Todos los estudios fueron aprobados por el Comité Institucional de Cuidado y Tratamiento Animal de la Universidad Médica de Xuzhou. Los reactivos y el equipo utilizado se enumeran en la Tabla de Materiales.
1. Modelo animal
Se adquirieron ratas adultas, machos y hembras Sprague-Dawley (SD), que pesaban entre 250 y 300 g, al Centro Experimental de Animales de la Universidad Médica de Xuzhou. Las ratas se criaban en una sala especial libre de patógenos. Los procedimientos experimentales con animales, incluyendo tratamiento, cuidado y elección del punto final, siguieron las directrices de "Investigación Animal: Reporte de Experimentos In Vivo". Se realizaron experimentos con animales mediante aleatorización. Las ratas SD se agruparon en cuatro grupos (n = 8 por grupo): grupo normal (sin cirugía, alimentación normal) (grupo normal), grupo simulado (cirugía simulada: incisión de piel y músculo sin transección del ligamento cruzado anterior [ACLT], seguida de gavage con solución salina), grupo KOA/NC (cirugía ACLT + gavage salino), grupo KOA/OST (cirugía ACLT + gavage OST). El modelo KOA de la rodilla de rata se construyó utilizando el método de transección del ligamento cruzado anterior (ACLT) como se describióanteriormente 29. Al grupo de suero fisiológico se le administró mediante gavage, y al grupo de OST se le administró mediante GAGE durante 4 semanas. La dosis de OST es de 50 mg/kg de peso corporal (disuelta en PEG 400 y diluida con solución fisiológica), y la frecuencia de administración es una vez al día durante 4 semanas en la subsección de Ratas. Después, se sacrificó a las ratas para su análisis (siguiendo protocolos institucionalmente aprobados). Los tejidos se congelaban inmediatamente en nitrógeno líquido o se fijaban en paraformaldehído al 4%.
2. Cultivo celular
La línea celular de condrocitos humanos (C28/I2) se obtuvo de la American Type Culture Collection (ATCC, Manassas, VA). Las células se cultivaron según las directrices del ATCC y se utilizaron en un plazo de 6 meses.
Condiciones del cultivo: medio DMEM/F-12 suplementado con suero bovino fetal al 10% y 1% penicilina-estreptomicina, incubado a 37 °C en una incubadora humidificada al 5% de CO2 .
Tratamientos: Las células se siembraron en 1 × 106 células por pozo en placas de 6 pozos; tras 24 horas de adherencia, se trataron solo con LPS (1 μg/mL) o con OST (100 μM) durante 24 horas.
3. Ensayos de viabilidad celular
Las células condrocitas fueron coincubadas con OST o LPS en diferentes concentraciones en placas de 96 pozos. El ensayo CCK8 refleja la viabilidad celular al detectar absorbancia (OD450 nm) mediante un lector de microplacas, con valores de OD más altos indicando células más viables.
Gradiente de concentración OST: 0, 25, 50, 100, 200, 400 μM (incubado durante 24 horas). El ensayo CCK8 mostró una viabilidad celular del >90% en todas las concentraciones, confirmando la no toxicidad del compuesto.
Gradiente de concentración de LPS: 0, 0,1, 0,5, 1, 2 μg/mL (incubado durante 24 horas). El grupo LPS de 1 μg/mL tenía ~50% de viabilidad celular (frente al grupo Ctrl), por lo que esta concentración se eligió para experimentos posteriores.
4. Tinción de hematoxilina y eosina (H&E) y tinción con Safanin O
Los tejidos se incrustaron en parafina, se desenceraron, se rehidrataron y se teñieron con reactivos H&E y Safranin O/Fast Green según las indicaciones del fabricante. Condiciones de tinción: la concentración de trabajo de AO fue de 1 μg/mL; las células se incubaron a 37 °C durante 5 minutos en la oscuridad.
Método cuantitativo: La tasa de positividad AVO se calculó contando células que contienen puntos naranjas en 5 campos aleatorios (aumento ×400) por muestra utilizando el software ImageJ. Luego, se capturaron secciones bajo un microscopio BX43 (aumento ×400).
5. Citometría de flujo
Las células se extrajeron y resuspendieron en la solución de Annexin-V FITC/PI para el análisis de apoptosis. Condiciones de incubación: Las células fueron resuspendidas a 1 ×10 6 células/mL en solución de Annexin-V FITC/PI (KeyGEN) e incubadas a temperatura ambiente durante 15 minutos en la oscuridad.
Estrategia de gating: Dispersión directa (FSC) vs. se usaban compuertas de dispersión lateral (SSC) para excluir los restos de las celdas; Las células FITC⁺/PI⁻ de Annexin-V se definieron como apoptóticas tempranas, y las de Annexin-V FITC⁺/PI⁺ como apoptóticas tardías. El gráfico de acceso está incluido en el Archivo Suplementario 1 (datos brutos de citometría de flujo). Las células se recogían mediante un citómetro de flujo. Los datos se analizaron utilizando el software Flow Jo.
