Artículo de método

Imágenes unicelulares de todo el cerebro y análisis de cerebros de ratones neonatales intactos mediante resonancia magnética, limpieza de tejidos y microscopía de hoja de luz

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DOI:

10.3791/64096

1 de agosto de 2022

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En este artículo

Resumen

Este protocolo describe métodos para realizar imágenes de resonancia magnética, limpieza e inmunoetiquetado de cerebros de ratones intactos utilizando iDISCO+, seguido de una descripción detallada de imágenes utilizando microscopía de hoja de luz y análisis posteriores utilizando NuMorph.

Resumen

La limpieza de tejidos seguida de microscopía de lámina de luz (LSFM) permite obtener imágenes de resolución celular de la estructura cerebral intacta, lo que permite el análisis cuantitativo de los cambios estructurales causados por perturbaciones genéticas o ambientales. Las imágenes de todo el cerebro dan como resultado una cuantificación más precisa de las células y el estudio de las diferencias específicas de la región que pueden pasarse por alto con la microscopía comúnmente utilizada del tejido seccionado físicamente. El uso de microscopía de hoja de luz para obtener imágenes de cerebros despejados aumenta en gran medida la velocidad de adquisición en comparación con la microscopía confocal. Aunque estas imágenes producen grandes cantidades de datos estructurales cerebrales, la mayoría de las herramientas computacionales que realizan la cuantificación de características en imágenes de tejido despejado se limitan a contar poblaciones de células dispersas, en lugar de todos los núcleos.

Aquí, demostramos NuMorph (morfometría basada en nuclear), un grupo de herramientas de análisis, para cuantificar todos los núcleos y marcadores nucleares dentro de las regiones anotadas de un cerebro de ratón postnatal del día 4 (P4) después de limpiar e obtener imágenes en un microscopio de hoja de luz. Describimos imágenes por resonancia magnética (IRM) para medir el volumen cerebral antes de la contracción causada por los pasos de deshidratación de limpieza de tejidos, limpieza de tejidos utilizando el método iDISCO +, incluido el inmunomarcado, seguido de microscopía de hoja de luz utilizando una plataforma disponible comercialmente para obtener imágenes de cerebros de ratones a resolución celular. Luego demostramos esta canalización de análisis de imágenes utilizando NuMorph, que se utiliza para corregir diferencias de intensidad, unir mosaicos de imágenes, alinear múltiples canales, contar núcleos y anotar regiones cerebrales a través del registro en atlas disponibles públicamente.

Diseñamos este enfoque utilizando protocolos y software disponibles públicamente, permitiendo a cualquier investigador con el microscopio y los recursos computacionales necesarios realizar estas técnicas. Estas herramientas de limpieza de tejidos, imágenes y computación permiten la medición y cuantificación de la organización tridimensional (3D) de los tipos de células en la corteza y deben ser ampliamente aplicables a cualquier diseño de estudio de ratón de tipo salvaje / knockout.

Introducción

Las imágenes de todo el cerebro a resolución de una sola célula son un desafío importante en neurociencia. Las imágenes cerebrales de resolución celular permiten un análisis detallado y un mapeo a nivel de sistema de los circuitos cerebrales y cómo esos circuitos se ven interrumpidos por factores de riesgo genéticos o ambientales para trastornos neuropsiquiátricos, comportamiento celular en embriones en desarrollo, así como circuitos neuronales en el cerebro adulto 1,2,3. Existen múltiples métodos histológicos que permiten obtener imágenes de alta resolución del cerebro 3D re....

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Protocolo

Todos los ratones fueron utilizados de acuerdo con y aprobados por el Comité Institucional de Cuidado y Uso de Animales (IACUC) de la Universidad de Carolina del Norte en Chapel Hill.

1. Disección y perfusión del ratón

NOTA: Las siguientes disecciones se realizaron en ratones P4 y P14 utilizando una jeringa. El volumen de líquido de perfusión variará dependiendo de la edad del animal.

  1. Perfusión
    PRECAUCIÓN: El paraformaldehído (PFA) es un producto químico peligroso. Realice todos los pasos de perfusión en una campana extractora de humos químicos.
    1. Antes de la cirugía, administra....

