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Artículo de método

Investigación de los efectos de la terapia infrarroja en los huesos después del entrenamiento de ejercicios en cinta rodante de alta intensidad

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DOI:

10.3791/68502

⸱

22 de agosto de 2025

 ,  ,  , 
1School of Exercise and Health, Shanghai University of Sport, 2College of Athletic Performance, Shanghai University of Sport, 3Institute of Orthopedic Surgery, Xijing Hospital, Air force Medical University

* These authors contributed equally

En este artículo

Resumen

El entrenamiento prolongado de ejercicios en cinta rodante de alta intensidad inhibe la formación ósea y promueve la reabsorción ósea en ratones, lo que resulta en una disminución de la masa ósea. Aquí, presentamos un protocolo para examinar los efectos de la terapia infrarroja en las alteraciones del metabolismo óseo inducidas por el ejercicio de alta intensidad. Se requieren más estudios mecanicistas para dilucidar las vías moleculares subyacentes.

Resumen

El tejido óseo es un órgano importante que soporta la carga del cuerpo humano. El ejercicio moderado mejora la masa ósea a través de la carga mecánica, mientras que el ejercicio de alta intensidad puede suprimirla. La terapia infrarroja mejora la circulación, reduce el dolor / inflamación y ayuda a la reparación de tejidos. Este artículo presenta un protocolo para dilucidar los efectos moduladores de la terapia infrarroja en los trastornos metabólicos esqueléticos inducidos por el ejercicio de alta intensidad y sus mecanismos moleculares. En este estudio, 24 ratones de 6 semanas de edad se dividieron aleatoriamente en grupos de control (CTR, N = 8), entrenamiento de ejercicios en cinta rodante de alta intensidad (HIT, N = 8) y terapia infrarroja después del ejercicio en cinta rodante de alta intensidad (IRT, N = 8). Los dos últimos grupos fueron entrenados durante 8 semanas. En la primera semana, los ratones se sometieron a un entrenamiento de aclimatación en cinta rodante. En la segunda semana, los ratones se ejercitaron a una velocidad de 24 m/min durante 50 min, que aumentó a razón de 1 m/min y 10 min cada semana hasta alcanzar los 28 m/min durante 80 min, con un gradiente de 5° durante 6 días. En la quinta semana, los ratones del grupo HIT fueron sometidos a una intervención de terapia infrarroja de cuerpo entero, con la temperatura controlada entre 42 °C y 45 °C. Todo el proceso de tratamiento duró ~ 40 min, 3 veces por semana. Los resultados mostraron que en el grupo HIT en comparación con los del grupo CTR, el volumen óseo / volumen total y el número trabecular disminuyeron significativamente, la separación trabecular aumentó significativamente, los genes relacionados con la osteogenia de Atf4, Runx2 y Ocn se regularon a la baja, y los genes relacionados con los osteoclastos de Ctsk y Mmp9 fueron regulados al alza. Los resultados de micro-CT de los ratones del grupo IRT no mostraron diferencias significativas, pero los genes relacionados con la osteogénesis Alp, Atf4, Runx2, Ocn y Osx se regularon al alza en el fémur. Además, el gen Ctsk relacionado con los osteoclastos se reguló a la baja. El ejercicio de alta intensidad a largo plazo en cinta rodante puede reducir la masa ósea. Si bien la terapia infrarroja no afecta la densidad mineral ósea, puede mejorar el metabolismo óseo.

Introducción

La osteoporosis (OP) es una de las enfermedades óseas metabólicas sistémicas más comunes, particularmente prevalente entre los ancianos, y representa un importante problema de salud mundial1. La OP se caracteriza principalmente por una disminución de la densidad mineral ósea (DMO), la calidad ósea y la resistencia ósea, lo que aumenta el riesgo de fracturas óseas2. La prevención y el tratamiento de la OP son cruciales para mejorar la calidad de vida humana, abarcando enfoques como la terapia farmacológica, la ingesta adecuada de calcio y vitamina D, la reducción del tabaquismo y el consumo de alcohol, y el ejercicio físico temprano para aumentar y mantener el nivel máximo de masa ósea 3,4.

