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Detección y cuantificación del péptido relacionado con el gen de la calcitonina (CGRP) en plasma humano mediante un ensayo inmunoabsorbente modificado ligado a enzimas

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DOI:

10.3791/64775

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16 de junio de 2023

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1Department of Otolaryngology-Head & Neck Surgery, Johns Hopkins University School of Medicine, 2Virginia Commonwealth University School of Medicine, 3Department of Oncology, The Sidney Kimmel Comprehensive Cancer Center, Johns Hopkins University School of Medicine, 4Department of Otolaryngology-Head and Neck Surgery, University of Michigan Medical School, 5Department of Otolaryngology-Head and Neck Surgery, The Ohio State University College of Medicine, 6ICTR Clinical Research Core Laboratory, Johns Hopkins University School of Medicine

En este artículo

Resumen

Los datos publicados relacionados con las concentraciones de péptidos relacionados con el gen de la calcitonina (CGRP) en el plasma humano son inconsistentes. Estas inconsistencias pueden deberse a la falta de una metodología estandarizada y validada para cuantificar este neuropéptido. Aquí, describimos un protocolo validado de ensayo inmunoabsorbente ligado a enzimas (ELISA) para purificar y cuantificar CGRP en plasma humano.

Resumen

El péptido relacionado con el gen de la calcitonina (CGRP) es un neuropéptido vasoactivo que desempeña un papel putativo en la fisiopatología de las migrañas y puede ser un candidato para el estado de biomarcador. CGRP se libera de las fibras neuronales tras la activación e induce inflamación neurogénica estéril y vasodilatación arterial en la vasculatura que recibe inervación eferente del trigémino. La presencia de CGRP en la vasculatura periférica ha estimulado las investigaciones para detectar y cuantificar este neuropéptido en el plasma humano mediante ensayos proteómicos, como el ensayo inmunoabsorbente ligado a enzimas (ELISA). Sin embargo, su vida media de 6,9 min y la variabilidad en los detalles técnicos de los protocolos de ensayo, que a menudo no se describen completamente, han producido datos ELISA CGRP inconsistentes en la literatura. Aquí, se presenta un protocolo ELISA modificado para la purificación y cuantificación de CGRP en plasma humano. Los pasos del procedimiento incluyen la recolección y preparación de muestras, la extracción utilizando un sorbente polar como medio de purificación, pasos adicionales para bloquear la unión no específica y la cuantificación a través de ELISA. Además, el protocolo ha sido validado con experimentos de pico y recuperación y linealidad de dilución. Este protocolo validado se puede utilizar teóricamente para cuantificar las concentraciones de CGRP en el plasma de individuos no solo con migraña, sino también con otras enfermedades en las que CGRP puede desempeñar un papel.

Introducción

El péptido relacionado con el gen de la calcitonina (CGRP) es un neuropéptido de 37 aminoácidos que está presente en fibras neuronales con localización perivascular, así como en tejidos no neuronales. Las dos formas de CGRP, α- y β-CGRP, comparten más del 90% de homología y comparten funciones fisiológicas; sin embargo, la αCGRP se encuentra en el sistema nervioso central y periférico, mientras que la βCGRP se encuentra en el sistema nervioso entérico 1,2. Tras la activación de los nociceptores y la exocitosis dependiente de calcio, CGRP se libera de las neuronas, induciendo inflamación neurogénica estéril que involucra vasodilatación arterial y extravasación de proteínas plasmáticas 3,4,5,6,7. A partir de aquí, CGRP aparece en los vasos postcapilares y puede ser un biomarcador para enfermedades que causan activación nociceptiva aferente, como la migraña 8,9,10,11. Cabe destacar que CGRP también ha sido implicado en COVID-19 a través de su papel en la angiogénesis y la modulación inmune, y puede predecir la evolución desfavorable de la enfermedad12,13. Por lo tanto, un protocolo para la cuantificación precisa de CGRP en plasma humano podría tener un valor amplio.

La mayor atención se ha prestado quizás al papel de CGRP en la migraña. Sobre la base de estudios preclínicos y clínicos, CGRP se ha presentado como un posible biomarcador para la migraña y como un objetivo para el tratamiento 3,4,5,6,7,8,9,10. Algunos estudios han encontrado una elevación de CGRP en cohortes con migraña episódica en relación con los participantes control10,14,15. El éxito de los inhibidores de CGRP en ensayos clínicos para el tratamiento de la migraña parece implicar CGRP elevada como un factor causal para las migrañas. Sin embargo, no todos los investigadores han corroborado estos resultados16,17,18,19. Además, el papel de CGRP en los síntomas de migraña sin dolor de cabeza aún no se ha dilucidado; el trabajo actual fue motivado por el deseo de comprender el papel de CGRP en los síntomas vestibulares de la migraña.

