Artículo de método

Inducción de pequeñas colonias en Candida glabrate a través de la terapia fotodinámica mediada por Rose Bengal

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DOI:

10.3791/66549

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29 de marzo de 2024

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1Department of Microbiology and Immunology, College of Medicine, National Cheng Kung University, 2Department of Dermatology, National Cheng Kung University Hospital, College of Medicine, National Cheng Kung University, 3Department of Ophthalmology, National Cheng Kung University Hospital, College of Medicine, National Cheng Kung University, 4National Institute of Infectious Diseases and Vaccinology, National Health Research Institutes, 5Department of Internal Medicine, National Cheng Kung University Hospital, College of Medicine, National Cheng Kung University, 6Insititute of Basic Medical Sciences, College of Medicine, National Cheng Kung University, 7Department of Biochemistry and Molecular Biology, College of Medicine, National Cheng Kung University, 8Center of Applied Nanomedicine, National Cheng Kung University

* These authors contributed equally

En este artículo

Resumen

La importancia de las colonias pequeñas en la resistencia a los medicamentos de Candida spp. no se ha explorado completamente. La terapia fotodinámica antimicrobiana (aPDT) ofrece una estrategia prometedora contra las infecciones fúngicas resistentes a los medicamentos. Este estudio demuestra que la aPDT mediada por rosa de bengala desactiva eficazmente la Candida glabrata e induce colonias pequeñas, presentando un procedimiento único.

Resumen

Frente a una tasa de mortalidad del 40% en pacientes con candidemia, la Candida resistente a los medicamentos y sus pequeños mutantes siguen siendo un desafío importante para el tratamiento. La terapia fotodinámica antimicrobiana (aPDT) se dirige a múltiples estructuras fúngicas, a diferencia de los antibióticos/antifúngicos, lo que puede frustrar la resistencia. Los métodos tradicionales para inducir colonias pequeñas se basan en el bromuro de etidio o el fluconazol, que pueden influir en la susceptibilidad a los medicamentos y en las respuestas al estrés. Este estudio investigó la aplicación de luz verde (pico 520 nm) y fotosensibilizador de rosa bengala (RB) para combatir un aislado de Candida glabrata resistente a los medicamentos. Los hallazgos revelaron que el tratamiento con aPDT inhibió significativamente el crecimiento celular (reducción del ≥99,9%) e indujo eficazmente la formación de colonias pequeñas, como lo demuestra la reducción del tamaño y la pérdida de la tinción del indicador redox mitocondrial. Este estudio proporciona evidencia inicial de que aPDT puede inducir colonias pequeñas en una cepa de C. glabrata multirresistente in vitro, ofreciendo un enfoque potencialmente transformador para combatir las infecciones fúngicas resistentes.

Introducción

Las infecciones fúngicas, en particular las causadas por Candida albicans y Candida glabrata, cada vez más resistente a los medicamentos, representan una grave amenaza mundial1. Estas infecciones pueden ser mortales, especialmente para los pacientes hospitalizados y aquellos con sistemas inmunitarios debilitados. El aumento de la resistencia a los antifúngicos amenaza el control de la candidiasis invasiva, una infección fúngica grave con alta mortalidad, especialmente de Candida albicans2. Las cepas resistentes dificultan el tratamiento eficaz, lo que puede aumentar tanto la complejidad como las tasas de mortalidad. En el condado de Alameda, California, EE.UU ., C. glabrata se ha convertido en la especie invasora más prevalente3. Este cambio en la prevalencia y distribución de las especies de Candida puede estar influenciado por las prácticas de atención médica locales, la demografía de los pacientes, la utilización de agentes antifúngicos y la prevalencia de factores de riesgo para las infecciones por Candida.