El hueso, como marco estructural del cuerpo, proporciona una forma fundamental y protege los órganos internos. Bajo la regulación del sistema nervioso, el hueso facilita varios movimientos durante las contracciones musculares. A lo largo de la vida, el hueso sufre una formación, reabsorción y remodelación continuas. Los osteoclastos reabsorben continuamente el hueso viejo, mientras que los osteoblastos forman y mineralizan hueso nuevo. Estos procesos están estrechamente acoplados y regulados mutuamente, manteniendo un equilibrio dinámico en el recambio óseo5. Numerosos estudios han demostrado que el ejercicio físico adecuado (como el ejercicio aeróbico y el entrenamiento de resistencia) puede prevenir y tratar eficazmente el OP6. El ejercicio influye en el metabolismo óseo al modular el estrés mecánico en el esqueleto (como el impacto en el suelo, el choque y la tensión del sitio de unión muscular) y los factores bioquímicos en la circulación sanguínea (como hormonas y citocinas), promoviendo así la salud ósea7. Sin embargo, el ejercicio prolongado de alta intensidad puede afectar negativamente la salud ósea, lo que lleva a la pérdida ósea. Por ejemplo, después de 8 semanas de correr en cinta rodante a intensidades altas, moderadas y bajas (a una velocidad de 15 m/min) en un modelo de ratón con lesión del manguito rotador, el volumen óseo/volumen total (BV/TV), el número trabecular (Tb.N) y el grosor trabecular (Tb.Th) fueron más bajos en el grupo de alta intensidad en comparación con los de los grupos de control y de intensidad moderada/baja. mientras que la separación trabecular (Tb.Sp) fue la más alta. Este hallazgo sugiere que el entrenamiento de alta intensidad tiene efectos perjudiciales sobre la recuperación del manguito rotador y la masa ósea8.

La terapia infrarroja (IRT) es uno de los principios más utilizados en los dispositivos de fisioterapia de rehabilitación en China. Promueve la circulación sanguínea local, acelera la absorción de sustancias inflamatorias y mejora el suministro de nutrientes 9,10. Como fisioterapia no invasiva, la IRT ha ganado una amplia atención en los campos de la medicina deportiva, la ciencia de la rehabilitación y la investigación del metabolismo óseo en los últimos años. La IRT se usa con más frecuencia en entornos clínicos que otras intervenciones. Los estudios han demostrado que la curación del tejido óseo es un proceso complejo, que incluye la resolución de la inflamación y la regeneración celular, que se puede dividir en tres etapas: inflamación, proliferación y remodelación. La fase inflamatoria se caracteriza principalmente por la angiogénesis; la fase proliferativa implica la proliferación de osteoblastos y la formación de hueso nuevo; y la fase de remodelación está marcada por el aumento gradual de trabéculas recién formadas dentro del callo, con el callo del puente a través del espacio de fractura completamente osificado11. Después de una fractura, la sangre que fluye de los vasos a los tejidos debe absorberse rápidamente, lo que estimula la proliferación de osteoblastos y la formación ósea. Estos procesos vitales requieren un entorno interno favorable y suficientes nutrientes para su apoyo. Un cierto grado de termoterapia puede facilitar eficazmente estas funciones12. En la práctica clínica, la terapia infrarroja se puede utilizar como un medio auxiliar para tratar la osteoporosis y ayudar a aliviar los síntomas relacionados, pero su investigación sobre la masa ósea es relativamente limitada. Este artículo presenta un protocolo para dilucidar los efectos moduladores de la terapia infrarroja en los trastornos metabólicos esqueléticos inducidos por el ejercicio de alta intensidad y sus mecanismos moleculares. Por lo tanto, este trabajo, basado en investigaciones previas13, construye un modelo de ejercicio en cinta rodante de alta intensidad en ratones para observar los cambios en la masa ósea e investigar más a fondo si la termoterapia puede mitigar la pérdida ósea inducida por el ejercicio en cinta rodante de alta intensidad. El objetivo es proporcionar una referencia para la prevención y el tratamiento de la OP basados en el ejercicio.