Los datos inconsistentes de inmunoensayo CGRP en la literatura podrían deberse a varias razones. En primer lugar, la vida media de CGRP en la vasculatura periférica es de 6,9 min 20, debido a la actividad de las serina proteasas 21, enzimas degradadoras de insulina y otras metaloproteasas 22, endopeptidasas neutras 23 y enzima convertidora de endotelina-1 24. En segundo lugar, los detalles técnicos variables de los inmunoensayos utilizados para cuantificar CGRP no se describen completamente en dichos estudios. Finalmente, la falta de estandarización de la metodología de inmunoensayo complica aún más el panorama.

Este artículo describe un protocolo de ensayo inmunoabsorbente ligado a enzimas modificado (ELISA) que permite la purificación y cuantificación precisa de α y βCGRP en plasma humano. Los anticuerpos del kit no son reactivos cruzados con amilina, calcitonina o sustancia P. Este protocolo ha sido sometido a los experimentos de validación necesarios, como el pico y la recuperación y la linealidad de la dilución, cuyos datos se presentan aquí. Tal protocolo ELISA CGRP que ha sido objeto de validación no ha sido descrito previamente en la literatura. Este protocolo se puede utilizar para cuantificar CGRP en plasma humano en el contexto de la migraña, así como cardiológicas2,25, dermatológicas 26, obstétricas 27, reumatológicas28,29, musculoesqueléticas 30,31, endocrinas 32,33 y virales12,13 en las que CGRP ha sido implicada.

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Protocolo

Este protocolo se desarrolló utilizando muestras de plasma humano de individuos consentidos con la aprobación de la Junta de Revisión Institucional de Johns Hopkins (NA_00092491).

1. Recogida y preparación de muestras

  1. Recolectar 5 ml de sangre total de la vena antecubital mediante métodos estándar de venopunción34 en un tubo de recolección de ácido etilendiaminotetraacético (EDTA) vacutainer de 6 ml.
  2. Agregue 0.5 ml de inhibidor de la serina proteasa competitiva de aprotinina (10,000 KIU/ml) al tubo después de la recolección para bloquear la lisis del péptido objetivo. Invierta el tubo 10 veces para permitir que la aprotinina se mezcle adecuadamente con la sangre. Después, guarde los tubos en hielo hasta el siguiente paso.
  3. Centrifugar el tubo a 604 x g durante 4 min a 4 °C dentro de los 60 min siguientes a la extracción de sangre.
  4. Retire la fracción plasmática con una pipeta y transfiérala a crioviales estériles de fondo redondo de 2 ml.
  5. Conservar inmediatamente los crioviales a -80 °C durante un máximo de 2 semanas.

2. Extracción de las muestras de plasma

  1. Coloque un cartucho de extracción dentro de un tubo de centrífuga cónica de 15 ml con las crestas exteriores del cartucho apoyadas por las crestas exteriores del tubo.
  2. Active el cartucho pasando primero 5 ml de metanol al 100% y luego 10 ml de agua ultrapura a través del cartucho.
    1. A medida que el fluido pasa a través del cartucho a través del flujo impulsado por la gravedad, se acumulará en el tubo.
    2. Deseche el exceso de líquido a medida que se acumula para asegurarse de que el líquido no envuelva el cartucho.
    3. Asegúrese de que el cartucho no se seque durante el transcurso del experimento.
  3. Diluir 250 μL de plasma con 750 μL de ácido acético al 4%.
  4. Pase lentamente 1 ml de solución plasmática y de ácido acético a través del cartucho.
    NOTA: Este paso debe tomar aproximadamente 30 s a través de un flujo impulsado por gravedad por cada mililitro pasado.
  5. Lave el cartucho con 10 ml de ácido acético al 4%. Como se hizo anteriormente, deseche el exceso de líquido a medida que se acumula para asegurarse de que el líquido no envuelva el cartucho.
  6. Después de que se libere la última gota de ácido acético del cartucho, retire el cartucho del tubo y colóquelo en un nuevo tubo de centrífuga cónica de 15 ml.
  7. Prepare una solución 10:1 de metanol al 100% y ácido acético al 4% mezclando 2,7 ml de ácido acético al 4% y 0,3 ml de metanol al 100%. Utilice esta opción para eluyer el CGRP pasando esta solución a través del cartucho 1 ml a la vez. Haga una pausa de 25 minutos entre cada mililitro de solución pasada. NO tire el eluyente.
  8. El tubo contendrá 3 ml del líquido eluyido 25 minutos después de que haya pasado el último mililitro de la solución de metanol y ácido acético. Coloque cada 1 ml del eluyente en un tubo de microcentrífuga de 1,7 ml.
    NOTA: Esto debería producir tres tubos de microcentrífuga de cada cartucho.
  9. Coloque cada tubo en una mini centrífuga durante 1 s para asegurarse de que todo el eluyente esté en el fondo de cada tubo.
  10. Secar todas las muestras por centrifugación al vacío a 4 °C (ajustado a la función concentrador, para soluciones acuosas, a 1.400 rpm; la fuerza g varía según la posición de los tubos y, por lo tanto, oscila entre 130 y 250 x g).
    NOTA: El tiempo necesario para que la centrífuga de vacío seque las muestras dependerá del tipo de tubo de microcentrífuga utilizado.
  11. Inmediatamente antes de proceder al procedimiento de ensayo (paso 4.1), reconstituir la muestra previamente seca con tampón de inmunoensayo enzimático (EIA) (véase la tabla de materiales) descongelado a temperatura ambiente (RT) o 20 °C.
    NOTA: El volumen de tampón EIA utilizado para reconstituir la muestra seca debe ser igual al volumen de muestra original, o 250 μL.