Pequeños mutantes en Candida, que carecen de mitocondrias funcionales, revelan cómo este orgánulo afecta la respuesta a los medicamentos, la virulencia y la resistencia al estrés 4,5. C. glabrata forma fácilmente estas colonias, ganando sensibilidad a los polienos mientras la pierde ante los azoles6. La sensibilidad a los azoles y la función respiratoria están estrechamente relacionadas, y la disminución de la respiración conduce a la resistencia a través de la pérdida de ADN mitocondrial7. Se han aislado pequeñas colonias de C. glabrata con resistencia a los azoles a partir de muestras de heces humanas de un receptor de trasplante de médula ósea sometido a tratamiento con fluconazol8 y de frascos de hemocultivo de pacientes con infecciones del torrente sanguíneo9. Sus posibles implicaciones en la resistencia a los fármacos, la virulencia y la respuesta al estrés ponen de manifiesto su importancia clínica. Además, sus propiedades distintivas los convierten en herramientas valiosas para investigar cuestiones fundamentales en la biología mitocondrial5. A medida que continúa la investigación sobre mutantes pequeños, es probable que se amplíen sus aplicaciones tanto en la investigación clínica como en la básica.

Este estudio descubrió que la terapia fotodinámica (TFD) puede inducir colonias pequeñas en C. glabrata, ampliando la gama de métodos más allá de las técnicas tradicionales de exposición de C. glabrata al bromuro de etidio o fluconazol.

Protocolo

1. Cultivo de C. glabrata

NOTA: Para los experimentos se utiliza un C. glabrata multirresistente (C2-1000907) que es resistente a la mayoría de los agentes antifúngicos, incluido el fluconazol. Es posible que sea necesario adaptar las condiciones experimentales a la cepa específica, ya que pueden existir variaciones entre las diferentes cepas. Todos los experimentos utilizaron Candida en fase logarítmica cultivada a 25 °C (imitando la infección natural) para obtener consistencia. La falta de hifas de C. glabrata simplifica la cuantificación en comparación con C. albicans, que forma hifas a 37 °C10.

  1. Para preparar un cultivo de C. glabrata en fase logarítmica, elija una sola colonia de una placa de agar y transfiérala a un tubo de ensayo de vidrio con 3 mL de medio estéril de levadura peptona dextrosa (YPD) (ver Tabla de Materiales). Incubar durante 14-16 h a 25 °C con agitación (155 rpm, ángulo de 45° para aumentar la transmisión de aire al medio).
  2. Después de la incubación, diluir el cultivo con YPD fresco hasta un OD600 de 0,1 utilizando una técnica estéril. Incubar a 25 °C durante 6 h con agitación a 155 rpm. Verifique la fase logarítmica de C. glabrata midiendo el OD600. Apunte a 0,65-1,00, que corresponde a 1 × 10 7-1,5 × 107 células/mL.

