Artículo de método

Flujo de trabajo estandarizado SDS-PAGE para el perfilado personalizado de corona de proteínas en la detección temprana del cáncer

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DOI:

10.3791/69090

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19 de diciembre de 2025

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1NanoDelivery Lab, Department of Molecular Medicine, Sapienza University of Rome

En este artículo

Resumen

Este protocolo estandariza el análisis SDS-PAGE para el perfilado personalizado de corona de proteínas en nanopartículas, permitiendo la detección reproducible, escalable y de bajo coste de firmas específicas de cáncer. Diseñado para el diagnóstico precoz del adenocarcinoma ductal pancreático, ofrece una alternativa práctica y alineada con REASSURED a métodos proteómicos complejos tanto en entornos de investigación como clínicos.

Resumen

La formación de una corona proteica (PC) personalizada en nanopartículas (NPs) tras la exposición a fluidos biológicos ha surgido como una estrategia prometedora y mínimamente invasiva para la detección temprana del cáncer. Este estudio introduce un protocolo estandarizado para el perfil de la corona proteica utilizando electroforesis en gel de dodecilo sulfato de sodio (SDS-PAGE), optimizado para garantizar robustez, reproducibilidad y automatización. El método fue validado rigurosamente en una variedad de plataformas de nanopartículas (NP), fuentes de plasma y condiciones experimentales, demostrando perfiles consistentemente reproducibles con una variabilidad mínima dependiente del operador. En comparación con las técnicas convencionales de proteómica, este enfoque ofrece una solución más rápida y rentable que cumple con los criterios REASSURED de la Organización Mundial de la Salud para diagnóstico. Cuando se aplica al adenocarcinoma ductal pancreático (PDAC), una malignidad altamente agresiva con biomarcadores tempranos limitados, este flujo de trabajo alcanzó precisiones de clasificación de hasta el 90%, incluso en pacientes en fase temprana. Esta plataforma estandarizada supone un avance significativo hacia herramientas diagnósticas escalables, clínicamente traducibles y asequibles para el cribado del cáncer.

Introducción

Corona de proteína de nanopartículas (NP-PC)

La caracterización del PC que se forma en la superficie de los NPs tras su exposición a fluidos biológicos se ha convertido en una estrategia poderosa para el diagnóstico de enfermedades y la medicinapersonalizada 1. Esta capa de proteínas adsorbedidas, dinámica y específica de la enfermedad en su composición, transforma la identidad sintética de los NP y impulsa sus interaccionesbiológicas 2. La composición del PC no es aleatoria, sino que depende mucho tanto de las propiedades fisicoquímicas de los NP como del entorno biológico en el que seintroducen 3. Factores como el tamaño, forma, carga superficial y composición de NP pueden influir significativamente en la afinidad, cinética y disposición estructural de las proteínas adsorbedidas. Del mismo modo, el fluido biológico, su origen, complejidad y estado de la enfermedad juegan un papel clave en la determinación de la composición final dela corona 4,5,6.

La naturaleza dinámica de la corona complica aún más su análisis, ya que su estructura evoluciona con el tiempo de una capa externa blanda y débilmente unida a un núcleo interno más estable y fuertementeadsorbido 7,8. Esta arquitectura en evolución, resultante de eventos competitivos de adsorción proteica, requiere enfoques estandarizados y con resolución temporal para caracterizarse de forma significativa9. A pesar de esta complejidad, ahora se reconoce ampliamente que el PC no es un mero artefacto, sino una capa biológicamente informativa capaz de captar alteraciones sistémicas de la enfermedad de manera no invasiva. El objetivo del método descrito en este artículo es estandarizar el uso de SDS-PAGE para el perfilado robusto, reproducible y accesible del PC personalizado, especialmente para la detección temprana del cáncer mediante enfoques de biopsialíquida 10.

El PC personalizado y su relevancia en la detección del cáncer

La base científica de este método radica en el concepto de PC personalizado. Al incubar con plasma del paciente, los NPs adsorben una huella digital única de proteínas que refleja el estado fisiológico o patológico delindividuo 11,12. Este concepto ha sido corroborado por estudios que muestran alteraciones significativas en la composición del PC en presencia de enfermedades, incluyendo adenocarcinoma ductal pancreático (PDAC), cáncer depulmón 13, meningioma14 y glioblastoma multiforme15. Específicamente, en PDAC, los PC derivados del plasma del paciente difieren sustancialmente de los de donantes sanos. Estas diferencias se han aprovechado en modelos de clasificadores que alcanzan hasta un 90% de precisión diagnóstica. El PC actúa así como un concentrador a nanoescala de señales específicas dela enfermedad 16.

