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Análisis de Electrocardiogramas y Comportamiento en Ratones desde el Embarazo hasta el Periodo de Lactancia

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DOI:

10.3791/66498

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5 de abril de 2024

 ,  ,  , 
1Department of Animal Science and Biotechnology, Azabu University

En este artículo

Resumen

Se logró un registro simultáneo de la actividad autonómica y el comportamiento materno detallado de las madres ratones desde el embarazo hasta la lactancia utilizando un sistema de telemetría. Este método ayuda a comprender la dinámica de las características fisiológicas y conductuales de las madres desde el embarazo hasta el destete.

Resumen

Los cambios en la relación madre-hijo van presumiblemente acompañados de cambios dinámicos en el sistema nervioso autónomo. Aunque se han realizado mediciones temporales de la actividad autonómica en madres y lactantes humanos, el análisis de los cambios a largo plazo sigue sin explorarse. Las madres de ratón pueden formar vínculos sociales con sus crías y tienen un corto período de embarazo y lactancia, lo que las hace útiles para el examen de los cambios fisiológicos desde el embarazo hasta la crianza de las crías. Por lo tanto, se utilizó un sistema de telemetría durante varias semanas para medir los cambios en el sistema nervioso autónomo y el comportamiento de las madres de ratón. Los resultados actuales mostraron que un electrocardiograma (ECG) puede registrarse de manera estable independientemente de los movimientos de las madres y el parto. El análisis de ECG mostró que la frecuencia cardíaca disminuyó gradualmente desde el embarazo hasta la lactancia, y la actividad simpática aumentó bruscamente a medida que las crías se desarrollaban. Además, el registro simultáneo de la conducta y el ECG en la jaula doméstica nos permitió comprender las influencias dependientes del comportamiento en el ECG, revelando así las características de la actividad nerviosa autónoma durante cada comportamiento. Por lo tanto, el presente método experimental ayuda a comprender cómo cambian las características fisiológicas de las madres desde el embarazo hasta la crianza de las crías, apoyando el desarrollo saludable de las crías.

Introducción

La relación madre-cría es única entre las relaciones establecidas por diversas especies animales debido a su gran impacto en el futuro de la descendencia1. En los seres humanos, el desarrollo y los comportamientos internos/externos de los niños están influenciados por el estilo de crianza, así como por el grado de abuso y negligencia 2,3. De manera similar, en roedores, la calidad del comportamiento materno tiene un impacto significativo en el desarrollo y el comportamiento de las crías 4,5,6. Por lo tanto, el seguimiento y el examen detallados de los comportamientos de crianza de las madres pueden proporcionar información sobre los mecanismos de las diferencias individuales en el desarrollo y el apoyo saludable de su descendencia.

Los estudios conductuales y fisiológicos han demostrado que las madres mamíferos experimentan cambios dinámicos de comportamiento y fisiológicos desde el embarazo hasta la lactancia. Cuando las hembras de mamíferos quedan embarazadas, la secreción de estrógenos y otras hormonas cambia en el comportamiento materno7. A medida que la descendencia crece y la frecuencia de lactancia disminuye, la secreción hormonal cambia dinámicamente hacia el estado pre-embarazo, poniendo fin a la expresión del comportamiento materno 8,9,10. Estos hallazgos sugieren que la interacción entre el sistema endocrino, el comportamiento materno y el desarrollo de la descendencia juega un papel importante en los cambios que experimentan las madres mamíferos durante el embarazo y la lactancia.

