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El estudio se realizó conforme a la Declaración de Helsinki y fue aprobado por el Comité de Ética Institucional del Hospital Central Popular de Huizhou (Aprobación nº 2022-015). Este estudio no fue registrado como ensayo clínico debido a su diseño retrospectivo. Se renunció al consentimiento informado debido a la naturaleza retrospectiva del análisis y todos los datos de los pacientes fueron desidentificados. Los regentes y el equipo utilizado están listados en la Tabla de Materiales.
1. Diseño del estudio y selección de pacientes
Como estudio multicéntrico retrospectivo, reconocemos el potencial sesgo de selección. Para mitigar esto, la identificación del paciente siguió un protocolo de inscripción consecutiva a partir de los registros prospectivos de ictus en cada centro participante. Todos los pacientes que presentaron infarto cerebral agudo durante el periodo del estudio (enero de 2022 a enero de 2025) fueron evaluados para comprobar su elegibilidad, y aquellos que cumplían los criterios de inclusión fueron inscritos secuencialmente. Los datos se agruparon de tres instituciones: el Hospital Popular Shaoxin Shangyu, el Hospital Run Run Shaw y el Hospital Central Popular de Huizhou. Se establecieron acuerdos de intercambio de datos entre todos los centros participantes para garantizar una supervisión y acceso adecuados a los datos.
Para gestionar los datos faltantes, se implementó un enfoque de imputación múltiple utilizando ecuaciones encadenadas para variables con <5% de faltante. Para variables con >5% de datos faltantes, se empleó un análisis completo de casos, con un informe transparente de patrones de ausencia. Variables críticas, incluyendo genotipo CYP2C19, NIHSS de base y mRS a 3 meses, tenían datos completos para todos los participantes. Las posibles confusiones se abordaron mediante ajustes multivariantes en nuestros modelos estadísticos, incluyendo factores pronósticos conocidos como la edad, la gravedad basal del ictus, los factores de riesgo vasculares y los medicamentos concomitantes. Específicamente, se recopilaron datos sobre medicamentos concomitantes (antiplaquetarios, estatinas, antihipertensivos) y se ajustaron en los análisis.
- Criterios de inclusión
Los criterios de inclusión fueron los siguientes: (1) Diagnóstico de infarto cerebral agudo confirmado por pruebas de imagen y criterios clínicos según las Directrices chinas para el Diagnóstico y Tratamiento del Ictus Isquémico Agudo; (2) Primer ictus con tiempo de inicio a admisión <72 h; (3) Tratamiento con butilftaluro (0,1 g por cápsula) a una dosis de 0,2 g tres veces al día en el estómago vacío, iniciado en las 24 horas posteriores a la admisión; (4) No hay terapia previa trombolítica ni anticoagulante.
- Criterios de exclusión
Los criterios de exclusión fueron los siguientes: (1) trastornos psiquiátricos comórbidos o deterioro cognitivo; (2) Disfunción hepática, renal o cardíaca severa; (3) Hipersensibilidad al fármaco del estudio; (4) Enfermedades inflamatorias o autoinmunes sistémicas. Los pacientes fueron estratificados en grupos de buen pronóstico (mRS ≤2) y de pronóstico pobre (mRS ≥3) basándose en puntuaciones modificadas de la Escala deRankin a 3 meses. El proceso de inclusión del paciente se muestra en la Figura 1.
La adherencia del paciente a la terapia con butilftaluro se monitorizó mediante observación directa de la administración de medicamentos durante la hospitalización, recuento de pastillas y revisiones del diario de medicación durante las visitas de seguimiento, entrevistas telefónicas estructuradas cada 2 semanas para evaluar la adherencia y efectos adversos, y revisión de los registros de renovación de farmacias para pacientes ambulatorios. Los pacientes con adherencia del <80% fueron excluidos del análisis (n=7). El criterio de seguimiento a los 3 meses se seleccionó basándose en los estándares establecidos de investigación sobre los resultados del ictus, ya que la mRS a los 90 días posteriores al ictus es ampliamente aceptada como un criterio principal que captura el periodo crítico de recuperación.
2. Recogida de datos clínicos
Los datos se recopilaron sistemáticamente utilizando formularios electrónicos de informes de casos que cubrían cinco dominios: características demográficas (edad, género, índice de masa corporal, Tabla 1), factores de riesgo vascular (hipertensión, diabetes mellitus, historial de tabaquismo, historial de consumo de alcohol), presentación clínica (lugar del infarto, puntuación inicial NIHSS), parámetros de laboratorio y detalles del tratamiento. Los biomarcadores sanguíneos se midieron de la siguiente manera:
- Perfil lipídico (TC, TG, LDL-C, HDL-C)
Analizado mediante un analizador bioquímico automatizado, con un rango de ensayo de 0–20 mmol/L para TC, 0–10 mmol/L para TG, 0–15 mmol/L para LDL-C y 0,5–2,0 mmol/L para HDL-C.
- Homocisteína sérica (Hcy)
Medidas mediante ELISA (rango de detección 5–50 μmol/L, coeficiente de variación <5%). Las muestras se almacenaron a -80 °C en un plazo de 2 horas tras la recogida para evitar su degradación.
