Modelado animal
Este estudio fue aprobado por el Comité de Ética del Segundo Hospital Afiliado de la Universidad de Medicina Tradicional China de Fujian (Aprobación nº FJPSPH-IAEC2024114) y se llevó a cabo en cumplimiento de las directrices de bienestar animal. Los machos de ratas Sprague-Dawley que pesaban entre 180 y 200 g fueron alojadas en condiciones controladas a 22-26°C y una humedad del 40-70%. La LME se indujo mediante el método Allen de caída de peso10: anestesia inhalada de isoflurano al 3-4%, incisión en la línea media en T10, exposición de los segmentos T9-T11, laminectomía (duramadre intacta) e impacto (punta de 2 mm, velocidad de 0,5 m/s, profundidad de 1,3 mm, duración de 1 s). Las ratas falsas se sometieron a laminectomía sin impacto. Criterios de inclusión: puntuación BBB < 8 a las 24 horas tras la cirugía; Criterios de exclusión: infección, transección de médula espinal. Cuidados postoperatorios: analgesia (buprenorfina, 0,1 mg/kg de s.c., cada 12 horas durante 3 días), expresión de vejiga (cada 6 horas durante 1 semana) y cuidado estéril de la herida. Las ratas modelo exitosas fueron asignadas aleatoriamente a un grupo modelo, y grupos de GLGZ de alta dosis (2,32 g/kg, n = 10), media (1,16 g/kg, n = 10), de dosis baja (0,58 g/kg, n = 10).
Análisis de la función motora
La puntuación de Basso, Beattie y Bresnahan (BBB) se realizó a ciegas. Se observó a las ratas en un campo abierto durante 5 minutos, evaluando el movimiento de las articulaciones de las extremidades posteriores, la capacidad de carga, la marcha y la coordinación.
Elastografía por onda cortante para medir la rigidez del recto femoral
Se utilizó un sistema de ultrasonido Doppler con una sonda de matriz lineal (18L6). Las ratas fueron colocadas en reclinancia lateral (músculo relajado). La SWE se realizaba con la sonda posicionada en un ángulo de 90° respecto al músculo, a una profundidad de 1-2 cm. La región de interés (ROI) se estableció en 0,5 × 0,5 cm, y se adquirieron diez fotogramas por medición. El valor final de rigidez representaba la media de tres mediciones válidas. Se registró la velocidad de onda de corte (SWV); El control de calidad verde indicó imágenesválidas 11.
Examen de resonancia magnética
La resonancia magnética se realizó utilizando un escáner de 7,0T con una secuencia de supresión de grasa ponderada T2 y una bobina animalespecífica para animales. Los parámetros de adquisición fueron los siguientes: tiempo de repetición (TR) 3.800 ms, tiempo de eco (TE) 72 ms, grosor de corte 1 mm, tamaño voxel 0,1 × 0,1 × 1 mm, matriz 256 × 256, campo de visión (FOV) 25,6 × 25,6 mm, cuatro promedios de señal y compuertas respiratorias. El área de la lesión se midió mediante software de procesamiento de imágenes.
Tinción histológica
La tinción con HE se realizó mediante desparafinización secuencial, rehidratación, tinción de hematoxilina durante 5 minutos, enjuague con agua corriente, diferenciación en ácido clorhídrico-etanol al 1% durante 30 segundos, tinción con eosina durante 2 minutos, deshidratación, limpieza y montaje. Como punto de control visual, las secciones teñidas mostraron núcleos azules y citoplasma rojo.
La tinción con Nissl se realizó mediante desparafinización, rehidratación, incubación en azul de toluidina al 0,1% a 50-60 °C durante 30 minutos, seguida de un enjuague con agua destilada, diferenciación de etanol, deshidratación, limpieza y montaje. Como punto de control visual, se observaron claramente cuerpos de Nissl azul oscuro en el grupo simulado.
La tinción de Luxol fast blue-cresyl violeta se realizó mediante deparafinización, rehidratación, incubación en Luxol fast blue a 60 °C durante 2 horas, enjuague con etanol al 95%, diferenciación en carbonato de litio durante 30 s, seguida de diferenciación al 70% de etanol, contratinción con cresyl violeta durante 10 minutos, deshidratación, limpieza y montaje. La concentración de trabajo de violeta cresil fue del 0,1%. Como punto de control visual, se observó mielina azul oscuro en el grupo simulado.
Se realizó tinción por inmunofluorescencia multiplex comenzando con la deparafinización, rehidratación y extracción de antígenos utilizando tampón de citrato (pH 6,0) a 95 °C durante 20 minutos. Las secciones se trataron con peróxido de hidrógeno al 3% durante 10 minutos, seguidas de un bloqueo con BSA al 5% a 37 °C durante 1 hora. Los anticuerpos primarios se incubaron durante la noche a 4 °C (ASC: 1:500; Caspase-8: 1:400; RIPK3: 1:500). Tras lavarse con PBS-T (0,1% Tween-20, 3 x 5 min), se incubaron secciones con anticuerpos secundarios marcados por HRP (1:1000) a 37 °C durante 1 hora. Luego se aplicó marcado con fluorocromo: YTR520 Plus para ASC, TYR570 Plus para Caspase8 y TYR690 Plus para RIPK3 (30 min), seguido de tinción nuclear DAPI durante 5 minutos. Se montaron láminas y se realizaron imágenes utilizando un microscopio de fluorescencia con 500 ms de exposición, ganancia 1,0, aumento ×200, con filtros que coincidían con los respectivos fluorocromos.
Para xileno y etanol, todas las operaciones se realizaban en una campana extractora, y durante el uso se usaban guantes y gafas de protección. Para los reactivos de tinción, se evitaba estrictamente el contacto directo con la piel. Todos los reactivos de residuos se eliminaron en contenedores designados para residuos peligrosos. Para los materiales de riesgo biológico se realizó una esterilización exhaustiva por autoclave antes de la disposición final para evitar una posible contaminación biológica.
Análisis estadístico
Se utilizó ANOVA unidireccional con prueba post-hoc de LSD para comparaciones de grupos. Se consideró estadísticamente significativo un P < 0,05.