Los cambios conductuales y fisiológicos en las madres mamíferos desde el embarazo hasta la lactancia están estrechamente relacionados no solo con el sistema endocrino, sino también con el sistema nervioso autónomo11,12. Los estudios en humanos sugieren que el contacto madre-hijo induce cambios en el sistema nervioso autónomo tanto de las madres como de los bebés13. Varios estudios han medido la variabilidad del electrocardiograma (ECG) y de la frecuencia cardíaca en madres y lactantes humanos, demostrando que cada comportamiento altera la frecuencia cardíaca y el intervalo RR de los demás 14,15,16. Sin embargo, no está claro cómo los tres factores (sistema nervioso autónomo, comportamiento materno y desarrollo de la descendencia) interactúan entre sí desde el embarazo hasta la lactancia. Además, es difícil monitorear estas interacciones en humanos durante un largo período de tiempo porque el período de lactancia humana es de aproximadamente dos años.

A menudo se utilizan roedores en lugar de humanos en este tipo de estudios. El sistema nervioso autónomo de los roedores se ha medido bajo anestesia o cuando se aísla de las crías para evitar el registro inestable y el daño al dispositivo de medición; Por lo tanto, la medición es temporal en situaciones de comportamiento restringido 17,18,19. Es esencial observar el sistema nervioso autónomo en un ambiente donde los roedores puedan moverse libremente y comunicarse con otros, ya que las interacciones madre-cachorro pueden alterar el comportamiento y la fisiología de las madres 8,9,10,15.

Este método experimental se desarrolló para permitir el libre movimiento de la madre. En este método, se colocó un telémetro de ECG por vía subcutánea a una madre embarazada para evitar daños en el dispositivo y permitir un registro de ECG estable a largo plazo desde el embarazo hasta la lactancia. Las madres de ratones pueden exhibir comportamientos generales (autoaseo, ingesta de alimentos, etc.) y comportamientos maternos habituales en su jaula doméstica; por lo tanto, cada comportamiento y ECG se pueden observar y comparar fácilmente en el mismo ratón. Un grabador de unidades registró el comportamiento del ratón durante 24 horas durante un período de cuatro semanas. Este protocolo experimental nos permitió rastrear los cambios dinámicos en la actividad autonómica y el comportamiento desde el embarazo hasta el período de maternidad.

Protocolo

Todos los procedimientos fueron aprobados por el Comité de Ética de la Universidad de Azabu (#210319-30). Para el presente estudio se utilizaron ratones C57B/6J en el día de gestación (GD) 14 con un peso superior a 22 g. Los animales se obtuvieron de una fuente comercial (ver Tabla de Materiales). Los reactivos y el equipo necesarios para el estudio se enumeran en la Tabla de Materiales.

1. Preparación experimental

  1. Encienda el panel calefactor y cúbralo con papel de aluminio. Limpie todas las superficies con etanol al 70%.
  2. Todos los instrumentos quirúrgicos (tijeras, fórceps, pinzas finas y pinzas) se esterilizaron en autoclave con anticipación.
  3. Prepare las suturas estériles a la longitud deseada y manténgala lista.
  4. Cubra las mascarillas de anestesia con mascarillas de goma para garantizar la esterilidad y la comodidad del paciente.
  5. Inspeccione el telémetro de biopotencial del ratón (Figura 1A) para detectar cualquier anomalía o daño utilizando las aplicaciones tBase y LabChart (el software de análisis de datos fisiológicos) instaladas en una computadora capaz de registrar.

