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Artículo de método

Análisis introductorio y validación de datos de secuenciación CUT&RUN

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DOI:

10.3791/67359

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13 de diciembre de 2024

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En este artículo

Resumen

Este protocolo guía a los principiantes en bioinformática a través de una línea de análisis introductoria de CUT&RUN que permite a los usuarios completar un análisis inicial y la validación de los datos de secuenciación de CUT&RUN. Completar los pasos de análisis descritos aquí, combinados con la anotación de picos aguas abajo, permitirá a los usuarios extraer información mecanicista sobre la regulación de la cromatina.

Resumen

La técnica CUT&RUN facilita la detección de las interacciones proteína-ADN en todo el genoma. Las aplicaciones típicas de CUT&RUN incluyen la creación de perfiles de cambios en las modificaciones de la cola de histonas o el mapeo de la ocupación de la cromatina del factor de transcripción. La adopción generalizada de CUT&RUN está impulsada, en parte, por las ventajas técnicas sobre ChIP-seq convencional que incluyen menores requisitos de entrada de celdas, menores requisitos de profundidad de secuenciación y mayor sensibilidad con una señal de fondo reducida debido a la falta de agentes de reticulación que de otro modo enmascararían los epítopos de anticuerpos. La adopción generalizada de CUT&RUN también se ha logrado gracias al generoso intercambio de reactivos por parte del laboratorio de Henikoff y el desarrollo de kits comerciales para acelerar la adopción por parte de los principiantes. A medida que aumenta la adopción técnica de CUT&RUN, el análisis y la validación de la secuenciación de CUT&RUN se convierten en cuellos de botella críticos que deben superarse para permitir la adopción completa por parte de los equipos de laboratorio predominantemente húmedos. El análisis CUT&RUN suele comenzar con controles de calidad de las lecturas de secuenciación sin procesar para evaluar la profundidad de la secuenciación, la calidad de la lectura y los posibles sesgos. A continuación, las lecturas se alinean con un ensamblaje de secuencia genómica de referencia y, posteriormente, se emplean varias herramientas bioinformáticas para anotar las regiones genómicas del enriquecimiento de proteínas, confirmar la interpretabilidad de los datos y extraer conclusiones biológicas. Aunque se han desarrollado múltiples canales de análisis in silico para soportar el análisis de datos de CUT&RUN, su compleja estructura de múltiples módulos y el uso de múltiples lenguajes de programación hacen que las plataformas sean difíciles para los principiantes en bioinformática que pueden carecer de familiaridad con múltiples lenguajes de programación pero desean comprender el procedimiento de análisis de CUT&RUN y personalizar sus canales de análisis. Aquí, proporcionamos un protocolo de canalización de análisis CUT&RUN paso a paso en un solo idioma, diseñado para usuarios con cualquier nivel de experiencia en bioinformática. Este protocolo incluye la realización de controles de calidad críticos para validar que los datos de secuenciación son adecuados para la interpretación biológica. Esperamos que seguir el protocolo introductorio proporcionado en este artículo, combinado con la anotación de picos aguas abajo, permita a los usuarios extraer información biológica de sus propios conjuntos de datos de CUT&RUN.

Introducción

La capacidad de medir las interacciones entre las proteínas y el ADN genómico es fundamental para comprender la biología de la regulación de la cromatina. Los ensayos eficaces que miden la ocupación de la cromatina para una proteína determinada proporcionan al menos dos datos clave: i) la localización genómica y ii) la abundancia de proteínas en una región genómica determinada. El seguimiento de los cambios en el reclutamiento y la localización de una proteína de interés en la cromatina puede revelar loci diana directa de la proteína y revelar las funciones mecanicistas de esa proteína en los procesos biológicos basados en la cromatin....

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Protocolo

NOTA: La información sobre los archivos fastq de CUT&RUN en GSE126612 está disponible en la Tabla 1. La información relacionada con las aplicaciones de software utilizadas en este estudio se enumera en la Tabla de Materiales.

1. Descargar el pipeline de Easy-Shells_CUTnRUN desde su página de Github

  1. Abra el terminal desde el sistema operativo.
    NOTA: Si el usuario no está seguro de cómo abrir el terminal en macOS y Windows, revise esta página web (https://discovery.cs.illinois.edu/guides/System-Setup/terminal/). Para Linux, revise esta página web (https://www.geeksforgeeks.org/ho....