2. Inducción de colonias pequeñas mediante bromuro de etidio, fluconazol y terapia fotodinámica

  1. Inducción de colonias pequeñas de bromuro de etidio
    1. Ajustar una suspensión de levadura a un diámetro exterior de600 de 0,1 (5 × 106 células/mL) con YPD hasta un volumen final de 3 mL, luego añadir 30 μL de caldo de bromuro de etidio (10 mg/mL) (véase la Tabla de Materiales) para una concentración final de 100 μg/mL.
    2. Incubar la suspensión de levadura durante la noche (16-18 h) a 25 °C, 155 rpm, ángulo de 45°. Ajuste a un diámetro exterior de600 de 0,65 (1 × 107 células/mL). Realice una serie de dilución de 10 veces en una placa de 96 pocillos agregando 20 μL de la suspensión de levadura ajustada a 180 μL de PBS por pocillo. Esto crea seis diluciones que van de 10-1 a 10-5.
    3. Seleccione 4 factores de dilución (por ejemplo, 100, 101, 102 y 103) y coloque 3 gotas (20 μL) cada una en 4 cuadrantes de placas de agar YPD (triplicado).
    4. Incubar las placas durante la noche a 37 °C. Seleccione cuadrantes con 5-80 colonias de las diluciones previamente elegidas para la tinción con cloruro de trifeniltetrazolio (TTC)11 (ver paso 3). Escanee placas a 1200 ppp con un escáner óptico a todo color de 48 bits.
  2. Inducción de colonias pequeñas de fluconazol
    NOTA: Para acelerar el proceso, utilice células T3 (una mezcla de células normales y pequeñas obtenidas después de 3 tratamientos con RB-PDT; consulte el paso 2.3) para la formación de colonias pequeñas inducidas por fluconazol. Esto se debe a que el tratamiento estándar suele dar lugar a una formación más lenta.
    1. Prepare y ajuste una suspensión de células de levadura como se describe en el paso 2.1.1.
    2. Incubar durante la noche (16-18 h) a 25 °C. Vuelva a ajustar el OD600 a 0,1.
    3. Transfiera 1 mL de la suspensión ajustada a un tubo estéril de 5 mL.
    4. Sumerja un bastoncillo de algodón estéril (15 cm de largo, con una punta de 0,9 cm x 2,6 cm, consulte la tabla de materiales) en la suspensión de levadura, asegurando el contacto con el fondo del tubo y girándolo para eliminar el exceso de líquido de la pared del tubo.
    5. Prepare las placas en la campana con agar Mueller-Hinton (consulte la tabla de materiales).
    6. Frote el algodón de un lado a otro en el agar, gírelo 60° dos veces, luego frote el perímetro para obtener una cobertura uniforme.
    7. Esterilice las pinzas sobre una llama durante 1 o 2 segundos, dejándolas enfriar brevemente, luego úselas para recoger los discos en blanco.
    8. Divida la placa en tres sectores iguales con un marcador. Coloque un disco en blanco en el centro de cada sector.
    9. Añadir 12,5 μL de caldo de fluconazol (2 mg/mL, ver Tabla de Materiales) a cada disco (25 μg/disco), mezclar bien para evitar burbujas e incubar a 37 °C durante 20-24 h.
    10. Realice la tinción TTC (consulte el paso 3). Escanee placas a 1200 ppp con un escáner óptico a todo color de 48 bits.
  3. Inducción de colonias pequeñas PDT
    NOTA: Diferentes hongos pueden producir diferentes números de colonias pequeñas después de la PDT. Es posible que algunas cepas no produzcan nada en absoluto.
    1. Prepare el sistema aPDT.
      NOTA: El procedimiento de configuración para el dispositivo del sistema aPDT sigue el método informado por Hung et al12. En resumen, el sistema aPDT consiste en una matriz de LED verdes con un pico a 520 nm (consulte la Tabla de materiales), que ilumina desde la parte inferior con una buena alineación con cada pocillo de una placa de 96 pocillos.
    2. Ajuste la suspensión de células de levadura en el medio YPD a un OD600 de 0,65 (aproximadamente 1 × 107 células/mL).
    3. Mezcle 1 mL de la suspensión de levadura con 111 μL de rosa de bengala al 2% (RB, Figura 1) (ver Tabla de Materiales) en un tubo de tapa redonda para obtener una concentración final de RB de 0.2%. Incubar la mezcla a 25 °C durante 15 min, girándola en un ángulo de 45° a 155 rpm.
    4. Transfiera la mezcla a un tubo de microcentrífuga de 1,5 ml y centrifuga a 16.100 x g durante 2,5 min (a temperatura ambiente).
    5. Deseche el sobrenadante y raspe suavemente el tubo cinco veces en el piso del capó para volver a suspender el pellet.
    6. Lave la suspensión con 1x PBS cuatro veces para quitar todo el RB. A cada lavado le sigue la resuspensión del pellet con un breve vórtice o pipeteo para una resuspensión completa.
      1. Después del lavado final, agregue 1000 μL de PBS. La solución es de color rosa claro. Transfiera 200 μL de la suspensión de levadura cargada de RB lavada a cada uno de los tres pocillos en una placa de 96 pocillos (triplicado).
    7. Coloque la placa de 96 pocillos en el sistema de iluminación fotodinámica con bombillas LED que emiten luz verde desde abajo. Apague las luces de la habitación para garantizar una iluminación uniforme y evitar interferencias. Active el sistema de luz LED para administrar la dosis de PDT de 4,38 J/cm2 durante 2 min; Asegúrese de que el sistema esté correctamente alineado con los pozos.
    8. Después de la irradiación, diluya la suspensión de levadura en una placa de 96 pocillos. Agregue 20 μL de suspensión de levadura a un pocillo que contenga 180 μL de PBS, creando una dilución de 10 veces. Repita para las diluciones restantes para lograr un rango de 10-1 a 10-5.
    9. Elija cuatro factores de dilución (por ejemplo, 10-2 a 10-5) en función del ajuste de la concentración de la célula de levadura.
    10. Para cada factor de dilución, coloque 3 gotas (20 μL cada una) por cuadrante en placas de agar YPD.
    11. Después de que la suspensión de levadura se haya absorbido completamente, alrededor de 10 minutos por las placas de agar, invierta e incube durante la noche a 37 ° C.
    12. Defina T0 como el parental control de C. glabrata sin tratamiento con PDT. Prepare los hongos T0 en la fase de crecimiento del tronco como se ha descrito anteriormente y expóngalos a una luz verde de 4,38 J/cm2 en presencia de 0,2% de RB. Esta condición de PDT inhibe consistentemente de 3 a 3.5 logs de crecimiento fúngico.
      1. Denote los hongos supervivientes como T1 y expóngalos a la misma dosis de PDT nuevamente después de que se expandan in vitro a una fase de crecimiento logarítmico. Los hongos que sobreviven después de la segunda PDT se denotan como T2 y así sucesivamente.
    13. Al día siguiente, elija cuadrantes con recuentos de colonias entre 5 y 80. Cuente el número de colonias en cada cuadrante y calcule el título con la siguiente fórmula: Unidad formadora de colonias (UFC)/mL = Número de colonias (promedio del triplicado) × Factor de dilución × 50.
    14. Realice la tinción TTC (consulte el paso 3). Escanee la placa como se describió anteriormente (paso 2.2).

