1. Taxonomía y características del género Nocardia
- Sistema de clasificación de Nocardia
Según el sistema de clasificación más reciente, Nocardia spp. comprenden actualmente 109 especies válidamente nombradas, de las cuales aproximadamente la mitad se consideran clínicamenterelevantes. La taxonomía de Nocardia está en constante evolución, y la aplicación de la secuenciación genética de ARNr 16S, el análisis de secuencias multilocus (MLSA) y la secuenciación del genoma completo (WGS) ha refinado significativamente la clasificación e identificación de este género1˒10.
La prevalencia de especies específicas de Nocardia varía sustancialmente según la metodología de identificación, la presentación clínica y la regióngeográfica 1. Cuando se aplican técnicas moleculares como MLSA, Nocardia cyriacigeorgica y Nocardia farcinica emergen como las especies más prevalentesen general 1˒3˒4. Cabe destacar que muchos aislados previamente reportados como asteroides de Nocardia han sido reclasificados como N. cyriacigeorgica basándose en la caracterizaciónmolecular 1. En cambio, Nocardia brasiliensis es el agente predominante de la nocardiosis cutánea primaria y del actinomitema nocárdico, en lugar de una especie universalmente prevalente en todos los síndromesclínicos. Otras especies clínicamente relevantes comúnmente encontradas incluyen Nocardia nova, Nocardia otitidiscaviarum, Nocardia veterana y miembros del complejo Nocardia transvalensis 1˒3.
Los factores geográficos y el estado inmunitario del hospedador también influyen significativamente en la distribución de las especies. Por ejemplo, N. brasiliensis se reporta con mayor frecuencia en regiones tropicales y subtropicales, mientras que N. farcinica y N. cyriacigeorgica se identifican comúnmente en climastemplados 1˒3. En pacientes inmunodeprimidos, ciertas especies como N. farcinica y N. cyriacigeorgica se asocian con infecciones diseminadas más graves2˒6.
La identificación precisa de especies es fundamental para desarrollar estrategias de tratamiento efectivas, ya que diferentes especies de Nocardia presentan perfiles de susceptibilidad antimicrobiana distintos. Por ejemplo, N. farcinica es intrínsecamente resistente a muchas β-lactámicas11, mientras que N. brasiliensis suele mostrar una susceptibilidad reducida a los carbapénmicos 3˒4. Así, la identificación precisa de especies guía directamente la terapia antimicrobiana adecuada y mejora los resultados clínicos.
- Características biológicas de Nocardia
Nocardia spp. son bacterias filamentosas ramificadas Gram-positivas con una gran capacidad de adaptación a diversos nichos, lo que les permite sobrevivir bajo diversas condicionesambientales 12. Estas bacterias suelen formar colonias filamentosas y producen colonias características "tizas" o "arrugadas" en medios de agar (Figura 1). Nocardia crece lentamente, requiriendo generalmente varios días o semanas de incubación para un crecimiento visible. Además, Nocardia spp. puede utilizar diversas fuentes de carbono, demostrando una fuerte diversidad metabólica, lo que permite la supervivencia en una amplia variedad de entornosnaturales 13.
- Características infecciosas de Nocardia
Las infecciones por nocardio suelen presentarse como infecciones pulmonares, cutáneas o enfermedades sistémicas y son más frecuentes en pacientesinmunodeprimidos 2˒14. Clínicamente, las manifestaciones son diversas y pueden incluir tos, fiebre y dificultad para respirar. Las infecciones pueden progresar rápidamente hacia una enfermedad pulmonar grave o sepsis. En algunos casos, las infecciones por Nocardia también pueden causar abscesos cerebrales u otras infecciones del sistema nervioso central, especialmente en pacientes inmunodeprimidos15. Por ello, la identificación temprana y el tratamiento rápido son fundamentales para mejorar el pronóstico del paciente.
- Características epidemiológicas de las infecciones por Nocardia
Los estudios epidemiológicos muestran una variación geográfica significativa en las infecciones por Nocardia . La incidencia global es relativamente baja, pero aumenta notablemente en poblaciones de alto riesgo, como individuos infectados por VIH y receptores de trasplantes de órganos. Por ejemplo, la incidencia de infecciones por Nocardia en receptores de trasplante de riñón es aproximadamente del 0,4%–1,3%, mientras que en los receptores de trasplante de pulmón puede llegar a ser tan alta como un 9%16˒17%.