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Protocolo

Este estudio recibió la aprobación ética del Comité de Ética de Animales de Laboratorio de la Universidad del Deporte de Shanghai (No. 102772023DW016) y cumplió con las regulaciones nacionales / institucionales de investigación con animales. Veinticuatro ratones machos C57BL/6 de 5 semanas de edad fueron alojados en una instalación para animales de grado SPF en la Universidad del Deporte de Shanghai. Los ratones se alojaron a 22 ± 2 °C, 40-70% de humedad con ciclos de luz/oscuridad de 12 h y se les proporcionó comida/agua ad libitum . Todos los materiales biológicos, incluidos los huesos, la sangre y las muestras tratadas con reactivos de extracción de ARN, deben recolectarse en bolsas de autoclave de nivel II de riesgo biológico, esterilizadas a 121 ° C durante 60 min antes de su eliminación, con la documentación adecuada en los registros de desechos de laboratorio.

1. Animales

  1. Después de 1 semana de aclimatación, estratificar los ratones por peso corporal y asignarlos aleatoriamente a tres grupos: el grupo de control (grupo CTR, N = 8), el entrenamiento con ejercicios en cinta rodante de alta intensidad (HIT, N = 8) y la terapia infrarroja después del ejercicio en cinta rodante de alta intensidad (IRT, N = 8).

2. Protocolo de intervención de termoterapia y entrenamiento con ejercicios en cinta rodante de alta intensidad

  1. Alimente al grupo CTR en condiciones estáticas sin intervención.
  2. Después de 1 semana de aclimatación, someta a los ratones de los grupos HIT e IRT a 8 semanas de entrenamiento en cinta rodante de alta intensidad. La primera semana se considera la fase de adaptación: hacer que los ratones del grupo de la cinta de correr corran a velocidades de 12, 15 y 18 m/min durante 20, 30 y 40 min, respectivamente, con una inclinación de 0°. En la segunda semana, haga que los ratones hagan ejercicio a una velocidad de 24 m / min durante 50 min, y luego aumente su ejercicio a una velocidad de 1 m / min y 10 min cada semana hasta que alcance los 28 m / min durante 80 min, con un gradiente de 5 °. Realice este régimen de ejercicios 6 días a la semana, con descanso los domingos (Tabla 1).
  3. Para el grupo IRT, después de 4 semanas de ejercicio en cinta rodante, introduzca la terapia infrarroja (IRT) en la quinta semana.
    NOTA: Durante la irradiación infrarroja, mantenga estrictamente la temperatura corporal del ratón entre 42 °C y 45 °C.
    1. Anestesiar a los ratones mediante inyección intraperitoneal para inducir la inconsciencia.
    2. Irradiar todo el cuerpo de los ratones utilizando el aparato terapéutico infrarrojo, asegurando que la temperatura de los ratones se mantenga entre 42 °C y 45 °C (detectada por un detector de temperatura). Realice todo el proceso de tratamiento durante ~ 40 min, 3 veces por semana (lunes, miércoles y sábado), durante 4 semanas hasta que se tomen las muestras.

3. Recolección de tejidos

NOTA: Las muestras de huesos de ratón disecadas deben conservarse inmediatamente en nitrógeno líquido o a -80 °C para mantener la integridad del ARN.