3. Análisis de la función mitocondrial (prueba de tinción de TCC)

NOTA: TTC es un indicador redox y un aceptor de electrones. Se vuelve rojo cuando los compuestos blancos son rotos por los electrones11. Tenga en cuenta que no todas las células forman necesariamente colonias visibles dentro de las 24 horas posteriores al cultivo en una placa de agar. Las colonias con mitocondrias funcionales se vuelven rojas, mientras que las que tienen mitocondrias no funcionales permanecen blancas. Esto permite la diferenciación entre colonias con diferente funcionalidad mitocondrial.

  1. Después del tratamiento, diluya las suspensiones de Candida en placas de agar YPD de acuerdo con la densidad celular deseada para obtener colonias distintas para una fácil visualización y tinción.
  2. Después de 24 h de crecimiento a 37 °C, se forman colonias visibles a partir de una sola célula. Pipetear 20 μL de TTC al 20% directamente en el centro de cada colonia.
  3. Después de la absorción completa, alrededor de 10 min de TTC por parte de las colonias, incubar a 37 °C durante 30-40 min.

4. Cinética de crecimiento de C. glabrata normal y pequeña

NOTA: Se compararon tres cepas de levadura: C. glabrata C2-1000907 T0 (aislado clínico sin tratamiento con PDT), T3n (C. glabrata C2-1000907 después de 3 RB-PDT consecutivas exhibiendo colonias con un diámetro promedio de 1.5 ± 0.8 mm similar a las células parentales), y T3p (colonias pequeñas de C. glabrata C2-1000907 después de 3 RB-PDT consecutivas).

  1. Ajuste la suspensión de células de levadura en medio YPD a un OD600 de 0,1 (5 × 106 células/mL) en un tubo de 3 mL.
  2. Mida automáticamente el diámetro exterior600 del cultivo estático cada 20 min utilizando el lector de microplacas multimodo (ver Tabla de Materiales) durante 24 h.

Resultados

Los datos se presentan como la media con ± error estándar y se obtuvieron de tres experimentos independientes, con al menos triplicados en cada grupo. Los datos experimentales, incluidos los recuentos de colonias, las mediciones de OD600 y los resultados de tinción con TTC, se graficaron y analizaron estadísticamente utilizando gráficos y software estadístico (ver Tabla de Materiales). Para el análisis de los datos se utilizó un ANOVA de un factor o prueba t , y se consideró significativo un valor de p <0,05. El escaneo se realizó con un escáner óptico a todo color de 48 bits a una resolución de 1200 ppp, y las mediciones posteriores de los diámetros de las colonias se realizaron utilizando el software ImageJ.