2. Implantación del telémetro

  1. Coloque el ratón en una caja de anestesia de inducción con isoflurano al 4%.
  2. Después de alcanzar el plano quirúrgico de anestesia, coloque el mouse en posición prona sobre el panel calentador. Colocar la máscara de anestesia en el ratón, manteniendo un nivel de isoflurano de 1%-2,0% y un flujo de oxígeno de 0,5-2 L/min.
    NOTA: En este protocolo no se utilizaron analgésicos, teniendo en cuenta sus efectos sobre el feto y las observaciones conductuales.
  3. Use un cortaúñas para quitar el pelo entre las orejas y desinfecte la piel tres veces con desinfectantes a base de yodo y alcohol al 70%.
  4. Para confirmar el plano quirúrgico de la anestesia, pellizque los dedos de las patas traseras del ratón con una pinza. Haga una incisión (2-3 cm) en la piel entre las orejas con unas tijeras. Inserte pinzas en la incisión para separar la piel y el músculo alrededor del cuello y el lado ventral, creando espacio en el lado ventral específicamente para la colocación de telemetría.
  5. Inserte el telémetro a través de la incisión entre las orejas y colóquelo en el espacio lateral ventral.
  6. Use pinzas para enrollar y agrupar los cables positivos y negativos. Coloque los cables en el espacio del cuello (Figura 1B).
  7. Suturar la incisión con una aguja de 13 mm y una sutura de 20 cm, teniendo cuidado de no dañar los electrodos.
  8. Coloque el ratón en posición supina y arranque el pelo alrededor de la clavícula con un cortaúñas. Desinfectar la piel tres veces alternando desinfectantes a base de yodo y alcohol al 70%.
  9. Haz un pequeño corte alrededor de la piel de la clavícula con unas tijeras y separa los músculos de la piel del cuello. Extraiga los cables positivo y negativo de la parte posterior del cuello con pinzas.
  10. Use fórceps para separar las glándulas salivales y exponer la apariencia en forma de "V" del músculo esternocleidomastoideo (SCM), que se origina en la clavícula y viaja oblicuamente a través de cada lado del cuello (Figura 1C, D).
  11. Ajuste la longitud del cable negativo para llegar al SCM cerca de la clavícula. Retire con cuidado el tubo de cable del cable negativo, asegurándose de que el electrodo de acero inoxidable enrollado en el interior se estire con pinzas finas.
  12. Pase la aguja de sutura (7 mm) con una sutura de 10 cm a través de la curva en forma de V del SCM para crear un bucle. Pase el electrodo de acero inoxidable desde el cable negativo a través de este bucle y colóquelo debajo del SCM cerca de la clavícula.
    1. Ate ligeramente el lazo para evitar dañar el SCM y repita tres veces para asegurar el electrodo de acero inoxidable. Asegure aún más el cable negativo colocando la segunda sutura en el lado craneal del SCM y atándola alrededor del tubo del cable negativo (Figura 1E).
  13. Realice secciones alrededor de la apófisis xifoides y separe cuidadosamente la piel del músculo de la apófisis xifoides hasta la clavícula.
  14. Extienda el cable positivo para alcanzar el proceso xifoides. Al igual que el cable negativo, retire el tubo del cable positivo, asegurándose de que el electrodo de acero inoxidable enrollado en el interior se estire con pinzas finas.
  15. Use una aguja de 18 G para crear un túnel debajo del músculo alrededor de la apófisis xifoides, luego coloque el electrodo de acero inoxidable en una aguja y páselo a través del músculo alrededor de la apófisis xifoides.
  16. Después de retirar la aguja, suturar ligeramente el electrodo de acero inoxidable enrollado al músculo alrededor de la apófisis xifoides con una aguja de sutura (7 mm) con una sutura de 10 cm (Figura 1D). Para asegurar aún más el cable positivo, coloque la segunda sutura en el lado craneal de la apófisis xifoides y átela alrededor del tubo del cable positivo.
  17. Cierre todas las incisiones con una aguja de sutura (13 mm) con una longitud de sutura de 20 cm (Figura 1E,F).
  18. Después de la implantación, coloque el ratón en una jaula limpia y coloque la jaula en la tBase, que actúa como receptor para la telemetría del ratón (Figura 1G). Encienda la computadora grabable y use la aplicación de software de análisis de datos instalada para recopilar datos de ECG. Compruebe que los datos del ECG muestren formas de onda normales (Figura 2A,B).
    NOTA: En caso de formas de onda anormales o ruido (como se muestra en la Figura 2C), vuelva a conectar los cables negativo y positivo bajo anestesia.
  19. Durante el período de recuperación de dos días, asegúrese de que el ratón reciba el tratamiento adecuado colocando gel de agua y comida en el fondo de la jaula. Registre solo el comportamiento de la jaula de inicio con una grabadora de unidad durante este período de recuperación.

