Este protocolo describe los pasos clave para generar y caracterizar organoides 3D oralesesofágicos murinos que representan lesiones de carcinoma de células escamosas normales, preneoplásicas y escamosas inducidas a través de carcinogénesis química.
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Este protocolo describe los pasos clave para generar y caracterizar organoides 3D oralesesofágicos murinos que representan lesiones de carcinoma de células escamosas normales, preneoplásicas y escamosas inducidas a través de carcinogénesis química.
El carcinoma de células escamosas de esófago (ESCC) es prevalente en todo el mundo, representa el 90% de todos los casos de cáncer de esófago cada año, y es el más mortal de todos los carcinomas de células escamosas humanas. A pesar del progreso reciente en la definición de los cambios moleculares que acompañan al inicio y desarrollo de ESCC, el pronóstico del paciente sigue siendo malo. La anotación funcional de estos cambios moleculares es el siguiente paso necesario y requiere modelos que capturen las características moleculares de ESCC y puedan manipularse de manera fácil y económica para la anotación funcional. Los ratones tratados con el humo de tabaco mimético 4-nitroquinolina 1-óxido (4NQO) forman previsiblemente ESCC y preneoplasia esofágica. Cabe destacar que las lesiones 4NQO también surgen en la cavidad oral, más comúnmente en la lengua, así como en el estómago anterior, que comparten el epitelio escamoso estratificado. Sin embargo, estos ratones no pueden ser simplemente manipulados para pruebas de hipótesis funcionales, ya que la generación de modelos de ratón isogénicos requiere mucho tiempo y recursos. Aquí, superamos esta limitación mediante la generación de organoides tridimensionales (3D) derivados de células individuales de ratones tratados con 4NQO para caracterizar ESCC murino o células preneoplásicas ex vivo. Estos organoides capturan las características sobresalientes de ESCC y preneoplasia esofágica, pueden aprovecharse de manera económica y rápida para formar modelos isogénicos y pueden utilizarse para experimentos de trasplante singénico. Demostramos cómo generar organoides 3D a partir de tejido esofágico murino normal, preneoplásico y SCC y mantener y criopreservar estos organoides. Las aplicaciones de estos organoides versátiles son amplias e incluyen la utilización de ratones genéticamente modificados y una mayor caracterización por citometría de flujo o inmunohistoquímica, la generación de líneas organoides isogénicas utilizando tecnologías CRISPR y la detección de fármacos o el trasplante singénico. Creemos que la adopción generalizada de las técnicas demostradas en este protocolo acelerará el progreso en este campo para combatir la grave carga de ESCC.
El carcinoma de células escamosas de esófago (CCE) es el más mortal de los carcinomas de células escamosas humanas, debido a su diagnóstico tardío, resistencia al tratamiento y metástasis 1,2. ESCC surge del epitelio escamoso estratificado, que recubre la superficie luminal del esófago. El epitelio escamoso está compuesto por células basales proliferativas y células diferenciadas dentro de la capa de células suprabasales. En condiciones fisiológicas, las células basales expresan marcadores como p63, Sox2 y citoqueratina K5 y K14, mientras que las células diferenciadas expresan K4, K13 e IVL. Las células basale....
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Los experimentos murinos fueron planeados y realizados de acuerdo con las regulaciones y bajo el protocolo animal #AABB1502, revisado y aprobado por el Comité Institucional de Cuidado y Uso de Animales de la Universidad de Columbia. Los ratones fueron alojados en un centro de cuidado de animales adecuado que garantiza el trato humano de los ratones y proporciona atención veterinaria adecuada para los ratones y capacitación en seguridad de laboratorio para el personal del laboratorio.
1. Tratamiento de ratones con 4NQO para inducir lesiones esofágicas IEN y ESCC (tiempo considerado: hasta 28 semanas)
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Este protocolo describe el proceso de generación de organoides esofágicos murinos (MEO) a partir de tejido esofágico normal o tejido tumoral ESCC de ratones tratados con 4NQO de acuerdo con un régimen de tratamiento específico que consiste en 16 semanas de 4NQO administradas en agua potable, seguido de un período de observación de 10 semanas a 12 semanas (Figura 1). Luego, los ratones son sacrificados para la disección de la lengua o el tejido esofágico (Figura 2
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Hay varios pasos y consideraciones críticos para la generación y el análisis de MEO en los protocolos descritos aquí. Para garantizar la reproducibilidad y el rigor en los experimentos MEO, las réplicas biológicas y técnicas son importantes. Para las réplicas biológicas, dos o tres ratones independientes que portan ESCC son generalmente suficientes por condición experimental. Sin embargo, el número apropiado de réplicas biológicas puede variar dependiendo de los parámetros que se probarán en estudios individuales. Por ej.......
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Los autores declaran no tener conflictos de intereses.