Como se muestra en las curvas de crecimiento de la Figura 2, los mutantes pequeños de C. glabrata C2-1000907 (T3p) mostraron un crecimiento más lento en comparación con los hongos parentales no tratados de tamaño regular (T0). Cuando C. glabrata se mezcló con 0,2% de RB durante 15 min y se expuso a 4,38 J/cm2 de luz verde (tratamiento con PDT), el título de los hongos disminuyó de 107,5 UFC/mL a 104,5 UFC/mL (al menos 3 logs, Figura 3) en comparación con el grupo de control (solo RB), que tenía una densidad celular de alrededor de 107 UFC/mL. Además, después de las aPDT, se observaron colonias pequeñas. Estas pequeñas colonias tuvieron un tamaño promedio de 0,4 mm ± 0,25 mm en lugar del tamaño habitual de 1,5 mm ± 0,8 mm (Figura 4A). Las colonias de pequeño tamaño con disfunción mitocondrial se pueden identificar por su tamaño y color después de la tinción con TTC al 20%. Las colonias pequeñas que mantuvieron un color blanco (Figura 3B, flechas blancas) exhibieron disfunción mitocondrial, mientras que algunas colonias más pequeñas de color rojo y colonias de tamaño normal conservaron la función mitocondrial normal (Figura 4B). El agente intercalante tradicional de ADN, bromuro de etidio (Figura 4C) y fluconazol (Figura 4D), puede inducir eficazmente mutantes pequeños de Candida. La difusión en disco es un método sencillo para definir la susceptibilidad a los fármacos en los hongos. En la Figura 4D, una clara zona circular sin crecimiento rodeaba el disco de fluconazol que contenía 25 μg de fluconazol en el cultivo T0 (sin PDT), lo que indica una menor resistencia a los fármacos en este hongo parental. No obstante, la C. glabrata C2-1000907 todavía se define como una cepa resistente por la mínima concentración de inhibición hacia fluconazol (datos no mostrados) y el diámetro de la zona clara. En el cultivo T3, se formaron muchas colonias pequeñas cerca del disco (flecha, panel inferior), lo que sugiere resistencia a los medicamentos después de tres tratamientos repetidos con PDT.

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Figura 1: Estructura molecular de la rosa de Bengala (RB). Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

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Figura 2: Curvas de crecimiento de C. glabrata C2-1000907 24 h después de RB-PDT repetitivo. Se compararon las curvas de crecimiento de tres cepas: C. glabrata C2-1000907 T0 (células parentales vírgenes), T3n (colonias con tamaño normal después de 3 tratamientos repetidos) y T3p (colonias pequeñas después de 3 tratamientos repetidos). En comparación con T0 y T3n, las colonias T3p exhibieron una tasa de crecimiento significativamente más lenta (n = 3, p < 0.05). Todas las células se cultivan en medio YPD. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

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Figura 3: Inhibición del crecimiento de C. glabrata C2-1000907 después de aPDT. Un solo tratamiento con aPDT con una dosis de luz de 4,38 J/cm² y 0,2% de RB inhibió significativamente el crecimiento de C. glabrata C2-1000907 en 3 logaritmos en comparación con el control naïve (p < 0,0001, prueba t no apareada). Las barras de error representan la media ± SEM, los datos se agrupan a partir de 3 experimentos independientes. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

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Figura 4: Análisis de la disfunción mitocondrial mediante tinción con cloruro de trifeniltetrazolio (TCC). (A) C. glabrata C2-1000907, 24 h después del tratamiento con aPDT (0,2% RB, 4,38 J/cm² luz verde), mostró una distribución bimodal del tamaño de las colonias, con colonias grandes (1,5 mm ± 0,8 mm) y pequeñas (pequeñas) (0,4 mm ± 0,25 mm). (B) La tinción con TCC reveló que las colonias grandes eran funcionales, ya que se volvían rojas, mientras que las colonias pequeñas no funcionaban, ya que permanecían blancas. (C) Las colonias pequeñas también fueron inducidas por el tratamiento con bromuro de etidio (100 μg/mL durante 30-40 min) y (D) fluconazol (25 μg/mL). Una clara zona circular sin crecimiento rodeaba el disco de fluconazol que contenía 25 μg de fluconazol en el cultivo T0 (sin PDT), lo que indica susceptibilidad. En el cultivo T3, se formaron muchas colonias pequeñas cerca del disco (flecha, panel inferior), lo que sugiere resistencia a los medicamentos después de tres tratamientos repetidos con PDT. Barra de escala: 1 mm. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