Trabajos recientes han demostrado que los PC de pacientes con cáncer están enriquecidos con proteínas implicadas en la inflamación, la coagulación, la activación del complemento y el transporte extracelular de vesículas, vías biológicas conocidas por estar desreguladas en lamalignidad 17. Estos patrones proteicos son altamente reproducibles dentro de las clases individuales de pacientes, pero claramente distintos entre diferentes estados de la enfermedad, lo que sugiere que la corona puede funcionar no solo como sensor general de la enfermedad, sino también como clasificador específico de cada enfermedad. En el contexto de PDAC, una de las malignidades más mortales e insidiosas, nuestro grupo ha sido pionero en pruebas de sangre habilitadas por NP (NEB) basadas en la caracterizaciónPC 18,19,20. Este enfoque mínimamente invasivo aprovecha la capacidad de los NP para enriquecer selectivamente proteínas plasmáticas de baja abundancia y alteradas por enfermedades, haciéndolas detectables mediante una simple separación electroforética de laboratorio.

Ventajas sobre las técnicas proteómicas convencionales

La razón para desarrollar este enfoque proviene de las limitaciones de las técnicas convencionales de proteómica como la espectrometría de masas (EM), que, aunque ofrecen una cobertura profunda del proteoma, son caras, tardadas y poco adecuadas para cribado de alto rendimiento o diagnósticos en el puntode atención 21. Otro desafío clave radica en la intrínseca complejidad de la EM, donde variaciones en la preparación de la muestra, calibración del instrumento, parámetros de adquisición y flujos de trabajo de análisis de datos contribuyen a diferencias significativas entre laboratorios en la composición de PCreportada 22. En cambio, el análisis SDS-PAGE del PC ofrece un medio rápido y rentable para capturar patrones proteómicos relacionados con enfermedades. De forma crucial, la lectura SDS-PAGE no depende de la identificación absoluta de biomarcadores individuales, sino de la detección de cambios sistemáticos en el perfil global de proteínas, que pueden analizarse mediante densitometría y estadística multivariante.

A diferencia de los ensayos basados en anticuerpos, que están limitados a objetivos conocidos y propensos a la reactividad cruzada, SDS-PAGE ofrece una visión imparcial del panorama proteico, preservando la integridad de la muestra original y permitiendo la integración posterior con plataformas complementarias como LC-MS/MS para la identificación de proteínas. Además, dado que SDS-PAGE no requiere pasos de fraccionamiento o agotamiento de muestras, es especialmente adecuado para analizar muestras biológicas de bajo volumen, una característica esencial para aplicaciones que involucran diagnóstico precoz o cribado de poblacionesfrágiles 23. Por todas estas razones, este protocolo es coherente con varios de los criterios ASEGURADOS de la OMS (Conectividad en tiempo real, Facilidad de recogida de muestras, Asequible, Sensible, Específico, Fácil de usar, Robusto, Sin Equipamiento y Entregable), lo que lo convierte en una herramienta práctica para diagnósticosescalables 24. Basándose en esta evidencia, se hipotetizó que los NPs incubados con plasma del paciente adsorben un PC reproducible y específico de la enfermedad que puede ser perfilado sistemáticamente usando SDS-PAGE. Además, proponemos que el análisis electroforético estandarizado de estas coronas personalizadas puede distinguir a los pacientes con cáncer de individuos sanos, proporcionando así una herramienta diagnóstica robusta y clínicamente traducible.