  1. Recogida y conservación de muestras de suero
    1. Pese todos los ratones con una balanza electrónica.
    2. Anestesiar a los ratones mediante una inyección intraperitoneal de tribromoetanol.
      NOTA: Cuando manipule tribromoetanol, prepare siempre soluciones frescas bajo una campana extractora de productos químicos con guantes de nitrilo y protección para los ojos, guárdelas a 4 °C en viales de color ámbar protegidos de la luz y deseche las porciones no utilizadas a través de canales de residuos químicos aprobados.
    3. Recolectar muestras de sangre asépticamente mediante punción cardíaca para obtener 0,5-0,6 ml de sangre. Primero, afeitar el vello del pecho del ratón y desinfectar con yodóforo. Posteriormente, palpe el punto de pulsación cardíaca máxima e inserte una aguja de 4-5 G unida a una jeringa en la cavidad torácica izquierda entre el tercer y cuarto espacio intercostal. Finalmente, cuando se observa que la sangre fluye espontáneamente hacia la jeringa, aplique una aspiración suave para completar el procedimiento de extracción de sangre.
    4. Deje que las muestras de sangre se coagulen durante 10 minutos a temperatura ambiente, luego centrifugue a 1,000 × g durante 15 minutos. Alícuota y almacenar el sobrenadante (suero) a -80 °C.
  2. Recogida y conservación de muestras óseas
    1. Use microtijeras y pinzas estériles para diseccionar tanto los fémures como las tibias. Despegue suavemente los músculos y tendones de la superficie ósea a lo largo del eje longitudinal, sin raspar el periostio, y preste especial atención a proteger la placa de crecimiento.
    2. Enjuague todas las muestras con 1x PBS (pH 7,4). Fijar el fémur izquierdo en paraformaldehído (PFA) al 4% durante 24 h. Utilice el fémur izquierdo para medir la densidad mineral ósea antes de realizar un análisis adicional.
    3. Coloque el fémur derecho en tubos de microcentrífuga de 1,5 ml premarcados y guárdelos a -80 °C.
    4. Utilice el fémur derecho y ambas tibias para los ensayos de metabolismo óseo.