3. Preparación de la placa ELISA - bloqueo para limitar la unión no específica

  1. Agregue 250 μL de solución salina tamponada con tris (TBS)/tampón de bloqueo de gelatina de pescado a cada pocillo en la placa.
  2. Coloque una hoja de cubierta sobre el plato e incube durante 2 h en RT.
  3. Retire la hoja de cubierta y vacíe la placa por inversión o aspiración con una pipeta multicanal. Luego, seque el plato en una toalla de papel para desechar cualquier rastro de líquido.
  4. Seque la placa dejando la placa en una campana de flujo laminar durante 10 minutos.
  5. Después de que la placa esté visiblemente seca, colóquela en una bolsa de aluminio sellada con un sobre desecante de gel de sílice y guarde la bolsa a -20 °C durante 24 h.
    NOTA: Las placas deben usarse dentro de las 4 semanas posteriores a la incubación de la placa.

4. Antes del procedimiento de ensayo

  1. Prepare los reactivos (tampón EIA, estándar CGRP, control de calidad CGRP, trazador CGRP, tampón de lavado) según las instrucciones del kit. Prepare el reactivo de Ellman solo después de que finalice el período de incubación de 16-20 h.
  2. Descongele todas las muestras y reactivos a RT antes de realizar el resto del protocolo.

5. Procedimiento de ensayo

  1. Enjuague cada pocillo en la placa bloqueada cinco veces con un tampón de lavado proporcionado por el kit (300 μL/pocillo). Para cada enjuague, haga una pausa de 30 s después de colocar el tampón de lavado en los pocillos, luego deseche el líquido o aspire con una pipeta multicanal.
  2. Después del enjuague final, retire todo el tampón de los pocillos por inversión (invirtiendo la placa para expulsar el líquido dentro de los pocillos) o aspiración con una pipeta multicanal. Seque las últimas gotas en una toalla de papel y golpee la placa invertida hasta que todo el líquido se elimine visiblemente de los pozos.
  3. Reservar al menos dos pozos sin reactivos o amortiguadores para que se conozcan como pozos "en blanco". Luego, reserve al menos otros dos pozos para la unión no específica (NSB).
  4. Dispense 100 μL de tampón EIA en cada pocillo NSB.
  5. Dispensar 100 μL de los patrones CGRP por duplicado en pozos apropiados.
  6. Dispensar 100 μL de muestras (reconstituidas en tampón EIA) y control de calidad por duplicado en pozos apropiados.
  7. Dispense 100 μL de trazador CGRP (anticuerpo anti-CGRP unido a la acetilcolinesterasa) a cada pocillo que contenga NSB, estándares CGRP, muestras y control de calidad. No dispense trazador a los pocillos "en blanco".
  8. Cubra la placa con una hoja de cubierta transparente, sellando cada pocillo de modo que las muestras y los reactivos en cada pocillo no se evaporen significativamente. Incubar la placa durante 16-20 h a 4 °C.
  9. Una vez completada la incubación, reconstituya el reactivo de Ellman según las instrucciones del kit.
  10. Invierta la placa para eliminar todo el líquido. Enjuague cada pocillo (como se describió anteriormente) tres veces con 300 μL de tampón de lavado.
  11. Después del tercer enjuague, retire el líquido de las placas, coloque el plato en un plato agitador y agite a 120 rpm durante 2 minutos.
  12. Lave el plato tres veces más. Después del enjuague final, retire todo el tampón de los pocillos por inversión o aspiración con una pipeta multicanal. Seque las últimas gotas de líquido en una toalla de papel y golpee la placa invertida hasta que todo el líquido se elimine visiblemente de los pozos.
    NOTA: Los tres lavados adicionales descritos en este paso pueden no ser necesarios si se utiliza una lavadora de microplacas ELISA.
  13. Dispensar 200 μL de reactivo de Ellman en cada pocillo (sin incluir los pocillos "en blanco").
  14. Cubra la placa con una nueva hoja de cubierta y envuélvala en papel de aluminio para evitar cualquier exposición a la luz. Incubar en la oscuridad a RT durante 1 h.
  15. Asegúrese de que no haya líquido en la parte posterior de la placa que pueda confundir la lectura del espectrofotómetro limpiando la parte posterior con una toalla de papel seca.
  16. Lea la placa para la absorbancia a 405 nm (color amarillo).