3. Genotipado CYP2C19
- Recogida de muestras y extracción de ADN
Se recogió sangre venosa en ayunas (5 mL) de la vena cubital media por la mañana. Tras 30 minutos de coagulación a temperatura ambiente, las muestras se centrifugaron a 1.600 × g durante 10 minutos a 4 °C utilizando una centrifugadora de alta velocidad para aislar el suero. Se extrajo ADN genómico de 300 μL de suero siguiendo el protocolo del fabricante. Brevemente, las muestras se incubaron con un tampón de lisis de 300 μL a 56 °C durante 10 minutos, seguido de la adición de 100 μL de etanol absoluto. La mezcla se transfirió a columnas de purificación y centrifugó a 12.000 × g durante 1 minuto a temperatura ambiente. El ADN se eluía con un tampón de elución precalentado de 50 μL (70 °C) tras dos pasos de lavado con tampón de lavado de 500 μL cada uno, con centrifugación a 12.000 × g durante 1 minuto tras cada lavado. La concentración final de ADN se ajustó a 50–100 ng/μL usando un espectrofotómetro y se almacenó a -20 °C.
- Genotipado por PCR en tiempo real
CYP2C19 genotipado se realizó mediante PCR en tiempo real. La mezcla de reacción de 20 μL consistía en 10 μL de 2× mezcla maestra TaqMan, 1 μL mezcla cebador-sonda, plantilla de ADN de 2 μL y 7 μL de agua sin nucleasa. Las condiciones de ciclo térmico se establecieron de la siguiente manera: desnaturalización inicial a 95 °C durante 30 s, seguida de 40 ciclos de desnaturalización a 95 °C durante 5 s y recocido/extensión combinada a 60 °C durante 34 s. Los datos de fluorescencia se recogieron durante la fase de recocido/extensión.
- Confirmación de genotipos y control de calidad
Las llamadas al genotipo se confirmaron mediante secuenciación de Hi-SNP de segunda generación con una cobertura del 100×. Para resultados discordantes (n=3), se empleó el análisis de polimorfismo de longitud de fragmentos de restricción como método de respaldo: se incubó un producto PCR de 20 μL con 1 μL de enzima de restricción HpyCH4V y 4 μL de tampón correspondiente a 37 °C durante 1 hora, seguido de una separación mediante electroforesis en gel de agarosa al 2% a 100 V durante 45 minutos.
Se implementaron rigurosas medidas de control de calidad. Todas las muestras se procesaron en duplicado con pruebas de replicación ciegas; se incluyeron controles internos (genotipos conocidos) en cada ejecución de PCR; la concordancia entre los resultados de PCR en tiempo real y la secuenciación Hi-SNP fue del 100%; Muestras seleccionadas al azar (10%) se enviaron a un laboratorio independiente para su validación, logrando una concordancia del 100%; las tasas de llamada superaron el 99,5% con una puntuación mínima de calidad genotípica de T30.
- Clasificación del fenotipo metabólico
Los fenotipos metabólicos se categorizaron según CYP2C19 genotipo de la siguiente manera: metabolizadores pobres (*2/*2, *2/*3, *3/3); Metabolizadores intermedios (*3/*17, *2/*17, *1/*2, *1/*3); Metabolizadores rápidos (*1/*1). Este esquema de clasificación de tres niveles se empleó para mantener la coherencia con las prácticas de laboratorios clínicos regionales. La frecuencia del alelo *17 y la distribución de genotipos dentro del grupo IM se detallan en la sección de Resultados.
4. Análisis estadístico
Los análisis estadísticos se realizaron utilizando la versión 25.0 de SPSS. Los datos categóricos se expresaron como [n (%)] y se compararon mediante pruebas χ2 (con corrección de Yates para muestras pequeñas). Se probaron variables continuas para comprobar su normalidad usando la prueba de Shapiro-Wilk; Los datos normalmente distribuidos se presentaron como media ± desviación estándar y se analizaron con pruebas t independientes, mientras que los datos no normales se analizaron con pruebas Mann-Whitney U.
La multicolinealidad se evaluó utilizando tolerancia (≥0,1) y factor de inflación de varianza (VIF <10). El análisis de regresión logística (utilizando el menú Analyze → Regression → Binary Logistic path en SPSS) se utilizó para identificar factores pronósticos independientes, con criterios de entrada y salida establecidos en P <0,05 y P >0,10, respectivamente. Las variables introducidas en el modelo incluyeron los niveles de Hcy (continuos), la puntuación inicial NIHSS (continua), la hipertensión (categórica) y CYP2C19 fenotipo metabólico (categórico, con metabolizador rápido como referencia). Se realizó la prueba de ajuste Hosmer-Lemeshow para evaluar la calibración del modelo. Se consideró estadísticamente significativo un P <0,05 de dos colas.
Los tamaños de efecto se calcularon de la siguiente manera: para variables continuas, la d de Cohen se calculó usando la función Analyze < Compare MeansIndependent-Samples-Tests T con el cálculo adicional del tamaño del efecto habilitado; para variables categóricas, el coeficiente phi se obtuvo a partir del resultado de la prueba χ2 bajo Analizar tablas cruzadas de estadísticas descriptivas con Phi y V de Cramer seleccionadas en las opciones de Estadística.