4. Medición de parámetros

  1. Medición del nivel de glucosa en sangre
    1. Antes de la recolección de tejido, obtenga muestras de sangre de la vena de la cola de los ratones. Mida los niveles de glucosa en sangre con un analizador de glucosa portátil.
  2. Medición del nivel de lactato en sangre
    1. Inmediatamente después de la última sesión de ejercicios en cinta rodante, recolecte muestras de sangre de la vena de la cola. Determine los niveles de lactato en sangre utilizando un analizador de lactato portátil.
  3. Prueba de Rotarod
    NOTA: Después de completar todas las intervenciones, realizamos pruebas de rotarod en ratones de cada grupo. Al realizar pruebas de rotarod, elegimos diferentes grupos de ratones para probarlos simultáneamente para garantizar un tiempo de descanso constante, en lugar de probar primero un grupo de ratones, para poder excluir las diferencias causadas por el tiempo de descanso.
    1. Coloque a los ratones en un aparato de varilla rotativa con la cabeza orientada en la dirección opuesta a la rotación, lo que permite una prueba de adaptación.
    2. Ajuste la velocidad de la varilla rotativa a 30 rpm; Después de arrancar, el aparato acelera uniformemente a la velocidad establecida.
    3. Registre el tiempo hasta que el mouse caiga por primera vez. Utilice esta medida para evaluar la capacidad de coordinación motora de los ratones.
  4. Medición de la masa ósea trabecular femoral
    1. Retire el músculo y el tejido conectivo adherido a los huesos con microtijeras y fórceps estériles y lávelos con PBS.
    2. Realice una microtomografía computarizada para evaluar los parámetros del hueso trabecular en el fémur izquierdo utilizando los siguientes parámetros de exploración: la microtomografía computarizada se realizó a 55 kVp/145 μA (8 W) en modo de rotación continua con vóxeles isotrópicos de 9 μm, campo de visión de 31,0 mm, exposición de 250 ms, resolución nativa (388 capas/segmento) y calibración de BH de 1.200 mgHA/cc.
    3. Mida los siguientes resultados de la microarquitectura trabecular y cortical.
      1. Importe las imágenes reconstruidas en CT-vox para la representación y visualización tridimensional (3D).
      2. Usando vistas multiplanares (planos coronal, sagital y transversal), separe y extraiga el hueso cortical y trabecular en distintas regiones de tejido para permitir un análisis independiente de sus características morfométricas.
      3. Cuantifique los parámetros microestructurales clave, incluido el volumen óseo / volumen total (BV / TV), el número trabecular (Tb.N) y el espesor trabecular (Tb.Th) y la separación trabecular (Tb.Sp), para evaluar el desarrollo óseo y el estado de mineralización.
  5. Corte de parafina y tinción histológica
    1. Lave tres fémures izquierdos de cada grupo con PBS y descalcifique en EDTA al 10% (pH 7,15) hasta que se produzca una descalcificación completa.
    2. Deshidratar las muestras a través de concentraciones graduadas de etanol (70%, 90%, 95% y 100%), aclarar con xileno, infiltrar con parafina e incrustarlas (ver Tabla 2).
    3. Corte secciones seriadas de 5,0 μm de espesor.
    4. Tinción de hematoxilina y eosina (HE)
      1. Someter las rodajas primero al desparafinado con xileno, la rehidratación con etanol en gradiente y luego sumergirlas en hematoxilina durante 5 min.
      2. Lavar para eliminar el exceso de manchas, diferenciar en alcohol de ácido clorhídrico al 1% durante 3 s, teñir con eosina durante 3 min, deshidratar con etanol graduado, aclarar con xileno y montar con goma neutra (ver Tabla 3).
      3. Capture imágenes microscópicas para observar la estructura del tejido óseo y la morfología y distribución celular en la cavidad de la médula ósea.
    5. Tinción de fosfatasa ácida resistente al tartrato (TRAP)
      1. Desparafinar las rodajas con xileno y rehidratar con etanol en gradiente.
      2. Incubar las rodajas con el reactivo TRAP en un horno a 37 °C durante 1 h, deshidratarlas y transparentarlas (ver Tabla 4).
      3. Aplique una gota de resina neutra sobre el portaobjetos de vidrio, luego baje con cuidado el cubreobjetos en un ángulo de 45 ° desde un borde para minimizar la formación de burbujas. Deje que el portaobjetos montado se seque completamente en una campana extractora antes de proceder con la observación microscópica y la obtención de imágenes.
  6. Análisis de la expresión génica en tejido óseo tibial
    1. Aislamiento de médula ósea
      1. Diseccionar las tibias del ratón y eliminar el exceso de músculo/fascia con herramientas estériles.
      2. Coloque las tibias limpias en un tubo de microcentrífuga de 1,5 ml.
      3. Corta ambos extremos del hueso con unas tijeras estériles.
      4. Enjuague la médula ósea en un tubo de molienda que contenga perlas de molienda estériles usando 1x PBS.
        NOTA: Enjuague la cavidad de la médula ósea con PBS hasta que la cavidad parezca pálida y se elimine todo el tejido visible de la médula.
    2. Extracción de ARN
      NOTA: Los desechos de cloroformo/isopropanol deben separarse en recipientes de solventes halogenados designados y nunca mezclarse con lejía debido a la formación de gases tóxicos.
      1. Agregue 1 ml de reactivo de extracción de ARN por tubo. Homogeneizar las muestras con un homogeneizador de sobremesa (pulsos de 30 s, 4 °C). Incube los lisados a temperatura ambiente durante 5 min.
      2. Añadir 200 μL de cloroformo, vórtice durante 15 s e incubar a 4 °C durante 30 min.
      3. Centrifugar a 12.000 × g durante 30 min a 4 °C.
      4. Transfiera la fase acuosa superior a un nuevo tubo de microcentrífuga. Añadir 500 μL de isopropanol, invertir 10x para mezclar e incubar a 4 °C durante 20 min.
      5. Centrifugar a 12.000 × g durante 30 min a 4 °C. Deseche el sobrenadante con cuidado sin alterar el gránulo de ARN.
      6. Lave el pellet con 1 ml de etanol al 75% (preparado con agua tratada con DEPC). Agitar brevemente y centrifugar a 7.500 × g durante 5 min a 4 °C.
      7. Seque al aire el pellet durante 5-10 minutos en una campana extractora (evite que se seque demasiado).
      8. Disuelva el ARN en 20-50 μL de agua tratada con DEPC.
      9. Mida la concentración y la pureza (relación A260/A280 ≥ 1,8) utilizando un espectrofotómetro.
    3. Síntesis de ADNc
      1. Sintetizar ADNc utilizando 1 μg de ARN total y un kit de transcripción inversa.
      2. Almacene el ADNc a -20 °C para el análisis de qPCR.
    4. Análisis de qPCR
      1. Analizar la expresión génica de marcadores osteogénicos: Alp, Atf4, Runx2, Ocn, Osx; marcadores osteoclastos: Nfatc1, Mmp9, Ctsk; citocinas: Tnf-α, Il-1β, Il-10 (ver Tabla 5).
      2. Utilice las secuencias de cebadores enumeradas en la Tabla 6 (incluidas las temperaturas de recocido).

