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Esta investigación experimental se llevó a cabo con la aprobación del Comité Institucional de Cuidado y Uso de Animales (Número de aprobación: LL-240077).
Cultivo celular e intervención farmacológica
Las células de rata Schwann (SC) se cultivaron en el medio celular de Schwann, que consistía en medio basal, 5% de suero bovino fetal, 1% de suplemento de crecimiento de células de Schwann, 1% de penicilina y 1% de estreptomicina. Todas las células se mantuvieron en una atmósfera deCO2 al 5% a 37 °C. Cuando se les permitió crecer hasta una densidad del 70-80%, los SC se dividieron en cuatro grupos (n = 5 por grupo): (1) grupo NC; (2) grupo NC+CoCl2 ; (3) grupo NC+CoCl2+Mus; (4) Grupo NC+CoCl2+siIL-1R1+Mus.
Se sabe que el cloruro de cobalto (CoCl2), un agente empleado con frecuencia para imitar la hipoxia, desencadena respuestas similares a las de la hipoxia, como impedir la degradación y estabilización de factores inducibles por hipoxia y la acumulación de proteína HIF-1α15. De acuerdo con el método modificado basado en Osuru et al.17, en el grupo NC+CoCl2 y en el grupo NC+CoCl2+Mus, los SC se cultivaron en Schwann Cell Medium suplementado con 240 μM de CoCl2 durante 8 h, en condiciones atmosféricas de 95% de aire y 5% deCO2 a 37 °C en una incubadora humidificada (21% de O2). Luego, en los grupos de Mus, se aplicó la intervención de 1,25 μg/mL de Mus durante 24 h adicionales. Mientras tanto, en el grupo NC+CoCl2+siIL-1R1+Mus, los SC se trataron primero con 24 h de infección por ARNip, luego se cultivaron continuamente con 240 μM de CoCl2 durante 8 h, seguido de la intervención de 1,25 μg/mL de Mus durante 24 h adicionales, como en los grupos anteriores. El diagrama de flujo del proceso experimental se muestra en la Figura 1.
Ensayo de viabilidad celular
La viabilidad de los SC se determinó utilizando el reactivo de ensayo cell counting kit-8 (CCK-8) de acuerdo con las instrucciones del fabricante. Los SC cultivados a una densidad de 5 × 105 células/pocillo se sembraron en una placa de cultivo celular de 96 pocillos con 100 μL de medio de crecimiento completo a 37 °C en una atmósfera humidificada al 5% de CO2 . Cuando la confluencia alcanzó el 70-80%, se agregaron 10 μL de solución de CCK-8 a cada pocillo, y las placas se incubaron durante 1 h a 37 °C. La densidad óptica (OD) de las placas de 96 pocillos se midió a 450 nm utilizando un lector de microplacas y se calculó la viabilidad celular. Las células se dividieron en cuatro grupos: grupo NC, grupo NC + CoCl2 , grupo NC + CoCl2 + Mus y grupo NC + CoCl2 + siIL-1R1 + Mus. Los resultados experimentales se corrigieron utilizando un pocillo en blanco (medio + solución CCK8). Tasa de supervivencia celular = [(grupo experimental - pocillo en blanco)/(grupo NC - pocillo en blanco)] × 100%.
Transfección de ARNip
La transfección se realizó de acuerdo con las instrucciones del fabricante de un reactivo comercial de transfección in vitro siRNA/miRNA utilizando dúplex sintéticos de siRNA de siIL-1R1 (AUAGUCUUGGAUUUUCUCCAA, GGAGAAAAAUCCAAGACUAUGA) con una concentración de 100 ng/μL durante 24 h. Después de la transfección de siIL-1R1, las expresiones de siIL-1R1 se evaluaron mediante la realización de análisis de RT-qPCR después de 24 h de transfección18, y se debe garantizar que la eficiencia sea superior al 80%
Ensayo inmunoenzimático (ELISA)
Los sobrenadantes post-cultivo se recolectaron y centrifugaron en condiciones específicas del grupo (2950 g, 20 min, 25 °C). Los niveles extracelulares de IL-1β, TNF-α, ROS y SOD se analizaron mediante ELISA siguiendo las instrucciones del kit. Las lecturas finales de absorbancia a 450 nm se obtuvieron utilizando un lector de microplacas.
Aislamiento de ARN y PCR cuantitativa en tiempo real (RT-qPCR)
Siguiendo las instrucciones del fabricante, se extrajo el ARN total de las células cultivadas utilizando el reactivo TRizol. Los genes diana (IL-1β, TNF-α, S-100b, IL-1R1) se amplificaron en 20 μL de reacciones de mezcla de qPCR SYBR durante 40 ciclos en un instrumento de PCR. La normalización de los datos utilizó β-actina, con especificidad de PCR verificada mediante análisis de curva de fusión. El método 2−ΔΔCt cuantificó la expresión relativa de cinco muestras independientes ensayadas por triplicado. Los cebadores se enumeran en la Tabla 1.