3. Registro de los electrocardiogramas y del comportamiento en la jaula doméstica desde el embarazo hasta el destete

  1. Encienda las luces rojas durante la fase oscura porque la grabadora de la unidad no puede funcionar sin luz. Coloque la grabadora de unidad junto a la jaula de inicio para registrar el comportamiento. Registre el ECG utilizando la aplicación LabChart en la PC grabable. Antes de recopilar los datos de ECG, verifique la frecuencia de muestreo de ECG en LabChart.
    NOTA: En este protocolo, se eligió la grabadora de unidad porque se puede colocar en cualquier lugar. Además, en comparación con una cámara de vídeo, las grabadoras de unidad pueden grabar en un gran angular y utilizar menos capacidad de almacenamiento de datos (por ejemplo, grabar 24 horas con una grabadora de unidad utiliza unos 70 GB). En esta demostración, la frecuencia de muestreo de ECG en el software de análisis de datos se establece en 1 k/s.
  2. Después de encender la grabadora de la unidad, inicie LabChart en la computadora para registrar el comportamiento y el ECG.
    NOTA: En esta demostración, se utilizó una macro para registrar continuamente el ECG y guardar automáticamente los archivos cada 2 h. Este proceso repetitivo se ejecutó durante todo el experimento. Además, se seleccionó una tarjeta SD de 256 GB para fines de grabación, lo que permite aproximadamente 24 horas de recopilación de datos por día.
  3. Revise el mouse en busca de parto y anomalías corporales y muestree los datos de la grabadora de la unidad y la computadora grabable. El día en que la rata dio a luz a sus crías se considera como el día postnatal (DP) 0. Mida el peso de las crías todos los días después del nacimiento.
    NOTA: En este estudio, se recopiló el video de grabación de la grabadora de la unidad y el archivo de datos de ECG de la PC grabable todas las mañanas de 7:30 a 8:30. Además, para evitar el ruido del ECG de las vibraciones causadas por múltiples crías tocando a la madre, la camada se sacrificó a cuatro crías (la mitad de ellas eran machos y la otra mitad eran hembras).
  4. Después de revisar el mouse y recopilar los datos, devuelva todo a su posición original. Encienda la grabadora de la unidad y la computadora grabable. Inicie la aplicación LabChart.
    NOTA: Si se utiliza una macro para registrar el ECG, haga clic en el botón de macro e inicialice la macro seleccionando el botón de ejecución de la opción de administración .
  5. Una vez a la semana, reemplace la jaula por una nueva. Durante este proceso, incluya la ropa de cama, la mitad de la cual se usó anteriormente y la otra mitad es nueva.
    NOTA: Este proceso, que incluyó el muestreo de datos y los controles con ratones, se repitió desde el día 17 hasta el día postnatal (DP) 21.

4. Análisis de los ECG

  1. Para analizar los datos de ECG, utilice el software de análisis de datos. Inicie LabChart y abra el archivo de datos para el período de registro. Para analizar la variabilidad de la frecuencia cardíaca (VFC), haga clic en el botón VFC y ajuste la configuración de detección de latidos.
    NOTA: En esta demostración, seleccione la configuración personalizada y cambie la altura mínima del pico a 1,2 para el ajuste de la detección.
  2. Después de ajustar la configuración, revise todos los tiempos y elimine cualquier dato de ruido (como se muestra en la Figura 2C).
    NOTA: Si no se detecta una onda R, agréguela o modifíquela usando el botón HRV .
  3. Haga clic en el botón HRV y seleccione la vista del clasificador de ritmos. Elija todos los tiempos en la vista del clasificador de tiempos y, a continuación, seleccione la vista del informe en el botón HRV . Copie los datos de la vista del informe y péguelos en Excel.
    NOTA: Los resultados de la VFC, como se muestra en la Tabla 1, muestran los dominios de tiempo y espectro a través del software de análisis de datos, lo que permite la observación.