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Resultados

Como el protocolo iDISCO+ introduce una contracción significativa del tejido, que es fácilmente perceptible a simple vista (Figura 2B), agregamos un paso de resonancia magnética a esta tubería antes de la limpieza del tejido para cuantificar la contracción inducida por la limpieza del tejido. El flujo de trabajo comienza con la extracción del tejido no cerebral de la imagen de RM (Figura 2C). A continuación, se aplica una transformación rígida (3 ángulos de tras.......

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Discusión

Los métodos de limpieza de tejidos son técnicas útiles para medir la organización celular 3D del cerebro. Hay una gran cantidad de métodos de limpieza de tejidos descritos en la literatura, cada uno con sus ventajas y limitaciones 6,7,8,9. Las opciones de herramientas computacionales para analizar los tipos de células en las imágenes eliminadas de tejido son relativamente limitadas. Otras herra.......

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Divulgaciones

Los autores no tienen conflictos de intereses que revelar.

Agradecimientos

Este trabajo fue apoyado por el NIH (R01MH121433, R01MH118349 y R01MH120125 a JLS y R01NS110791 a GW) y la Fundación de la Esperanza. Agradecemos a Pablo Ariel del Laboratorio de Servicios de Microscopía por ayudar en la obtención de imágenes de muestras. El Laboratorio de Servicios de Microscopía del Departamento de Patología y Medicina de Laboratorio cuenta con el apoyo parcial de la Subvención P30 CA016086 del Centro de Apoyo Básico del Centro de Cáncer P30 CA016086 de la Universidad de Carolina del Norte (UNC) al Centro Oncológico Integral Lineberger de la Universidad de Carolina del Norte (UNC). El Núcleo de Microscopía de Neurociencia está respaldado por la subv....

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Escáner de resonancia magnética Bruker 9.4T/30 cm Sistemaresonancia magnética de animales de orificio horizontalBruker Biospec
Éter dibenciloSigma-Aldrich108014-1KG
Diclorometano (DCM)Sigma-Aldrich270997-1L
Dimetilsulfóxido (DMSO)Fisher-ScientificICN19605590
Suero de burroSigma-AldrichS30-100ML
EVO 860 4TB SSD
Fomblin YSpeciality Fluids CompanyYL-VAC-25-6perfluoropoliéter lubricante
gadolinio agente de contraste (ProHance)Bracco DiagnosticsA9576
agente de contraste de gadolinio (ProHance)Bracco Diagnostics0270-1111-03
GeForce GTX 1080 Ti 11GB GPUEVGA08G-P4-6286-KR
GlicinaSigma-AldrichG7126-500G
Sal sódica de heparinaSigma-AldrichH3393-10KUDisuelto en H2O a 10 mg/mL
Solución de peróxido de hidrógeno, 30%Sigma-AldrichH1009-100ML
ImSpector ProLaVision BioTecSoftware de adquisición de imágenes de microscopio
Software de segmentaciónITK Snap
MetanolFisher-ScientificA412SK-4
MVPLAPO 2x/0.5 NA ObjetivoOlympus
Paraformaldehído, polvo, 95% (PFA)Sigma-Aldrich30525-89-4Disuelto en 1x PBS al 4%
Solución salina tamponada con fosfato 10x (PBS)Corning46-013-CMDiluido a 1x en H2O
Azida de sodioSigma-AldrichS2002-100Gdisuelta en H2O al 10%
Desoxicolato de sodioSigma-AldrichD6750-10G
Tergitol tipo NP-40Sigma-AldrichNP40S-100ML
TritonX-100Sigma-AldrichT8787-50ML
Tween-20Fisher-ScientificBP337 500
Ultramicroscopio II Microscopio de lámina de luzLaVision BioTec
Xeon Procesador E5-2690 v4IntelE5-2690
Zyla sCMOS CámaraAndorde óxido
metálico complementariaAnticuerpoConcentración de trabajo
Alexa Fluor Goat 790 Anti-RabbitThermofisher ScientificA11369(1:50)
Alexa Fluor Goat 568 Anti-RatThermofisher ScientificA11077(1:200)
Rat anti-Ctip2Abcamab18465(1:400)
Rabbit anti-Brn2Cell Signaling Technology12137(1:100)
To-Pro 3 (TP3)Thermofisher ScientificT3605(1:400)
de externo Cámara semiconductora

Referencias

  1. Dodt, H. U., et al. Ultramicroscopy: Three-dimensional visualization of neuronal networks in the whole mouse brain. Nature Methods. 4 (4), 331-336 (2007).
  2. Hägerling, R., et al. A novel multistep mec....

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