8 | 1.5 | 1 | 1.5 |
| DV (Dorsal/Ventral) | 0.5 | 3.5 | 4 | 4.75 |
| Longitud del electrodo | 4 | 4.75 | 5.25 | 6 |
Tabla 1: Coordenadas de implantación estereotáxica y dimensiones de los microelectrodos.
2. Ensamblaje de matriz de microelectrodos

Figura 2: Construcción y dimensiones de microelectrodos. (A) Cuatro pares de electrodos formados después de que los cables fueron cortados con tijeras, como se indica en la Figura 1C (2 pares de electrodos Ctx-VL y 2 pares de electrodos Str-SNR). Inserte electrodos de estructura profunda (VL y SNR) en los tubos de vidrio y pegue sus bases al plástico (puntos rojos). (B) Vista superior: Los pares de electrodos de (A) se pegan en una pila para crear el núcleo de microelectrodo. Las líneas rojas indican líneas de pegamento. (C) Vista frontal lateral de (B). (D) El alambre grueso estaba unido a los microelectrodos. (E) Los cables se agrupan como se indica, y los extremos aislados se raspan y se cortan en 2 cm. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
3. Conexión de microelectrodo a los auriculares

Figura 3: Implantación de microelectrodos. (A) Los electrodos corticales se doblan como se indica. (B) Los cables están separados para hacer bucles en los extremos. (C) El flujo (en los puntos rojos) y los cables en bucle se sueldan a los auriculares de 10 pines, lo que garantiza que cada cable vaya a su pin apropiado. (D) El auricular se implanta para grabar LFP. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
4. Marcar la ubicación del electrodo después de las grabaciones
5. Medición de la resistencia del electrodo
En este trabajo, se utilizaron los microelectrodos LFP para mapear la convulsión diseminada a través de los ganglios basales11. Se realizaron registros simultáneos de LFP desde la corteza premotora derecha (donde estaba el foco de la convulsión) y la VL izquierda, el cuerpo estriado y el SNR (Figura 4). El inicio de la convulsión se identificó como la desviación de la traza de voltaje al menos dos veces la línea de base (Figura 4A, flecha roja). La gráfica11 del espectro de potencia muestra las distribuciones de frecuencia para los LFP registrados (Figura 4A). Las latencias de inicio de las convulsiones (barras rojas) podrían compararse entre cada estructura con precisión de milisegundos (Figura 4A). Se aplicó un pulso de corriente al final de las grabaciones para marcar y confirmar la ubicación de las puntas de los electrodos, formando una lesión (Figura 4B,C).

Figura 4: Registros representativos de LFP. (A) Se registró una convulsión desde la corteza premotora derecha y la VL, el cuerpo estriado y el SNR izquierdos utilizando microelectrodos LFP con los espectros de potencia correspondientes. La flecha roja indica el inicio de las convulsiones. Las barras horizontales rojas indican retraso en el inicio de las convulsiones en cada estructura. El esquema cerebral muestra la posición de los microelectrodos (puntos rojos). (B,C) Las estructuras fueron lesionadas después de las grabaciones para marcar la ubicación de las puntas de los microelectrodos en el VL y SNR. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
Los autores no tienen nada que revelar.
El presente protocolo describe la construcción de matrices de microelectrodos hechas a medida para registrar potenciales de campo locales in vivo de múltiples estructuras cerebrales simultáneamente.
Este trabajo fue apoyado por el Instituto Nacional de Salud (RO1 NS120945, R37NS119012 a JK) y el Instituto del Cerebro UVA.
| Amplificador de 16 canales | A-M Systems | modelo 3600 | Amplificador Cemento |
| craneoplastia | Coltene | Perm Reeline/Resina de reparación tipo II Clase I Sombra - Transparente | Cemento para sujetar microelectrodos |
| Microtomo de criostato | de precisión | CF-6100 | Para cortar el cerebro |
| Alambre de níquel-cromo recubierto de diamel | ,Johnson Matthey, Inc. | 50 y micro; m | Alambre de microelectrodo |
| Dremel Dremel | Serie 300 | Para perforar agujeros en el cráneo del ratón | |
| Epoxi | CEC Corp | C-POXY 5 | Adhesivo de fraguado rápido |
| Hemostático | Cualquiera | Para sujetar el auricular | |
| Pinzas | Cualquiera | Para sujetar microelectrodos | |
| Microscopio | óptico Nikon | SMZ-10 | Para ver la alineación |
| Ohmímetro | Cualquiera | Para medir la resistencia | |
| Pines (Cabezales y Sockets correspondientes) | InterconexionesMill-Max | , serie 833, Cabezales y Zócalos de montaje en superficie de ala de gaviota de rejilla de 2 mm | Para conectar microelectrodos al |
| kit de tubos Polymicro | Neuralynx | ID 100 ± 04 µ m, OD 164 y más; 06 y micro; m, espesor del recubrimiento 12 y micro; m | Tubos de vidrio |
| Estimulador de impulsos | A-M Systems | Modelo 2100 | Para marcar la ubicación del microelectrodo al final de las grabaciones |
| Tijeras | Cualquiera | Para cortar microelectrodos | |
| Superglue | Gorilla | Adhesivo | |
| Alambre grueso 0.008 pulg. – 0.011 pulg. | A-M Systems | 791900 | Cable de garrapata para sujetar la guía de microelectrodos |
| Alambre delgado 0,005 pulg. - 0,008 pulg. | A-M Systems | 791400 | Alambre delgado para referencia y tierra |