Los análisis de susceptibilidad en diferentes poblaciones indican que los pacientes que reciben tratamiento inmunosupresor a largo plazo son más propensos a infecciones por Nocardia , que están estrechamente asociadas con una función inmunitariacomprometida 2. Además, se consideran que los factores de exposición ambiental, como el contacto con el suelo y la inhalación de polvo, aumentan el riesgo de infección por Nocardia , especialmente entre personas que viven o trabajan en entornos de altoriesgo 18.
2. Avances en técnicas de identificación molecular para Nocardia spp.
- Secuenciación del gen 16S rRNA
Debido al proceso complejo y largo de cultivar y aislar Nocardia, la introducción de la tecnología PCR ha mejorado significativamente la velocidad y precisión del diagnóstico. Laurent et al. demostraron que la amplificación del gen 16S rRNA usando cebadores específicos podía identificar rápidamente Nocardia a partir de aislados cultivados, sentando las bases para su aplicación en microbiologíaclínica 19. Posteriormente, se ha reportado la detección directa de Nocardia a partir de muestras clínicas mediante PCR de ARNr 16S, aunque su sensibilidad sigue siendo variable y requiere sospecha clínicaprevia 20˒21.
Estudios comparativos directos han demostrado que la qPCR específica de Nocardia, dirigida al gen 16S rRNA, proporciona mayor sensibilidad y un tiempo de respuesta más corto que el cultivo convencional en muestras clínicas, incluyendo el lavado broncoalveolar de fluido, esputo, pus y muestras de tejido. Couble et al. informaron de una sensibilidad del 88% y una especificidad del 98% para la qPCR directa de Nocardia , con resultados disponibles en cuestión de horas, mientras que el cultivo puede requerir días o semanas deincubación 22. Ding et al. confirmaron además que la PCR del gen 16S rRNA puede aplicarse directamente a muestras clínicas para la detección de Nocardia , permitiendo una identificación rápida incluso en casos negativos en cultivo y compensando eficazmente las limitaciones delcultivo tradicional 21.
Este método confirma eficazmente la infección nocárdica pero, como enfoque dirigido, requiere sospecha clínica previa. A pesar de su alta precisión para la identificación a nivel de género, la alta conservación del gen 16S rRNA plantea desafíos para distinguir especies estrechamente relacionadas, como las del complejo Nocardia asteroides 10,21. Esta limitación refleja una reducción de la resolución a nivel de especie en lugar de una baja precisión global. Por lo tanto, los resultados de la secuenciación a menudo requieren validación cruzada con otros métodos, como el análisis de secuenciación multilocus (MLSA) o la secuenciación del genoma completo (WGS), para alcanzar una resolución definitiva a nivelde especie 23˒24.
- Análisis de secuencias multilocus (MLSA)
MLSA es una técnica molecular con un valor de aplicación significativo en la identificación y tipificación de especiesbacterianas 23. Para géneros complejos como Nocardia, MLSA permite una identificación más precisa de especies mediante el análisis de la información de secuencias de múltiples genes conservados. Los estudios han demostrado que el MLSA puede diferenciar eficazmente entre diversas especies de Nocardia , especialmente aquellas que son morfológica y fisiológicamente similares25. Por ejemplo, un estudio identificó 14 especies diferentes de Nocardia al secuenciar cuatro genes (por ejemplo, gyrB, hsp65, secA1 y 16S rRNA), destacando la eficiencia y precisión deMLSA 25. Además, la MLSA puede revelar diversidad genética y apoyar investigaciones epidemiológicas. También facilita el seguimiento de la transmisión y variación de cepas, proporcionando datos importantes para el monitoreo y control de infecciones.
Sin embargo, el MLSA es intensivo en mano de obra, costoso y carece de umbrales de corte universales, lo que limita su aplicación clínica rutinaria. Como señalan Traxler et al., MLSA no es adecuado para un uso rutinario debido a estaslimitaciones 1. Por lo tanto, el papel principal de MLSA en la práctica actual se limita a entornos de investigación, incluyendo investigaciones epidemiológicas, tipificación de cepas y estudios taxonómicos. Para la identificación clínica rutinaria, se prefiere la MALDI-TOF EM por su rapidez, bajo coste y facilidad de uso. Cuando se requiere una mayor resolución —como para la identificación definitiva de especies, la detección de genes de resistencia o el análisis filogenético— la secuenciación del genoma completo (WGS) ofrece capacidades superiores. Estudios recientes que han utilizado WGS no solo han distinguido especies conocidas de Nocardia con alta resolución, sino que también han permitido identificar especies potencialmente novedosas, superando las capacidades de MLSApor sí solas 24. Por ello, WGS ha emergido como una alternativa más potente, ofreciendo mayor resolución y una capacidad analíticamejorada 9.