Flujo de trabajo y aplicabilidad clínica

El protocolo de perfilado de corona basado en SDS-PAGE sistematiza cada paso: desde la preparación y incubación de los NPs con plasma diluido, hasta el aislamiento de corona, electroforesis en gel y análisis densitométrico cuantitativo (Figura 1). Parámetros clave como el tiempo de incubación, la dilución plasmática y el tipoNP 25 se ajustan finamente para asegurar la captura óptima de proteínas y la resolución de imágenes en gel. El protocolo también aborda cuestiones prácticas como el rendimiento de muestras, la estabilidad del almacenamiento y la consistencia de lotea lote 26. Además, dado que es una técnica no destructiva, SDS-PAGE puede combinarse sin problemas con enfoques proteómicos complementarios como la EM para identificar la composición molecular de bandas proteicasindividuales 15. El flujo de trabajo ha sido optimizado para una alta reproducibilidad entre operadores, incluyendo compatibilidad con plataformas de pipeteo manuales y automatizadas, y es robusto en diferentes químicas de NP y concentraciones plasmáticas. Estas características garantizan que el método pueda aplicarse en diversos entornos de laboratorio, lo que lo hace adecuado tanto para centros de diagnóstico centralizados como para laboratorios de investigación descentralizados. Por ello, esta técnica es especialmente adecuada para investigadores y clínicos implicados en diagnósticos tempranos, descubrimiento de biomarcadores y nanomedicina traslacional. Es aplicable a una amplia gama de patologías y adaptable a diversos fluidos biológicos más allá del plasma, incluyendo saliva u orina. La flexibilidad y robustez de este protocolo lo convierten en un candidato sólido para su integración en canales de validación clínica, estudios de cribado a gran escala y plataformas de punto de atención.

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Protocolo

Este protocolo proporciona un flujo de trabajo detallado y estandarizado para la preparación, incubación con plasma humano (HP), aislamiento y análisis del PC formado sobre varios tipos de NPs. La Figura 2 es una representación gráfica de todo el protocolo, que describe los pasos experimentales secuenciales desde la síntesis de NP hasta el análisis multivariante SDS-PAGE de perfiles proteicos. Es importante destacar que la metodología ha sido estandarizada por nuestro grupo, como se demuestra en trabajosprevios 18,26, asegurando la reproducibilidad y fiabilidad de los resultados. Los reactivos y el equipo utilizado se enumeran en la Tabla de Materiales.

1. Preparación y caracterización de NPs

  1. Nanohojas GO
    1. Diluye una solución de base de 4 mg/mL en agua ultrapura hasta la concentración deseada. Sonica durante 2 minutos con una amplitud del 28% (pulso: 0,8/0,6 s) para asegurar una dispersión adecuada.
    2. Cuantificar la concentración mediante espectroscopía UV-Vis
    3. Mide el tamaño hidrodinámico y el potencial zeta mediante dispersión dinámica de luz (DLS) usando un láser He-Ne de 633 nm. Prepara las muestras por dilución en agua ultrapura según los límites de detección de cubetas (por ejemplo, dilución 1:100 para cubetas de 1 mL). Promedio ± desviación estándar (DE) de tres réplicas.
  2. Parques Nacionales de Oro
    1. Utiliza NPs de oro estabilizados con citrato de 100 nm (concentración del stock: 3,8E+9 partículas/mL) sin modificaciones adicionales.
    2. Mide el tamaño hidrodinámico y el potencial zeta mediante dispersión dinámica de luz (DLS) usando un láser He-Ne de 633 nm. Prepara las muestras por dilución en agua ultrapura según los límites de detección de cubetas (por ejemplo, dilución 1:100 para cubetas de 1 mL). El registro media ± SD de tres réplicas.
  3. Liposomas DOTAP
    1. Disolver polvo de 1,2-dioleoil-3-trimetilamonio-propano (DOTAP) en cloroformo dentro de una campana extractora certificada mientras se lleva el EPI adecuado (bata de laboratorio, guantes, gafas). Evapora bajo vacío durante 2 horas, vuelve a suspender la película lipídica con agua ultrapura hasta alcanzar una concentración final de 1 mg/mL, e hidrátate durante la noche a 4 °C. Finalmente, extruye la solución liposoma 20 veces a través de un filtro de policarbonato de 0,1 μm.
    2. Mide el tamaño hidrodinámico y el potencial zeta mediante dispersión dinámica de luz (DLS) usando un láser He-Ne de 633 nm. Prepara las muestras por dilución en agua ultrapura según los límites de detección de cubetas (por ejemplo, dilución 1:100 para cubetas de 1 mL). El registro media ± SD de tres réplicas.
      PRECAUCIÓN: Manipular cloroformo en una campana extractora con equipo de protección completo (EPI). Eliminar los residuos de disolventes orgánicos conforme a los procedimientos institucionales de seguridad química.
      NOTA: Para GO con distribuciones de tamaño centrada aproximadamente en 300 nm, sonicar durante 10 minutos a 125 W, centrifugar a 7.700 x g durante 30 minutos a 4 °C, recoger sobrenadante, centrifugar de nuevo a 18.620 x g durante 30 minutos y volver a suspender el pellet. Para GO con distribuciones de tamaño centrada aproximadamente en 100 nm, sonicar 3 × 180 min a 4 °C, centrifugar a 10.000 x g durante 30 minutos, 4 °C tras cada ronda y recoger el supernadante final.