6. Transfección de plásmidos y mimetismo
El MiR-34a mimético (34a-mimic) y el mimetismo de control no específico (NC) se obtuvieron de una fuente comercial. Las células fueron transfectadas con plásmidos usando LipofectaminaTM 3000 según las instrucciones del fabricante.
7. Mancha de naranja acridina
La autofagia se evaluaba habitualmente mediante tinción de naranja acridina en las células. Tras el tratamiento de las células con LPS o OST en concentraciones específicas durante 24 horas, se incubaron con AO (1 μg/mL) a 37 °C durante 5 minutos en la oscuridad. Las imágenes se capturaron utilizando un microscopio láser confocal. La tasa de positividad AVO se calculó contando celdas que contienen puntos naranjas en 5 campos aleatorios (aumento de ×400) por muestra utilizando el software ImageJ. Los datos se reportan como media ± DE de tres experimentos independientes.
8. Observación con microscopio electrónico de transmisión
Las muestras se fijaron con glutaraldehído al 2,5% y tetróxido de osmio al 1%, luego se deshidrataron, enjuagaron e impregnaron. Tras la polimerización, las muestras se cortaron en secciones de 70 nm de grosor utilizando un ultramicrotomo. La ultraestructura de las células fue observada mediante microscopía electrónica de transmisión.
9. Inmunoblot
Se compraron anticuerpos monoclonales de ratón (Abs) contra Bcl-2 (#68103), anticuerpo policlonal de conejo contra LC3 (#14600-1-AP), IL-6 (21865-1-AP) y anticuerpo monoclonal de ratón contra β-actina (#66009-1-lg) a Proteintech. Se obtuvieron comercialmente ABS secundarios conjugados a IRDye 800CW de Cabra (policlonal), anti-Rabbit IgG (H+L) o IRDye 800CW de cabra (policlonal) anti-Mouse IgG (H+L). Las células se lisaron en un ensayo de lisis de célula completa, separadas por electroforesis en gel de SDS-poliacrilamida. Se detectaron proteínas utilizando el ABS primario y el correspondiente ABS secundario. La carga proteica era de 30 μg por carril; diluciones primarias de anticuerpos: Bcl-2 (1:1000), LC3 (1:1500), β-tubulina (1:5000); se usaron anticuerpos secundarios (IRDye 800CW) en 1:10.000, IL-6 (1:800). Luego, las bandas proteicas fueron capturadas por el sistema de imagen láser de quimioluminiscencia mejorada. Las bandas proteicas fueron cuantificadas por el software ImageJ.
10. Reacción en cadena cuantitativa de la polimerasa en tiempo real (qRT-PCR)
Los ARN totales se aislaron de células utilizando el reactivo Trizol. Los cDNA derivados de ARN total se sintetizaron utilizando el kit de regente de cDNA y se analizaron mediante los métodos SYBR Green. Los cDNA derivados de miRNAs se sintetizaron usando un kit de cDNA de primera cadena miRcute más miRNA y analizados mediante un kit qPCR miRcute más miRNA. Todos los procedimientos se realizaron según el protocolo del fabricante. La expresión del transcrito objetivo se calculó utilizando el método 2-△△CT . GADPH y U6 se usaron como control de carga para ARNm y miARN, respectivamente. La secuencia de cebadores se enumera en la Tabla 1.
11. Ensayos de reporteros luciferasa
Plásmido reportero tipo psiCHECK2-Bcl-2-3′UTR (WT) y plásmido reportero psiCHECK2-Bcl-2-3′UTR con un mutante en el sitio de unión de miR-34a (Mut). Los reporteros y el miR-34a imitador fueron co-transfectados en células condrocitas usando LipofectamineTM 3000. Las células se extrajeron y lisaron tras 24 horas de transfección. La intensidad de la luciferasa se midió entonces utilizando el kit Dual-LumiTM Luciferase Reporter Gene Assay según las instrucciones del fabricante.
12. Pruebas de análisis de la marcha
El sistema MGT-PR se utilizó para observar los movimientos en movimiento de las ramas en movimiento de las ratas en cada grupo. Antes de las pruebas, se permitió que las ratas se adaptaran al entorno de la pista. Se registraron datos de marcha durante la marcha libre, capturándose tres ensayos válidos consecutivos para cada rata. Los parámetros analizados incluyeron la longitud del paso, la duración del columpio y la coordinación entre las extremidades traseras derecha e izquierda.
13. Análisis estadístico
Los experimentos se realizaron en triplicado y se repitieron de forma independiente al menos tres veces. El análisis estadístico se realizó utilizando el software GraphPad Prism 9. Los datos se mostraron como media ± DS. Las diferencias estadísticas se evaluaron mediante ANOVA unidireccional (prueba post hoc de Tukey) para comparaciones múltiples, o mediante la prueba t de Student bilateral para dos comparaciones experimentales de grupos. Se aceptaron diferencias como significativas en p < 0,05.