- Aplicación y desafíos del MS MALDI-TOF
La espectrometría de masas de ionización por desorción láser asistida por matriz (MALDI-TOF MS) se ha extendido cada vez más en microbiología, especialmente para la identificación rápida de patógenos, demostrando un valor clínico significativo26. Esta tecnología analiza espectros de proteínas microbianas para proporcionar una identificación precisa a nivel de especie o complejo en poco tiempo. Por ejemplo, los estudios han reportado una precisión de identificación del 97,3% para especies de Nocardia en muestras clínicas en Japón27.
A pesar de su buen desempeño, persisten desafíos. La precisión de identificación a nivel de especie puede variar dependiendo de la versión de la base de datos y del número de especiesanalizadas 23. Se ha demostrado que las bases de datos actualizadas mejoran la proporción de aislados que logran una identificación fiable a nivel de género (puntuación >1,7) del 77,6% al 94,7%27, lo que pone de manifiesto la importancia de las actualizaciones regulares de la base de datos. La identificación a nivel de especie suele requerir umbrales de puntuación más altos (por ejemplo, >2,0).
MALDI-TOF MS ofrece identificación rápida (normalmente <10 minutos por aislado tras el crecimiento de la colonia), bajo coste por prueba (1–5 $ por muestra) y una complejidad técnica mínima, lo que lo hace muy adecuado para laboratorios clínicos de microbiología de primera línea. Sin embargo, las limitaciones incluyen el alto coste inicial del instrumento y la necesidad de bases de datos espectrales completas y actualizadas regularmente para mantener la precisión a nivel de especie.
- Avances en la secuenciación del genoma completo (WGS)
La secuenciación del genoma completo (WGS) está demostrando cada vez más ventajas significativas en la identificación microbiana, proporcionando información genómica completa y permitiendo el análisis filogenético, ofreciendo así información sobre las relaciones evolutivasbacterianas 28. Los estudios han demostrado que WGS permite caracterizar detalladamente la diversidad genética y la estructura poblacional de Nocardia24.
La viabilidad de implementar WGS en laboratorios clínicos está mejorando. Por ejemplo, WGS puede identificar variantes emergentes y proporcionar datos para el monitoreo de resistenciaantimicrobiana 29. Sin embargo, a pesar de su alta precisión y producción exhaustiva, la adopción generalizada sigue limitada por los altos costes y la complejidad del análisis de datos.
Aunque el WGS se está convirtiendo en un método de referencia, persisten barreras como el coste, la complejidad operativa y los requisitos de infraestructura. En la mayoría de los laboratorios clínicos, el WGS es poco práctico para diagnósticos rutinarios debido a los costes (100–300 dólares por aislado), los tiempos de respuesta (3–7 días), la necesidad de infraestructura avanzada en bioinformática y la experiencia especializada. Actualmente, su uso se limita en gran medida a laboratorios de referencia e investigaciones de brotes.
- Secuenciación metagenómica de próxima generación (mNGS)
La secuenciación metagenómica de nueva generación (mNGS) ha introducido nuevas posibilidades para detectar Nocardia30. Los métodos tradicionales de cultivo suelen enfrentarse a desafíos debido al lento crecimiento y a los requisitos ambientales específicos de Nocardia, lo que lleva a un diagnóstico tardío. En este contexto, el mNGS ha surgido como una alternativa valiosa.
Varios informes de casos y estudios a pequeña escala han demostrado el potencial de la mNGS para la detección de Nocardia 31. Por ejemplo, el mNGS se ha utilizado para diagnosticar la infección cutánea por Nocardia , identificando rápidamente el patógeno en pacientesinmunocompetentes 32. De manera similar, en infecciones de oído, nariz y garganta, la mNGS identificó N. farcinica, permitiendo un tratamientodirigido 33. En pacientes con enfermedad pulmonar obstructiva crónica, el análisis mNGS de muestras respiratorias identificó con éxito N. otitidiscaviarum, mejorando la puntualidad y precisióndiagnósticas 34. Además, la mNGS puede detectar infecciones mixtas, como se demostró en casos en los que se identificaron tanto N. farcinica como otros patógenos30.