2. Preparación de plasma humano

  1. Plasma humano comercial (HP)
    1. Diluir plasma liofilizado comercial con agua ultrapura según sea necesario.
    2. Centrifugar el plasma reconstituido a 18620 x g durante 15 minutos a 4 °C, recoger el sobrenadante y almacenarlo a -80 °C hasta su uso.
  2. HP derivada del paciente
    1. Centrifugar muestras de sangre a 1216 x g durante 10 minutos a 4 °C y recoger el sobrenadante para la separación del plasma.
    2. Muestras de plasma de 450 μL en tubos de baja unión de proteínas de 0,5 mL y se almacenan a -80 °C hasta su uso.
      NOTA: Todas las muestras de plasma humano se recogen conforme a las directrices éticas institucionales y se obtuvo el consentimiento informado de todos los participantes.
      PRECAUCIÓN: El plasma humano es biopeligroso. Maneja el mango dentro de un armario de bioseguridad (BSC) usando guantes, bata de laboratorio y gafas de protección. Eliminar todos los materiales que contengan plasma conforme a las normativas institucionales de bioseguridad y eliminación de residuos.

3. Formación de PC

  1. Manipulación manual de líquidos
    1. Determinar la proporción óptima NP:plasma cuantificando la concentración de proteínas mediante un ensayo de ácido bicinquinínico (BCA) para ajustar la dilución del plasma.
    2. Añadir 100 μL de suspensión NP a 100 μL de plasma para alcanzar las concentraciones deseadas de plasma.
    3. Incubar a 37 °C durante 1 hora.
      NOTA: Para el ensayo de BCA, mezclar los reactivos A y B (50:1), preparar diluciones estándar BSA, añadir 10-25 μL de muestra/reactivo estándar + 200 μL, incubar 30 minutos a 37 °C y medir la absorbancia a 562 nm. Las concentraciones plasmáticas suelen ajustarse entre un 0,5% y un 50% v/v en relación con el volumen NP, dependiendo del tipo de NP. Para la GO, usa concentraciones más bajas (recomendable del 0,5% al 5%); para DOTAP/NPs de oro, usa concentraciones más altas (hasta el 50%). Utiliza tubos de baja unión de proteína de 1,5 mL.
  2. Protocolo automatizado de incubación
    1. Carga el protocolo de software de manipulación de líquidos en la plataforma automatizada de pipeteo (20 μL + 200 μL cabezas)
    2. Dispensar 100 μL de cada tipo de NP en tubos de baja unión de 1,5 mL.
    3. Añadir plasma reconstituido preparado como en 2.1 y 2.2, según la siguiente fórmula:
      donde VNP es el volumen de suspensión NP. Para 100 μL de NP:
      figure-protocol-1
      5%: 5,3 μL HP
      20%: 25 μL de vida
      50%: 100 μL HP
    4. Añade agua ultrapura para alcanzar 200 μL:
      5%: 94,7 μL
      20%: 75 μL
      50%: ninguno
    5. Samples de mezcla:
      5%: ciclos de 15 μL
      20%: ciclos de 50 μL
      50%: ciclos de 100 μL 3,2,6. Incubar a 37 °C durante 1 hora
      NOTA: La Figura Suplementaria 1 ilustra la interfaz gráfica de la configuración automatizada utilizada para preparar mezclas NP-HP a tres concentraciones plasmáticas finales (5%, 20% y 50% v/v), cada una en triplicado. La disposición de la plataforma incluye soportes de punta, un depósito de residuos y un rack de tubos de baja unión 3 × 4 que contiene suspensiones NP (GO, nanosferas doradas y liposoma DOTAP) (NP), HP y agua ultrapura (H2O). Usa tubos de baja unión con proteínas.