5. Categorización del etograma del comportamiento en jaulas caseras

  1. Revise todos los videos grabados para verificar si hay anomalías, como que la luz roja no se encienda durante la fase oscura y que la grabadora de la unidad no funcione.
    NOTA: El video se graba de la misma manera que los ECG, con clips de video capturados cada 2 h.
  2. Clasifique el etograma en función de parámetros como la postura de la madre durante el comportamiento, el tiempo dedicado al comportamiento y la ubicación donde ocurrió el comportamiento (Tabla 2) y, a continuación, observe el video de la grabadora de la unidad.

Resultados

Después de implantar el telémetro en la rata preñada, registramos los electrocardiogramas desde el embarazo hasta la lactancia en una jaula casera. La frecuencia de muestreo se estableció en 1 k/s. Para comparar el ECG de cada estado fisiológico de la madre rata evitando la influencia del ritmo circadiano, se analizaron los datos de 10 min de 23:32 a 23:42 en GD 17, parto, PD 0 y PD 21 del archivo de datos de 2 h (Figura 3, Tabla 1). Se eligió el tiempo comprendido entre las 23:32 y las 23:42 por representar los 10 minutos previos al nacimiento de la primera cría durante el parto. Este período de tiempo específico se seleccionó para demostrar la factibilidad de realizar análisis de datos durante el parto cuando había contracciones musculares. Durante todas las fases de análisis, el ratón exhibió comportamientos generales (beber, cavar, alimentarse, asearse) y maternales (construcción de nidos, lamer/acicalarse), como se observó en 6 de los 16 etogramas enumerados en la Tabla 2.

Los electrocardiogramas de la madre se registraron sin interferencia en el GD17, cuando el feto estaba dentro del cuerpo (Figura 3A) y durante el parto, cuando ocurrieron cambios físicos como contracciones musculares (Figura 3B). Además, los electrocardiogramas se registraron de manera estable desde el nacimiento de la cría (PD 0) hasta la PD 21 (Figura 3C,D) a pesar de varios comportamientos de lactancia. El análisis de ECG mostró que la frecuencia cardíaca disminuyó gradualmente, mientras que el intervalo RR aumentó gradualmente desde GD 17 hasta PD 21 (Tabla 1). El análisis de la VFC mostró que la relación LF/HF aumentó bruscamente de PD 0 a PD 21 (Tabla 1).

Los etogramas de las conductas maternas y generales registrados junto con el ECG se subdividieron, como se muestra en la Tabla 2. También confirmamos que los ECG podían medirse sin alteraciones de la forma de onda cuando las madres mostraban cualquiera de los comportamientos definidos en la Tabla 2, como alimentarse (Figura 4A, C) y agacharse (Figura 4B, D).

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Figura 1: Telemetría implantada en el día 14 de gestación en ratón. (A) Dos cables estaban conectados a un telémetro. El negro representa el plomo negativo y el blanco representa el plomo positivo. (B) Los cables negativo y positivo se agruparon y se colocaron en el cuello. El telémetro se colocó en el lado ventral. (C) Se retiró el cable del cuello y se expuso el SCM. (D) La telemetría se colocó en el lado ventral. El SCM está representado en rosa. La clavícula y la apófisis xifoides están representadas en gris. La línea negra indica el lead negativo. La línea naranja indica el plomo positivo. La línea azul representa la posición de sutura. (E) El cable negativo estaba conectado al SCM. El cable positivo estaba conectado alrededor del músculo xifoides. (F) Todas las incisiones (representadas por el círculo rojo) se cerraron con una sutura de 20 cm. (G) Configuración de captura de video usando una grabadora de unidad. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