Sin embargo, estos hallazgos se basan en gran medida en informes de casos o en pequeñas cohortes y requieren validación en estudios prospectivos de mayor envergadura. Por lo tanto, las conclusiones sobre el rendimiento diagnóstico de la mNGS para Nocardia deben interpretarse con cautela, y la tecnología sigue siendo una herramienta complementaria más que un método diagnóstico de primera línea.
A pesar de su potencial, el mNGS tiene varias limitaciones importantes. El alto coste (500–1.500 dólares por muestra) y la disponibilidad limitada restringen su uso a centros especializados o casoscomplejos 7˒31. La falta de protocolos estandarizados contribuye a la variabilidad en el rendimiento7˒30. La interpretación es complicada debido a la dificultad para distinguir la infección real de la colonización o contaminación, especialmente en muestrasrespiratorias 30˒31˒35. Además, el mNGS no proporciona datos de susceptibilidad a antimicrobianos, que son fundamentales para guiar la terapia1˒4. Finalmente, la importancia clínica de las secuencias de baja abundancia sigue siendo incierta, y faltan umbrales estandarizadosde notificación 7˒31.
En general, la mNGS representa una valiosa herramienta diagnóstica complementaria, especialmente en pacientes complejos o críticos cuando los métodos convencionales no son concluyentes. Sin embargo, no debe considerarse una solución diagnóstica universal, y los resultados deben interpretarse junto con hallazgos clínicos, radiológicos y microbiológicos.
- Exploración de métodos moleculares emergentes de diagnóstico
Con los avances en biología molecular, se están explorando enfoques diagnósticos emergentes para la detección de Nocardia . Las tecnologías de detección basadas en CRISPR permiten la identificación rápida de secuencias génicas específicas con altasensibilidad 36. Además, los enfoques de aprendizaje automático e inteligencia artificial (IA) han introducido nuevas posibilidades para el cribado rápido de Nocardia37.
Sin embargo, estos hallazgos provienen de estudios a pequeña escala de prueba de concepto y deben interpretarse con precaución. Actualmente, ninguno de estos enfoques ha sido validado clínicamente para la detección rutinaria de Nocardia . Los ensayos basados en CRISPR podrían evolucionar eventualmente hacia herramientas rápidas y de bajo coste en el punto de atención, pero esto requerirá una validación clínica extensa. De manera similar, el análisis de imágenes asistido por IA ha mostrado potencial preliminar para el cribado, pero carece de protocolos estandarizados y evaluación prospectiva. Ambos enfoques aún están en desarrollo temprano y aún no se recomiendan para uso clínico. Los estudios futuros deberían centrarse en la validación multicéntrica, la estandarización y la demostración de utilidad clínica antes de que estos métodos puedan ser adoptados en la práctica habitual.
Para facilitar la comparación, las características clave de rendimiento, las restricciones prácticas y los roles clínicos recomendados de estos métodos se resumen en la Tabla 1.
3. Pruebas de susceptibilidad antimicrobiana (AST) de Nocardia spp.
- Mecanismos de resistencia de Nocardia
Los mecanismos de resistencia de las especies de Nocardia incluyen principalmente mutaciones génicas, producción de enzimas y formación debiofilmes. Muchas especies de Nocardia, especialmente N. farcinica y N. cyriacigeorgica, han demostrado resistencia a múltiplesantibióticos 38. Por ejemplo, la resistencia a las sulfonamidas en Nocardia spp. se asocia con mutaciones en el gen de la dihidrofolato reductasa, lo que resulta en una menor susceptibilidad al trimetoprim–sulfametoxazol (TMP-SMX)39,40,41.
Además, las especies de Nocardia pueden producir β-lactamasas y otras enzimas que degradan los antibióticos, lo que conduce a la resistencia a penicilinas y cefalosporinas42. Estos mecanismos de resistencia complican el tratamiento de las infecciones por Nocardia , especialmente en poblaciones de alto riesgo, donde la aparición de cepas resistentes agrava aún más los desafíos terapéuticos. Los principales mecanismos de resistencia identificados en especies de Nocardia se resumen en la Tabla 2, incluyendo genes específicos de resistencia, tipos de mutaciones y datos cuantitativos de susceptibilidad.