6. Análisis de datos

  1. Calcule la absorbancia promedio para cada "Blank", NSB, estándar, control de calidad y las muestras.
  2. Reste los valores de absorbancia promedio de NSB de los valores estándar, control de calidad y absorbancia de la muestra.
  3. Trazar la absorbancia en el eje y y la concentración en el eje x. Construya una curva estándar utilizando un modelo de regresión logística de cuatro parámetros.
  4. Una vez que se construye la curva, use la ecuación de la curva para determinar las concentraciones interpoladas para el control de calidad y las muestras, que se pueden leer en el eje x.
    NOTA: La curva estándar se valida sólo si la concentración interpolada calculada para el control de calidad está dentro del 25% de la concentración esperada (normalmente 125 pg/ml, pero véase la etiqueta del vial de control de calidad).

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Resultados

Hay varios pasos clave en el protocolo que deben destacarse. En primer lugar, la aprotinina, un inhibidor de la serina proteasa, debe agregarse a las muestras de sangre total inmediatamente después de la recolección para evitar una mayor degradación enzimática de CGRP. Se ha demostrado que las serina proteasas desempeñan un papel en el metabolismo de CGRP, y un estudio previo también ha utilizado aprotinina en la cuantificación de CGRP en humanos21,35. Si no se u...

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Discusión

Este artículo describe un protocolo validado que permite la detección y cuantificación de CGRP en plasma humano. Este protocolo se sintetizó después de que se descubriera que los kits comerciales de ELISA CGRP no cuantificaban con precisión esta molécula. Después de establecer un protocolo de preparación de muestras y una curva estándar válida, los experimentos de pico y recuperación y linealidad de dilución mostraron que el porcentaje de recuperaciones fue mucho menor de lo esperado. Se encontraron resultados similares ...

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Divulgaciones

Los autores no tienen más revelaciones que agregar.

Agradecimientos

Nos gustaría agradecer a Robert N. Cole, Lauren R. DeVine y Marcos Iglesias por sus útiles discusiones sobre este protocolo. Esto fue apoyado en parte por fondos de la American Otological Society (Fellowship Grant, PSK), la American Hearing Research Foundation (90066548/90072266, JPC) y el National Center for Advancing Translational Sciences (NCATS), un componente de los Institutos Nacionales de Salud (NIH), y NIH Roadmap for Medical Research (UL1 TR003098, NSF). El contenido de la publicación es responsabilidad exclusiva de los autores y no representa necesariamente la opinión oficial del Johns Hopkins ICTR, NCATS o NIH.

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Tubo de microcentrífuga Safeseal de 1,7 mlSorenson Bioscience, Inc.11510
Metanol al 99%ThermoFisher ScientificL13255.0F
15 mL tubo de centrífuga cónicoFalcon14-959-49B
2 mL de fondo redondo crioviales estérilesCRYO. S122263
4% de ácido acéticoThermoFisher Scientific035572.K2
6.0 mL Vacutainer Tubo de recolección de EDTABD367863
Allegra 64R centrífuga de sobremesaBeckman Coulter, Inc.
AprotininaVWR76344-814
CGRP (humano) Kit ELISABiorreactivo BertinA05481
Stock de CGRPBiorreactivo
Bertin Tampón EIABiorreactivo BertinA07000
Reactivo de EllmanBiorreactivo BertinA09000_49+1
Pipetas multicanalThermoFisher Scientific4661180N
Oasis HLB 3 cc Vac CartuchosWatersWAT094226
Orbital ShakerBellco7744-01010
Micropipetas de precisiónThermoFisher ScientificF144055MG
SpectraMax Lector de microplacas multimodo serie MDispositivos molecularesNúmero de pieza M2
TBS/ Gelatinade pescado Bioworld, de Fischer Scientific50-199-167
Agua ultrapura ELISA GradoBertin BiorreactivoA07001
Vacufuge plus - CentrífugaConcentradora Eppendorf22820109
Tampón de lavadoBertinirreactivoA17000
367586

Referencias

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