Discusión

Este estudio revela que la PDT es el primer método reportado para inducir la formación de colonias pequeñas en Candida, superando los efectos establecidos del bromuro de etidio y el fluconazol. Esta nueva observación requiere una mayor exploración para desentrañar sus implicaciones tanto para la erradicación de hongos mediante la disminución de la virulencia como para la aparición de mecanismos de resistencia.

La TFD mediada por RB inhibe eficazmente el crecimiento de C. glabrata, lo que sugiere un posible enfoque de tratamiento alternativo para las infecciones por Candida. Como fotosensibilizador activado por la luz, RB produce oxígeno singlete y especies reactivas de oxígeno (ROS) cuando se expone a una longitud de onda específica. Este estrés oxidativo causa daño a componentes celulares esenciales como lípidos, proteínas y ácidos nucleicos13, lo que conduce a la disfunción mitocondrial, como se muestra en el presente estudio. Esto dificulta que Candida desarrolle resistencia a través de los mecanismos convencionales observados con los medicamentos antifúngicos estándar.

Las tres cepas de levadura utilizadas en este estudio, T0, T3n y T3p, exhiben patrones de crecimiento distintos. La T0 permanece sin tratamiento, mientras que la T3n y la T3p se someten a RB-PDT tres veces. T3n muestra colonias de tamaño normal, mientras que T3p exhibe colonias pequeñas. El crecimiento más lento de las colonias pequeñas puede indicar alteraciones en la energía celular y el metabolismo. El fenotipo pequeño, a menudo asociado con la disfunción mitocondrial4, podría conducir a un deterioro de la respiración aeróbica, lo que influye en la cinética general del crecimiento. El deterioro de la respiración aeróbica en colonias pequeñas puede afectar su virulencia, susceptibilidad a los medicamentos o capacidad para persistir en diferentes entornos. Esta conexión tiene implicaciones clínicas potenciales y proporciona vías para futuras direcciones de investigación.

El bromuro de etidio, un agente intercalante del ADN, inhibe la síntesis de ADN mitocondrial y degrada el ADN mitocondrial existente, transformando a Candida en pequeñas colonias con disfunción mitocondrial14. El fluconazol, comúnmente utilizado para tratar las infecciones por Candida, puede inducir resistencia a los medicamentos y el desarrollo de pequeñas colonias en C. glabrata6. Los mutantes pequeños pueden presentar resistencia a los fármacos azoles a través de la activación del factor de transcripción PDR1 y su regulación de los genes CDR1 y CDR215. Además, debido a la pérdida parcial o completa del ADN mitocondrial, la función mitocondrial se ve comprometida16.

La TFD ha demostrado eficacia en la reducción de la virulencia bacteriana17, la inducción de la susceptibilidad a los antibióticos18 y la reducción de la formación de biopelículas19 en las bacterias. Los estudios sobre la TFD frente a las infecciones fúngicas son limitados20. Este descubrimiento plantea preguntas intrigantes sobre cómo RB-PDT afecta a las mitocondrias en C. glabrata. Para comprender completamente cómo RB-PDT afecta a las células de levadura, es crucial comprender los mecanismos moleculares que causan las variaciones en el crecimiento. Sin embargo, los mutantes pequeños inducidos por PDT están actualmente poco estudiados, y sus fundamentos mecanicistas detallados siguen sin estar claros. Se necesita más investigación para determinar si hay alguna diferencia entre las pequeñas colonias creadas por varios métodos. Comprender cómo se forman las petites en las especies de Candida es importante para estudiar la relación entre la función mitocondrial y la patogenicidad. Además, los mutantes pequeños pueden servir como modelo para explorar los mecanismos de resistencia a los fármacos antifúngicos.