- Pruebas tradicionales de susceptibilidad a antimicrobianos
Los métodos tradicionales de prueba de susceptibilidad a antimicrobianos incluyen principalmente técnicas de microdilución y difusión de agar. El método de microdilución se considera el más fiable para determinar la susceptibilidad antimicrobiana de Nocardia, proporcionando valores precisos de concentración mínima inhibitoria (CMI)43.
A pesar de ser el método de referencia, la microdilución del caldo para Nocardia está sujeta a una variabilidad significativa tanto dentro como dentro del laboratorio. Factores como la preparación del inóculo, la elección del medio de cultivo, el tiempo de incubación y las dificultades en la interpretación de los puntos finales debido al crecimiento residual o a la baja turbidez pueden afectar lareproducibilidad 35˒43. Estos desafíos técnicos son especialmente relevantes para organismos de crecimiento lento y heterogéneos como Nocardia , y subrayan la importancia de los protocolosestandarizados 1.
En un estudio, se analizaron 146 cepas de Nocardia mediante microdilución, mostrando alta susceptibilidad a linezolid, amikacina y TMP-SMX, con tasas del 100%, 96% y 94%, respectivamente4˒44. Sin embargo, estos datos provienen de una única región geográfica (Japón) y no deben generalizarse sin precaución. Los perfiles de resistencia a los antimicrobianos de Nocardia varían sustancialmente según la región geográfica, influenciados por los patrones locales de uso de antibióticos y la especiecirculante 1˒3. El método de difusión de agar también se utiliza ampliamente para pruebas de susceptibilidad en Nocardia. Sin embargo, su precisión está influida por factores como el medio de cultivo, la densidad de inóculos y la lenta tasa de crecimiento de Nocardia, lo que puede dar lugar a zonas de inhibición pocodefinidas 1˒43. A diferencia de la microdilución del caldo, la difusión del agar no ha sido estandarizada para Nocardia por el Instituto de Estándares Clínicos y Laboratorios (CLSI) y debe considerarse un método de cribado más que una técnica de referencia.
Aunque los métodos tradicionales siguen siendo efectivos en la práctica clínica, el aumento de la diversidad y resistencia entre las especies de Nocardia ha llevado a un mayor interés en integrar métodos de detección molecular para proporcionar una evaluación más completa. El método de microdilución sigue siendo el estándar de oro para las pruebas de susceptibilidad a antimicrobianos; sin embargo, depende de la tasa de crecimiento bacteriano, lo que puede ser problemático para especies de crecimiento lento como Nocardia. El método de difusión de disco es más cómodo pero menos sensible para estos organismos. Las técnicas moleculares, incluida la detección de genes de resistencia mediante PCR, ofrecen alternativas rápidas pero siguen siendo complementarias y no pueden sustituir las pruebas fenotípicas.
- Aplicación de métodos de detección molecular
Con los avances en biología molecular, los métodos de detección molecular se utilizan cada vez más para complementar los enfoques fenotípicos tradicionales de identificación, mientras que su papel en las pruebas de susceptibilidad antimicrobiana sigue siendo un área activa de investigación, centrada principalmente en la detección de genes específicosde resistencia 35.
Por ejemplo, la secuenciación del gen 16S rRNA y el MLSA pueden diferenciar especies de Nocardia y proporcionar información sobre los genes de resistenciaasociados 21. La secuenciación del genoma completo (WGS) permite un análisis genómico exhaustivo, ofreciendo una visión más profunda de la composición genética y los mecanismosde resistencia 24˒28. Algunos estudios han identificado varios genes β-lactamasa en N. farcinica11, que están estrechamente asociados con la resistencia alos antibióticos 38.
La secuenciación metagenómica de próxima generación (mNGS) también demuestra ventajas en la identificación de cepas resistentes. En algunos casos, la mNGS puede identificar especies de Nocardia y proporcionar información relacionada con la resistencia, apoyando la selección de antibióticos y reduciendo tratamientos inadecuados debido a un diagnósticoerróneo 30.