5. Análisis estadístico

  1. Presente todos los datos como media ± error estándar de la media (media ± SEM).
  2. Utilice Bonferroni y Tamhani para pruebas post-hoc.
  3. Realizar un análisis unidireccional de la varianza para evaluar las diferencias entre los grupos.
  4. Considere P < 0.05 estadísticamente significativo.

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Resultados

Fatiga debido al entrenamiento prolongado de ejercicios en cinta rodante de alta intensidad
Establecimos un modelo de ejercicio de carrera de plataforma de alta intensidad a largo plazo para estudiar los cambios esqueléticos bajo el ejercicio y los efectos de la terapia infrarroja en los huesos (Figura 1A). Al final de la intervención, se observó a los ratones para detectar cambios en el peso corporal. En comparación con el peso corporal de los ratones en el grupo CTR, no...

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Discusión

De todas las enfermedades metabólicas óseas, la OP es la más común y un importante problema de salud pública mundial11. La OP surge cuando las funciones osteoblásticas y osteoclásticas son disfuncionales, y su prevalencia es alta18. El ejercicio ha sido cada vez más enfatizado por médicos e investigadores como una estrategia potencial para la prevención y el tratamiento de la OP considerando su bajo costo y pocos efectos adversos y su gran ...

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Divulgaciones

Los autores no tienen conflictos de intereses que informar.

Agradecimientos

El trabajo fue apoyado por la Fundación Nacional de Ciencias Naturales de China (Nos. 82172475, 82222046, 82272608); Laboratorio Clave de Desarrollo y Mantenimiento de la Competencia Deportiva Humana de Shanghái (Universidad del Deporte de Shanghái) (No. 11DZ2261100).

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Instrumento de terapia de infrarrojo lejano  Tecnología médica CofoeLuego se aplicó radiación infrarroja como fuente de calor para calentar la sangre en la red capilar subcutánea. La temperatura de la terapia se controló entre 42 °C; C y 45 °; C, y todo el tratamiento duró aproximadamente 40 min, 3 veces por semana
Micro-CTSCANCO Medical AGVIVACT80Se realizó una microtomografía computarizada para evaluar los parámetros del hueso trabecular en el fémur izquierdo, incluidos BV / TV, Tb.N, Tb.Th, Tb.Sp y grosor cortical (Ct.Th).
Cinta de correr para ratonesInstalaciones de aparatos biológicos de Anhui Zhenghua Co., LtdCinta de correr de alta intensidad corriendo en ratones
Máquina de inclusión de parafinaLeicaLa máquina de inclusión de parafina puede incrustar tejidos
cortadora de parafinaLeicaEl micrótomo de parafina puede cortar tejidos
Kit de reactivos PrimeScript RT
SPSS 
Tribromoetanol Avertin
TRIzol Biología precisaAG21101/AG21102