Agradecemos a los Recursos Compartidos (Citometría de Flujo, Patología Molecular y Microscopía Confocal y Especializada) en el Centro Oncológico Integral Herbert Irving de la Universidad de Columbia por su apoyo técnico. Agradecemos a los doctores Alan Diehl, Adam J. Bass y Kwok-Kin Wong (NCI P01 Mechanisms of Esophageal Carcinogenesis) y a los miembros de los laboratorios Rustgi y Nakagawa por sus útiles conversaciones. Este estudio fue apoyado por las siguientes subvenciones de los NIH: P01CA098101 (H.N. y A.K.R.), R01DK114436 (H.N.), R01AA026297 (H.N.), L30CA264714 (S.F.), DE031112-01 (F.M.H.), KL2TR001874 (F.M.H.),3R01CA255298-01S1 (J.G.), 2L30DK126621-02
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| Nombre | Empresa | Número de catálogo | Comentarios |
|---|---|---|---|
| 0,05% tripsina-EDTA | Thermo Fisher Scientific | 25-300-120 | |
| 0,25% tripsina-EDTA | Thermo Fisher Scientific | 25-200-114 | |
| 0,4% Azul Trypan | Thermo Fisher Scientific | T10282 | |
| Jeringa de tuberculina de 1 mL sin aguja | BD 309659 | ||
| Tubo de microcentrífuga de 1,5 mL | Thermo Fisher Scientific | 05-408-129 | |
| 100 y micro; m filtro de células | Thermo Fisher Scientific | 22363549 | |
| 15 mL tubos cónicos Thermo | Fisher Scientific | 14-959-53A | |
| 200 µ L puntas de micropipeta de diámetro ancho | Thermo Fisher Scientific | 212361A | |
| Agujas de 21 G | BD | 305167 | |
| placa de 24 pocillos | Thermo Fisher Scientific | 12-556-006 | |
| 4-Nitroquinolina-1-óxido (4NQO) | Industria química de Tokio | NO250 | |
| Tubos cónicos de 50 mL | Thermo Fisher Scientific | 12-565-270 | |
| 6 pocillos placa | Thermo Fisher Scientific | 12556004 | |
| 70 µ filtro de celdas m | Thermo Fisher Scientific | 22363548 | |
| 99,9% etileno propilenglicol | SK picglobal | ||
| Advanced DMEM/F12 | Thermo Fisher Scientific | 12634028 | |
| Anfotericina B | Gibco, Thermo Fisher Scientific | 15290018 | Concentración de existencias 250 y micro; g/mL, concentración final 0,5 y micro; g/mL |
| Antibiótico-Antimicótico | Thermo Fisher Scientific | 15240062 | Concentración de existencias 100x, concentración final 1x |
| suplemento de B-27 | Thermo Fisher Scientific | 17504044 | Concentración de existencias 50x, concentración final 1x |
| Bacto agar | BD | 214010 | |
| CO2 incubadora, p. ej. Heracell 150i | Thermo Fisher Scientific | 51026406 | o equivalente |
| Countess II FL Contador de células automatizado | Thermo Fisher Scientific | AMQAX1000 | o equivalente |
| Cryovials | Thermo Fisher Scientific | 03-337-7D | |
| DietGel 76A | Clear H2O | 72-07-5022 | |
| Dimetilsulfóxido (DMSO) | MilliporeSigma | D4540 | |
| Dispasa | Corning | 354235 | Concentración de stock 50 U/mL, concentración final 2,5– 5 U/mL |
| Tijeras de disección | VWR | 25870-002 | |
| Solución salina tamponada con fosfato (PBS) de DulbeccoThermo | Fisher Scientific | 14190250 | Concentración de existencias 1x |
| Suero fetal bovino (FBS) | HyClone | SH30071.03 | |
| Pinzas | VWR | 82027-386 | |
| Contenedor de congelación | Corning | 432002 | o |
| equivalente Gelatina | Thermo Fisher Scientific | G7-500 | |
| GlutaMAX | Thermo Fisher Scientific | 35050061 | Concentración de stock 100x, concentración final 1x |
| HEPES | Thermo Fisher Scientific | 15630080 | Concentración de stock 1 M, concentración final 10 mM |
| Placa caliente/agitador | Corning | PC-420D | o equivalente |
| Lab Baño de perlas de armadura (o baño de agua) | VWR | 89409-222 | o equivalente |
| Balanza de laboratorio | Ohaus | 71142841 | o equivalente |
| Extracto de membrana basal de Matrigel (BME) | |||
| Corning Minispin | Eppendorf | 22620100 | o equivalente Bastidor |
| tubos de microcentrífuga | Southern Labware | 0061 | |
| Suplemento N-2 | Thermo Fisher Scientific | 17502048 | Concentración de existencias 100x, concentración final 1x |
| N-acetilcisteína (NAC) | Sigma-Aldrich | A9165 | Concentración de existencias 0,5 M, concentración final 1 mM |
| Parafilm M wrap | Thermo Fisher Scientific | S37440 | |
| Paraformaldehído (PFA) | MilliporeSigma | 158127-500G | |
| Casete de patología | Thermo Fisher Scientific | 22-272416 | |
| Microscopio de contraste de fase | Nikon | o equivalente | |
| Factor de crecimiento epidérmico de ratón recombinante (mEGF) | Peprotech | 315-09-1mg | Concentración de stock 500 ng/µ L, concentración final 100 ng/mL |
| condicionado a células que expresa R-Spondin1 y Noggin (RN CM) | N/A | N/A | Disponible a través del organoide y el núcleo de cultivo celular a pedido, concentración final 2% |
| Centrífuga Sorval ST 16R | Thermo Fisher Scientific | 75004380 | o equivalente |
| Inhibidor de tripsina de soja (ITS) | MilliporeSigma | T9128 | Concentración de existencias 250 y micro; g/mL |
| ThermoMixer C | Thermo Fisher Scientific | 14-285-562 PM | o equivalente |
| Y-27632 | Selleck Chemicals | S1049 | Concentración de existencias 10 mM, concentración final 10 µ M |
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