4. Análisis PC por SDS-PAGE

  1. Aislamiento de PC
    1. Centrifuga las muestras NP-HP a 18.620 x g, 4 °C, durante 15 minutos. Debe haber un pellet visible en la parte inferior del tubo. Descarte cuidadosamente el sobrenadante, que debería parecer claro antes de continuar (véase la Figura Suplementaria 2).
    2. Lava el pellet con agua ultrapura de 200 μL, vuelve a suspenderlo y vuelve a centrifugarlo. Repite este paso dos veces. Tras el lavado final, un pellet compacto debería seguir siendo visible, confirmando el aislamiento exitoso de los complejos NP-proteicos (véase la Figura Suplementaria 2).
    3. Preparar el buffer de carga (LB):
    4. Calcular el volumen total de LB en función de la condición plasmática y del agente reductor de mezcla (1:10), SDS de la muestra, tampón, proteínas de desnaturalización (1:2) y agua.
    5. Resuspende el pellet en el volumen adecuado de 1x LB y hierve a 100 °C durante 10 minutos.
    6. Centrifugar a 18.620 x g, 4 °C, durante 15 minutos. Recoge el sobrenadante.
  2. Carga de ejemplo SDS-PAGE
    1. Prepara la escalera diluyendo el estándar de peso molar (MW) con el amortiguador de carga.
    2. Diluye 10x Tris/Glicina/SDS con buffer a 1x.
    3. Monta la cámara de electroforesis con gel de gradiente libre de manchas al 4%-20% y añade un tampón de corriente hasta que alcance el nivel recomendado indicado por el fabricante.
    4. Carga muestras de 10 μL y una escalera de 7 μL en cada pozo. Haz correr el gel a 150 V durante ~90 minutos a temperatura ambiente.
      NOTA: El volumen de LB debe calcularse en función de la concentración plasmática seleccionada en 3.1.1 para asegurar una visualización óptima de la proteína en la imagen del gel (típicamente proteínas de 10 μg en 20 μL LB).
      PRECAUCIÓN: Para una reproducibilidad óptima, realice análisis SDS-PAGE utilizando muestras de plasma NP recién preparadas. El almacenamiento de pellets lavados a -80 °C durante 24 horas resultó en alteraciones detectables tanto de las propiedades fisicoquímicas (tras la resuspensión y mediciones del potencial DLS/zeta) como de las huellas dactilares de la corona de proteínas (cuando los pellets se procesaron a partir del paso 4.3.1 del protocolo; véase la Figura Suplementaria 3).

5. Análisis de patrones de proteínas

  1. Procesamiento de imágenes
    1. Geles de imagen usando un generador de quimiluminiscencia.
    2. Procesa la imagen del gel de la siguiente manera:
      1. Importa la imagen del gel y guárdala como archivo TIFF, corrígila por efectos no deseados, por ejemplo, distorsiones oblicuas de los carriles que afectan especialmente a los carriles periféricos. Detecta todas las líneas de gel. Resta la señal de fondo de la imagen.
      2. Calibrar los desplazamientos verticales convirtiendo unidades de píxel en unidades de peso molecular, basándose en un ajuste exponencial a doble plazo del carril marcador. Genera salidas gráficas para visualizar perfiles de intensidad y distribuciones de señales específicas por carril.
    3. Exporta los datos procesados, es decir, los perfiles unidimensionales calculados.
    4. Calcular las distribuciones de peso molecular normalizando los perfiles y calcular áreas enteras a lo largo de los rangos de MW deseados para cada carril.
    5. Exporta los datos de salida, es decir, las áreas integrales dentro de los rangos de peso molecular especificados.
  2. Análisis multivariante para diagnóstico
    1. Aplicar análisis discriminante lineal (LDA) u otros métodos multivariantes para el análisis de clasificación.
    2. Calcular precisión, sensibilidad, especificidad y realizar análisis ROC.
      NOTA: Los scripts empleados para el procesamiento de imágenes, la normalización de perfiles, el ajuste y la clasificación están disponibles enel 27, donde también se proporciona el manual de usuario correspondiente.
      PRECAUCIÓN: Sigue los protocolos de bioseguridad al manipular plasma humano.

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Resultados

Uno de los principales retos en la estandarización de los experimentos de PC radica en minimizar la variabilidad técnica y dependiente del operador, como ya destacó esteestudio 26. Aún persisten preguntas abiertas sobre la influencia de variables experimentales como el sesgo del operador y el impacto de las herramientas automatizadas en lareproducibilidad 18,28.