Sin embargo, la comprensión actual de las correlaciones genotipo-fenotipo en Nocardia sigue siendo incompleta, y muchos determinantes de la resistencia siguen poco caracterizados. Por lo tanto, los enfoques moleculares no pueden sustituir actualmente las pruebas fenotípicas de susceptibilidad. Sirven como herramientas complementarias para apoyar la interpretación de resultados basados en cultivos y pueden guiar la terapia dirigida cuando se detectan genes de resistencia bien caracterizados. Las decisiones clínicas deben seguir basándose principalmente en resultados fenotípicos de AST, especialmente dada la variabilidad geográfica en los patrones de resistencia y la falta de criterios interpretativos estandarizados para los métodos moleculares.
4. Desafíos clínicos en la identificación de Nocardia y en las pruebas de susceptibilidad antimicrobiana
Las especies de Nocardia son patógenos oportunistas que pueden causar infecciones graves, especialmente en pacientes inmunodeprimidos1˒46. Aunque estas infecciones son relativamente raras, su alta morbilidad y mortalidad presentan desafíos significativos para el diagnóstico y tratamiento clínico. El diagnóstico preciso de la nocardiosis comienza antes de las pruebas de laboratorio, siendo los factores preanalíticos un papel fundamental en el éxito tanto de los métodos basados en cultivo como moleculares. La calidad de la muestra influye directamente en las tasas de detección; Las muestras de respiración profunda como el lavado broncoalveolar (BAL), el esputo inducido o las muestras de biopsia arrojan tasas de recuperación más altas que el esputo expectorado. Las condiciones de transporte son igualmente importantes, ya que las especies de Nocardia son exigentes y pueden ser cubiertas por la flora comensales si los ejemplares se retrasan o se almacenan incorrectamente. Los tiempos de transporte prolongados (>2 h) sin un medio adecuado pueden comprometer la viabilidad y reducir el rendimiento decultivo en 45.
Los procedimientos de descontaminación utilizados para muestras respiratorias (por ejemplo, N-acetil-L-cisteína–NaOH) pueden reducir inadvertidamente la recuperación de Nocardia debido a su lento crecimiento y susceptibilidad a agentes químicos. Por ello, los laboratorios deberían considerar medios selectivos (por ejemplo, extracto de levadura de carbón tamponado) y periodos de incubación extendidos (hasta 2–4 semanas) para mejorar la recuperación46. Un gran desafío clínico es distinguir la colonización de la infección real. La nocardia puede aislarse de muestras respiratorias en pacientes con enfermedad pulmonar crónica (por ejemplo, bronquiectasia, enfermedad pulmonar obstructiva crónica) sin evidencia de enfermedad invasiva. En tales casos, la detección puede representar colonización más que infección. Esta distinción es fundamental, ya que un tratamiento innecesario puede aumentar la toxicidad y la resistencia, mientras que no tratar la infección verdadera puede resultar en una enfermedad diseminada con alta mortalidad. El juicio clínico, respaldado por hallazgos radiográficos, histopatología y síntomas sistémicos, esesencial 2.
Los factores del huésped influyen significativamente tanto en la susceptibilidad como en los resultados. El tipo y grado de inmunosupresión son determinantes clave. Entre los receptores de trasplantes de órganos sólidos, la incidencia varía según el tipo de órgano: los receptores de trasplantes de pulmón tienen el mayor riesgo (hasta un 9%), seguidos por los de corazón y hígado, mientras que los receptores de trasplante de riñón tienen una incidencia menor pero aún significativa (0,4%–1,3%)16˒17. Estas diferencias reflejan variaciones en los regímenes inmunosupresores y en la exposición ambiental. El uso de agentes que agotan las células T y corticosteroides en dosis altas aumenta aún más el riesgo, especialmente durante el primer año tras eltrasplante 1.
Las tecnologías basadas en espectrometría de masas, como la MALDI-TOF MS, han demostrado alta precisión en la identificación de Nocardia , aunque siguen existiendolimitaciones de 26˒27. La precisión de la identificación a nivel de especie depende en gran medida de la exhaustividad y actualidad de la base de datos de referencia, y el rendimiento varía según la versión de la base de datos. Estos factores, más que los fallos de identificación específicos de cada especie, representan los principales retos para los laboratorios clínicosrutinarios 23.
En cuanto a las pruebas de susceptibilidad antimicrobiana, existe una variabilidad significativa entre las especies de Nocardia . Aunque muchas cepas siguen siendo susceptibles a linezolida y amikacina, la resistencia a otros antibióticos varía según la especie y puede influir en los resultados deltratamiento 3. Por lo tanto, las pruebas de susceptibilidad siguen siendo cruciales para guiar la terapia, como se explica en la Sección 3.