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Figura 2: ECG registrado con el software de análisis de datos. (A) El ECG se registró durante 3 s. (B) ECG para cada latido del corazón. (C) Las líneas discontinuas rojas indican áreas donde no se registró el ECG. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

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Figura 3: ECG durante el embarazo, parto y lactancia. Los resultados del ECG del mismo ratón al mismo tiempo. (A) ECG en GD 17. (B) ECG durante el parto. (C) ECG en PD 0. (D) ECG en PD 21. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

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Figura 4: Registro de ECG durante la observación del comportamiento. Los ECG se registraron durante la construcción del etograma del mismo ratón en PD 6. (A) Imagen de la madre comiendo alimentos sólidos. (B) Imagen de la madre agachada sobre sus cachorros. (C) El electrocardiograma de la madre mientras ingiere alimentos. (D) El electrocardiograma de la madre mientras está agachada sobre sus crías. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

Tabla 1: Análisis de la variabilidad de la frecuencia cardíaca basado en el ECG desde el embarazo hasta la lactancia. El análisis de la variabilidad de la frecuencia cardíaca (VFC) se realizó a partir de los datos de ECG que se muestran en la Figura 3. Todos los análisis se mostraron para el mismo ratón y al mismo tiempo (23:32-23:42). RR promedio, el promedio de los intervalos de latido; Average Rate, la tasa promedio del ritmo; SDSD, la desviación estándar de la diferencia entre intervalos de batido sucesivos; RMSSD: raíz cuadrada media de las diferencias sucesivas del intervalo RR; pRR50, el porcentaje de diferencias de intervalo de tiempo mayores que una duración fija; Total, la potencia contenida en toda la gama de frecuencias; VLF, frecuencia muy baja; LF: baja frecuencia; HF, alta frecuencia; SD1; desviación estándar a lo largo del eje menor de la distribución de Poincaré; SD2, desviación estándar a lo largo del eje mayor de la distribución de Poincaré. Haga clic aquí para descargar esta tabla.

Tabla 2: Etogramas definidos. Todos los etogramas se definieron en función de parámetros como la postura, el tiempo empleado y el lugar que visitaron. Haga clic aquí para descargar esta tabla.

Discusión

En este método, en el que el telémetro se implantó en ratones preñados, el ECG pudo ser rastreado continuamente en el mismo ratón desde el embarazo hasta la lactancia. El ratón exhibió etogramas que incluían movimiento, indicando vigilia durante todos los períodos de análisis (23:32-23:42) desde GD 17 hasta PD 21. Además, los resultados presentados mostraron que la frecuencia cardíaca disminuyó gradualmente desde el embarazo hasta la lactancia. Se considera que esta disminución se debe a la normalización de la frecuencia cardíaca, ya que varios estudios han demostrado que la frecuencia cardíaca aumenta en las mujeres embarazadas debido al aumento del flujo sanguíneo11,12.

Además, la actividad simpática aumentó de PD 0 a PD 21 en el mismo ratón. Sin embargo, no hubo cambios en la actividad simpática o parasimpática de GD 17 a PD 0. Al igual que los datos simpáticos durante el embarazo, estudios previos no han informado de ningún cambio en la actividad simpática y parasimpática en ratas desde el día 4 hasta el día 18 de embarazo en comparación con los de ratas vírgenes20. En ratones, la actividad autonómica materna puede ser modulada por el desarrollo de crías. Sin embargo, se requieren más estudios para determinar si estas características de actividad autonómica son comunes entre las madres de ratón o están influenciadas por el estado de vigilia.

Algunos estudios previos en ratones midieron ECG durante el embarazo y la lactancia con limitaciones en el movimiento y el comportamiento natural debido a que la madre estaba aislada de las crías o bajo anestesia 17,18,19. Por el contrario, el método empleado en este estudio permitió que la madre se moviera libremente durante el registro del ECG, ya que la telemetría y el electrodo conectados al músculo se implantaron por vía subcutánea. En particular, el ECG se registró cuando la madre estaba comiendo y girando la cabeza hacia arriba, a pesar de que los electrodos negativos estaban adheridos al SCM.