Western blot
Después del tratamiento, las SC de todos los grupos experimentales se incubaron durante 24 h y se cosecharon. La proteína total se extrajo utilizando un kit de extracción de proteína total. Los lisados de proteínas se combinaron con tampón de carga de electroforesis en gel de poliacrilamida de dodecilsulfato de sodio (SDS-PAGE) desnaturalizado a 98 °C durante 5 min y separado (20 μg por carril) en geles de poliacrilamida SDS al 10-12%. Las proteínas resueltas se transfirieron electroforéticamente a membranas de fluoruro de polivinilideno (PVDF). Las membranas se bloquearon con leche en polvo descremada al 5% durante 60 min a temperatura ambiente, luego se incubaron durante la noche a 4 °C en un volumen de 6 ml con los siguientes anticuerpos primarios: anticuerpo anti-HIF-1α (1:1000), anticuerpo anti-GAPDH (1:1000), anticuerpo anti-IL-1R1 (1:1000), anticuerpo anti-C-JUN (1:1000), anticuerpo anti-GDNF (1:1000), anticuerpo anti-IRAK1 (1:1000), anticuerpo anti-IKK (1:1000), anticuerpo anti-p65 (1:800), anticuerpo anti-p50 (1:900), anticuerpo anti-IκB-α (1:900) y anticuerpo anti-β-actina (1:1000). Después del lavado, las membranas se sondearon con anticuerpos secundarios conjugados con peroxidasa de rábano picante (HRP) durante 60 min a 25 °C. Las señales de proteínas se detectaron utilizando Image Studio Digits Ver 4.0. Las intensidades de banda se cuantificaron con el software ImageJ y se normalizaron a la expresión de β-actina y GAPDH. Se realizaron tres experimentos independientes.
Inmunofluorescencia
La localización de IL-1R1 en SC se evaluó siguiendo a Zhao et al.19. Coseche las células durante la fase de crecimiento logarítmico mediante tripsinización, vuelva a suspenderlas en medio fresco completo y triture completamente para obtener una suspensión unicelular uniforme. Siembre las células en placas de cultivo que contengan cubreobjetos estériles. Una vez que las células hayan alcanzado la confluencia completa, enjuáguelas 1-2 veces con solución salina tamponada con fosfato (PBS), retire con cuidado los envoltorios de cubierta y fije las células adherentes con paraformaldehído al 4% en PBS durante 10 min, permeabilice con Triton X-100 al 0,05% (10 min) y bloquee con suero de cabra al 5% (1 h). La incubación primaria utilizó mAb de IL-1R1 anti-rata de conejo. Después de los lavados con PBS, las muestras se incubaron con IgG anti-conejo de cabra conjugada con FITC durante 2 h a temperatura ambiente. Agregue agentes de montaje solubles en agua al cubreobjetos para el montaje. Las células inmunomarcadas se visualizaron y cuantificaron utilizando un microscopio de fluorescencia con la longitud de onda de excitación de 492 nm y la longitud de onda de emisión de 520 nm.
Análisis de ultraestructura
Siguiendo el protocolo19 de Zhao et al., los SC se fijaron en glutaraldehído al 2,5% y se fijaron durante la noche a 4 ° C en tetróxido de osmio al 1%. Las muestras se sometieron a una serie de deshidratación de etanol / acetona. Las secciones ultrafinas (80 nm) se tiñeron con acetato de uranilo y citrato de plomo antes del examen ultraestructural con un microscopio electrónico de transmisión.
Eliminación de reactivos químicos peligrosos
El medio y las soluciones que contienen CoCl2 se recogen en un contenedor designado para residuos de metales pesados. Todos los materiales desechables que han entrado en contacto con los líquidos antes mencionados, incluidas las puntas de pipeta, los tubos de centrífuga y los guantes, se clasifican como residuos peligrosos de metales pesados y se transfieren a una empresa autorizada de gestión de residuos peligrosos aprobada por las autoridades pertinentes para su eliminación adecuada. Deseche la solución de paraformaldehído residual en un contenedor de residuos de aldehído dedicado. Los consumibles usados deben recolectarse como desechos de aldehído y procesarse por la misma empresa de gestión de desechos peligrosos con licencia.
Análisis estadístico
Las comparaciones multigrupo se analizaron mediante ANOVA unidireccional con la prueba post-hoc de Tukey en GraphPad Prism 8.0. La significación estadística se definió como P < 0,05. Los datos se presentan como media ±± desviación estándar (DE).