El presente estudio, si bien proporciona información valiosa sobre los efectos de la PDT mediada por RB en C. glabrata y la aparición de colonias pequeñas, tiene ciertas limitaciones que deben tenerse en cuenta. En primer lugar, el estudio se centró principalmente en experimentos in vitro, y la traslación de estos hallazgos a entornos clínicos justifica una mayor investigación. Además, los mecanismos moleculares específicos que subyacen a la formación de pequeñas colonias después de RB-PDT y sus posibles implicaciones para la resistencia a los fármacos antifúngicos requieren una exploración más profunda. Además, si bien el estudio comparó los patrones de crecimiento de diferentes cepas de levadura, los análisis moleculares y genéticos adicionales podrían proporcionar una comprensión más profunda de los cambios metabólicos y genéticos asociados con la formación de colonias pequeñas.

Además, en este estudio no se abordó la posible variabilidad en la respuesta a RB-PDT entre diferentes aislados clínicos de C. glabrata , lo que pone de manifiesto la necesidad de investigaciones más amplias sobre cepas específicas. Los estudios futuros que aborden estas limitaciones serán cruciales para una comprensión más completa de las implicaciones de la TFD mediada por RB y la aparición de colonias pequeñas en el contexto de las estrategias de tratamiento antifúngico.

En resumen, esta investigación revela que aPDT induce mutantes pequeños de C. glabrata (C2-1000907) con función mitocondrial alterada. Este mecanismo único podría ofrecer un nuevo método para los estudios antifúngicos. El mecanismo de acción preciso que subyace a las pequeñas colonias inducidas por PDT aún no se ha dilucidado, y la exploración de las posibles diferencias con otros métodos será crucial para optimizar las estrategias terapéuticas.

Divulgaciones

Los autores declaran no tener conflicto de intereses.

Agradecimientos

Este trabajo ha recibido financiación del Ministerio de Ciencia y Tecnología de Taiwán [MOST 110-2314-B-006-086-MY3], la Universidad Nacional Cheng Kung [K111-B094], [K111-B095], el Hospital Universitario Nacional Cheng Kung, Taiwán [NCKUH-11204031], [NCKUMCS2022057].

Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
0,22 y mu; m filtroMerck, Taipei, TaiwánMillex, SLGVR33RS
Tubo de microfuga de 1,5 mLNeptune, San Diego, EE. UU.# 3745
20% Cloruro de trifeniltetrazolio (TTC)Sigma-Aldrich, MO, EE. UU.T8877
Tubo de fondo redondo de polipropileno de 5 mLCorning, AZ, EE. UU.352059
Tubo de fondo redondo de 5 ml con tapa de filtro de celdasCorning, AZ, EE. UU.Falcon, #352235
placa de 96 pocillosAlpha plus, Taoyuan Hsien, Taiwán#16196
AgarBRS, Tainan, TaiwánAG012
Disco en blancoAdvantec, Tokio, Japónde 49005040
Eppendorf, Reino Unido5415R
Solución de bromuro de etidioSigma-Aldrich, MO, EE. UUE1510
Fluconazol, 2 mg/mLPfizer, NY, EE. UU. BC18790248
Prisma GraphPad7.0software GraphPad
Tira de diodo emisor de luz verde (LED)Nanyi electronics Co., Ltd, Tainan, Taiwán5050Onda de excitación: 500 ~ 550 nm
Baja temperatura. Incubadoras de batidoYihder, Taipei, TaiwánLM-570D (R)
Hisopos de algodón para el cuidado de la bocaGood Verita Enterprise, Taipéi, Taiwán161357
Muller Hinton II agarBD biosciences, California, EE. UU.211438
Lector de microplacas multimodoSpectraMax i3x
OD600 EspectrofotómetroBiochrom, Londres, Reino UnidoUltrospec 10
Rose BengalSigma-Aldrich, EE. UU330000concentración de stock 40 mg/mL = 4%, preparar en PBS, almacenado a 4 & deg; C
Tubo de vidrio esterilizadoSunmei, Tainan, TaiwánAK45048-16100
Extracto de levadura Peptona Dextrosa MedioHIMEDIA, IndiaM1363
Centrífuga . Versión del .

Referencias

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