Además, la implantación del dispositivo in vivo permitió un registro estable, incluso con contacto con crías que cohabitaban o vibraciones causadas por las actividades de la madre. Por ejemplo, el ECG se midió incluso cuando la madre exhibía autoacicalamiento (datos no mostrados) y se agachaba sobre las crías en la jaula de la casa. Sobre la base de estos resultados, este método es eficaz para realizar un seguimiento de los ECG de las madres que pasan su vida diaria con sus cachorros sin ninguna restricción en su comportamiento. Sin embargo, los ECG no se registraron cuando la telemetría utilizada en este estudio estaba a cierta distancia de la tBase; Por ejemplo, cuando las madres se movían hacia el soporte de comida o trepaban por la jaula. Por lo tanto, son necesarias mejoras en el entorno de las jaulas domésticas.

Este método también permite el registro de los electrocardiogramas mientras se realizan actividades como los comportamientos maternos y generales. Para registrar simultáneamente el comportamiento y el ECG en la jaula doméstica durante períodos prolongados, se utilizó un grabador de unidad5 en lugar de una cámara de video. Además, para analizar en detalle las conductas registradas, los etogramas se subdividieron en función de parámetros como la postura, el tiempo dedicado y otras condiciones tanto para las conductas maternas como para las generales. Los electrocardiogramas de las madres para cada comportamiento pudieron dividirse y compararse en el mismo día. Esta comparación pone de manifiesto cómo la actividad autonómica de una madre difiere entre los comportamientos maternos y generales en función del período de embarazo a lactancia.

En conclusión, este protocolo rastrea la interacción entre los tres factores: la actividad autónoma, el comportamiento de la madre y el desarrollo de las crías, y puede proporcionar información sobre las características y mecanismos de los cambios que ocurren en las madres desde el embarazo hasta el destete.

Divulgaciones

Los autores declaran no tener ningún conflicto de intereses.

Agradecimientos

Este estudio contó con el apoyo de JSPS KAKENHI (números de subvención JP 21H04981 y 30974521) y el Centro para la Diversidad, la Equidad y la Inclusión de la Universidad de Azabu.

Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
temporizador de repetición de 24 horasPanasonicWH3311BP
5-0 Sutura de nylonNatsume SeisakushoCo-23s-N2
Caja de anestesiaNatsume Seisakusho CoKN-1010W110× D110&veces; Máscara de anestesia H110mm
Natsume Seisakusho CoKN-1019-1
Máquina de anestesiaNatsume Seisakusho CoKN-1071-E
C57BL6 / J ratonesClea Japan, IncRatón de embarazo a los 14 días
Clip lightYazawa CorporationCLX60X02WH
Configurator SystemAdinstumentsTR190
grabadora de accionamientoTranscendTS-DP250A-32G
Soporte para alimentosClea Japan, IncCL-2802
IsofluranoFujiFilM099-06571
LabChart Pro V8AdinstumentsMLU260/8
LabChart8AdinstumentsMLS060/8
Mouse Biopotential TelemeterAdinstumentsMT10B
Aguja 18 G 1 1/2TerumoNN-1838R
Calentador de panelSANKO4976285145407
PowerLab 4/26AdinstumentsPL2604
Computadora grabableRatón mouse de computadoraK7-H
bombilla de luz rojaELPALDG1R-G-GWP254
Máscara de gomaNatsume Seisakusho CoTarjeta SD KN-1019-M
(256GB)TranscendTS256GUSD350VPuede grabar aproximadamente 24 h
Aguja de sutura 13 mmNatsume Seisakusho CoC-24-540-NO.0
Aguja de sutura 7 mmNatsume Seisakusho CoC-24-540-NO.0000
tBaseAdinstumentsMT110

Referencias

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