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Discusión

Versatilidad y reproducibilidad del método entre tipos de NP

El protocolo presentado aquí proporciona un flujo de trabajo estandarizado y reproducible para aislar y caracterizar el PC formado en NP al incubarlo con HP. Como se ha demostrado en estudios anteriores yactuales, el método permite la generación de huellas moleculares basadas en SDS-PAGE que capturan características biológica y diagnósticamente relevantes del ...

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Divulgaciones

Los autores no tienen conflictos de interés que revelar.

Agradecimientos

La investigación fue financiada en parte por MUR, Plan Nacional de Inversiones Complementarias al NRRP, financiado por la Unión Europea - NextGenerationEU, Proyecto "D3 4 SALUD - Diagnósticos, pronósticos y terapéuticos impulsados por digital para una atención sanitaria sostenible". PNC0000001, Spoke 3 Línea tematica 2, missione 4, componente 2 CUP: B53C22006120001. Este trabajo también fue apoyado por la Fundación AIRC bajo el proyecto IG 2020-ID. 24521, P.I. Pozzi Daniela.

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
TUBO de unión de proteínas de 1,5 mleppendorf22431081
10x Tris/Glicina/SDSBiorad1610732
CentrifugadoraLabortechnikZ 216 MK HermleUsado a 18.620 RCF durante 20 minutos a 4 °C; C
Sistema de imagen ChemiDocBio-Rad12003153Utilizado para la adquisición de imágenes en gel
CloroformoSigma AldrichC2432-1LDisolvente para DOTAP
Corning 1-200 y micro; Puntas de pipeta empaquetadas a granel L Universal FitCorning4845
Geles prefabricados Criterion TGX Stain-FreeBiorad5678095
Agua destilada 6 x 1LThermo Fisher15230001
DOTAP (1,2-dioleoil-3-trimetilamonio-propano)Lípidos polares Avanti890890P-200mgSe utiliza para preparar liposomas catiónicos; disuelto en cloroformo, evaporado, hidratado y extruido
Fuente de alimentación Enduro 300V Labnet E0303-230V
Lector de microplacas GloMax DiscoverPromegaGM3000
Nanopartículas de oro (estabilizadas con citrato)Sigma-Aldrich742031-25MLUtilizado como nanomaterial; Usado sin purificación adicional
Gel de poliacrilamida degradado (4– 20% TGX)Bio-Rad5678095Usado para SDS y guiño; PÁGINA
Grant Instrument  Termoshaker HC24N (24 microtubos de 1,5 mL)Fisher ScientificPHMT-PSC24N
Solución de óxido de grafeno (GO)GrafeneaGO-4-1000Utilizado como nanomaterial; diluido a 0,25 mg/mL y sonicado
Plasma humano (HP)Sigma-AldrichP9523-5MLUtilizado para la incubación de nanopartículas
ImageLab SoftwareBio-Rad. Versión 6.1.0.07/Usado para exportar imágenes en gel como archivos tiff
Búfer de carga de Laemmli 2xBiorad1610737Utilizado para resuspender pellets
MATLABMathWorks. Versión R2022a/Utilizado para procesamiento de imágenes, análisis de datos y cálculo de perfiles
Mini-extrusorLípidos polares Avanti610020Utilizado para la preparación de liposomas
Agente reductor de muestras NuPAGE (10X)Termo CientíficaNP004
Amortiguador de solución salina de fosfatoCorning 21-031-cmUtilizado para muestras DOTAP-HP
Kit de análisis de proteínas Pierce BCA, 1 kit (1 L)ThermoFisher23225
Puntas de pipet 0,5-10ul transparentesAxygenT-300-STK
PIPETMAN L P10L, 0,5-10 & micro; L, Metal EjectorGilsonFA10002M
PIPETMAN P20, 2-20 y micro; L, Metal EjectorGilsonF144056M
PIPETMAN P200, 20-200 y micro; L, Metal EjectorGilsonF144058M
Sistema automatizado de pipeteo PIPETMAXGilsonGSYS0021Utilizado para el manejo automatizado de muestras
Filtro de policarbonato (0.1 & micro; m)Lípidos polares Avanti610005-1EAUso para extrusión de liposomas
Estándares de proteína Precision Plus Protein All Blue PrestainedBiorad1610373
Estándares Precision Plus Protein Unstained & nbsp;Biorad1610363EDU
Sonicador de célula vibra VC505Sonics and Materials Inc.VC505
ZetaSizerMalvernZS90Utilizado para mediciones de dispersión dinámica de luz (DLS) y microelectroforesis (ME)

Referencias

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