Referencias

  1. Khosla, S., Hofbauer, L. C. Osteoporosis treatment: recent developments and ongoing challenges. Lancet Diabetes Endocrinol. 5 (11), 898-907 (2017).
  2. Rachner, T. D., Khosla, S., Hofbauer, L. C. Osteoporosis: now and the future. Lancet. 377 (9773), 1276-1287 (2011).
  3. Portier, H., Benaitreau, D., Pallu, S. Does physical exercise always improve bone quality in rats. Life (Basel). 10 (10), 217(2020).
  4. Reid, I. R., Billington, E. O. Drug therapy for osteoporosis in older adults. Lancet. 399 (10329), 1080-1092 (2022).
  5. Srivastava, R. K., Sapra, L., Mishra, P. K. Osteometabolism: Metabolic alterations in bone pathologies. Cells. 11 (23), 3943(2022).
  6. Cauley, J. A., Giangregorio, L. Physical activity and skeletal health in adults. Lancet Diabetes Endocrinol. 8 (2), 150-162 (2020).
  7. Rubin, C. T., Lanyon, L. E. Regulation of bone formation by applied dynamic loads. J Bone Joint Surg Am. 66 (3), 397-402 (1984).
  8. Chen, H., et al. Effect of exercise intensity on the healing of the bone-tendon interface: A mouse rotator cuff injury model study. Am J Sports Med. 49 (8), 2064-2073 (2021).
  9. Shemilt, R., et al. Potential mechanisms for the effects of far-infrared on the cardiovascular system - a review. Vasa. 48 (4), 303-312 (2019).
  10. Yu, S. Y., et al. Biological effect of far-infrared therapy on increasing skin microcirculation in rats. Photodermatol Photoimmunol Photomed. 22 (2), 78-86 (2006).
  11. Jurić, F., et al. Thermal changes during clavicle fracture healing in children. J Clin Med. 13 (23), 7213(2024).
  12. Einhorn, T. A., Gerstenfeld, L. C. Fracture healing: mechanisms and interventions. Nat Rev Rheumatol. 11 (1), 45-54 (2015).
  13. Yan, K., et al. Establishment and identification of an animal model of long-term exercise-induced fatigue. Front Endocrinol (Lausanne). 13, 915937(2022).
  14. Proia, P., et al. Lactate as a metabolite and a regulator in the central nervous system. Int J Mol Sci. 17 (9), 1450(2016).
  15. Westerblad, H., Bruton, J. D., Katz, A. Skeletal muscle: energy metabolism, fiber types, fatigue and adaptability. Exp Cell Res. 316 (18), 3093-3099 (2010).
  16. Zarrouk, N., et al. Assessment of acute neuromuscular fatigue manifestations and functional performances after heavy resistance exercise. J Sports Med Phys Fitness. 61 (12), 1596-1604 (2021).
  17. Warden, S. J., Davis, I. S., Fredericson, M. Management and prevention of bone stress injuries in long-distance runners. J Orthop Sports Phys Ther. 44 (10), 749-765 (2014).
  18. Aibar-Almazán, A., et al. Current status of the diagnosis and management of osteoporosis. Int J Mol Sci. 23 (16), 9465(2022).
  19. Chang, X., Xu, S., Zhang, H. Regulation of bone health through physical exercise: Mechanisms and types. Front Endocrinol (Lausanne). 13, 1029475(2022).
  20. Klein-Nulend, J., Bacabac, R. G., Bakker, A. D. Mechanical loading and how it affects bone cells: the role of the osteocyte cytoskeleton in maintaining our skeleton. Eur Cell Mater. 24, 278-291 (2012).
  21. Pacifici, R. Estrogen, cytokines, and pathogenesis of postmenopausal osteoporosis. J Bone Miner Res. 11 (8), 1043-1051 (1996).
  22. Xie, M., et al. Advancements in photothermal therapy using near-infrared light for bone tumors. Int J Mol Sci. 25 (8), 4139(2024).
  23. Peris, P. Stress fractures. Best Pract Res Clin Rheumatol. 17 (6), 1043-1061 (2003).
  24. Bourrin, S., et al. Adverse effects of strenuous exercise: a densitometric and histomorphometric study in the rat, (1985). J Appl Physiol. 76 (5), 1999-2005 (1994).
  25. Koenen, K., et al. Sprint interval training induces a sexual dimorphism but does not improve peak bone mass in young and healthy mice. Sci Rep. 7, 44047(2017).
  26. Bertels, J. C., He, G., Long, F. Metabolic reprogramming in skeletal cell differentiation. BoneRes. 12 (1), 57(2024).

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