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Resultados

La calidad y el recorte del adaptador conservan las lecturas con alta calidad de secuenciación
Las técnicas de secuenciación de alto rendimiento son propensas a generar errores de secuenciación, como "mutaciones" de secuencia en las lecturas. Además, los dímeros del adaptador de secuenciación se pueden enriquecer en conjuntos de datos de secuenciación debido a una mala extracción del adaptador durante la preparación de la biblioteca. Los errores de secuenciación excesivos, como las mutaciones de lectu.......

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Discusión

La capacidad de mapear la ocupación de proteínas en la cromatina es fundamental para realizar estudios mecanicistas en el campo de la biología de la cromatina. A medida que los laboratorios adoptan nuevas técnicas de laboratorio húmedo para perfilar la cromatina, la capacidad de analizar los datos de secuenciación de esos experimentos de laboratorio húmedo se convierte en un cuello de botella común para los científicos de laboratorio húmedo. Por lo tanto, describimos un protocolo introdu.......

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Divulgaciones

Los autores declaran no divulgar.

Agradecimientos

Todas las figuras ilustradas fueron creadas con BioRender.com. CAI reconoce el apoyo brindado a través de un Premio al Investigador de Carrera Temprana de la Alianza para la Investigación del Cáncer de Ovario, una Subvención Aceleradora de la Fundación Forbeck y el Premio Nacional de Investigación de Detección Temprana de la Alianza de Cáncer de Ovario de Minnestoa.

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
bedGraphToBigWigENCODEhttps://hgdownload.soe.ucsc.edu/admin/exe/Software para comprimir y convertir recuentos de lecturas bedGraph a bigWig
bedtools-2.31.1The Quinlan Lab @ la U. de Utahhttps://bedtools.readthedocs.io/en/latest/index.htmlSoftware para procesar archivos bam/bed/bedGraph
bowtie2 2.5.4UniversidadJohns Hopkinshttps://bowtie-bio.sourceforge.net/bowtie2/index.shtmlSoftware para crear el índice de pajarita y realizar la alineación
CollectInsertSizeMetrics (Picard)Broad institutehttps://github.com/broadinstitute/picardSoftware para realizar análisis de distribución de tamaño de plaquita
Software CutadaptNBIShttps://cutadapt.readthedocs.io/en/stable/index.html para realizar el recorte de adaptadores
Deeptoolsv3.5.1Max Planck Institutehttps://deeptools.readthedocs.io/en/develop/index.htmlSoftware para realizar análisis de correlación de coeficiente de Pearson, análisis de componentes principales y análisis de mapas de calor/gráficos promedio
FastQC versión 0.12.0Babraham Bioinformaticshttps://github.com/s-andrews/FastQC Software para verificar la calidad del archivo fastq
Interventionv0.6.1Biología Computacional & Regulación génica - Grupo Mathelierhttps://intervene.readthedocs.io/en/latest/index.htmlSoftware para realizar análisis de diagramas de Venn utilizando archivos
de picos MACSv2.2.9.1Iniciativa de Chan Zuckerberghttps://github.com/macs3-project/MACS/tree/macs_v2Software para llamar picos
MACSv3.0.2Iniciativa de Chan Zuckerberghttps://github.com/macs3-project/MACS/tree/masterSoftware para llamar picos
Samtools-1.21Wellcome Sanger Institutehttps://github.com/samtools/samtools Software para procesar archivos sam/bam
SEACRv1.3Howard Hughes Medial Institutehttps://github.com/FredHutch/SEACRSoftware para llamar a los picos
SRA Toolkit Release 3.1.1NCBIhttps://github.com/ncbi/sra-tools Software para descargar SRR de GEO
Trim_Galore v0.6.10Babraham Bioinformaticshttps://github.com/FelixKrueger/TrimGaloreSoftware para realizar un recorte de calidad y precisión

Referencias

  1. Hainer, S. J., Fazzio, T. G. High-resolution chromatin profiling using CUT&RUN. Curr Protoc Mol Biol. 126 (1), e85(2019).
  2. Zhang, Y., et al. Model-based analysis of ChiP-Seq (MACS). Genome Biology. 9 (9), R137(2008).
  3. Xu, S., Grullon, S., Ge, K., Peng, W.

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Reimpresiones y permisos

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