Diagnóstico multimodal y manejo de la tuberculosis gástrica: un informe de caso

Resumen

Este informe de caso presenta un flujo de trabajo multimodal por etapas para diagnosticar tuberculosis gástrica, integrar gastroscopia, imagen transversal, ecografía endoscópica, histopatología y pruebas moleculares para confirmar la infección cuando las biopsias superficiales no son diagnósticas.

Resumen

La tuberculosis gástrica es una forma excepcionalmente rara de tuberculosis extrapulmonar y a menudo se presenta con síntomas inespecíficos y apariencia endoscópica, imitando frecuentemente tumores submucosos, enfermedad úlcera péptica o malignidad. Estas superposiciones, junto con el rendimiento limitado de biopsias superficiales, pueden retrasar el diagnóstico definitivo. Aquí, los investigadores informan de un caso de tuberculosis gástrica y enfatizan la ventaja metodológica de una estrategia diagnóstica multimodal que integra endoscopía, imagen transversal, histopatología y pruebas moleculares para reducir progresivamente la incertidumbre diagnóstica. La gastroscopia reveló una lesión gástrica localizada, mientras que la imagen proporcionó una caracterización complementaria de la lesión y sugirió posible afectación extragástrica, lo que llevó a una evaluación adicional para infección granulomatosa. El muestreo endoscópico repetido no estableció un diagnóstico, por lo que se realizó una gastrectomía parcial laparoscópica para obtener tejido profundo adecuado para una evaluación integral. El examen histopatológico demostró inflamación granulomatosa con necrosis caseosa, y las pruebas moleculares confirmaron la infección con complejo Mycobacterium tuberculosis , confirmando tuberculosis gástrica. El curso postoperatorio transcurrió sin incidentes y el paciente recibió posteriormente la terapia antituberculosa estándar. Los síntomas se resolvieron y no se observó recurrencia durante el seguimiento a largo plazo. Este caso pone de relieve desafíos diagnósticos prácticos y ofrece un enfoque reproducible y escalonado que puede ayudar a los clínicos a sospechar, diferenciar y confirmar la tuberculosis gástrica más temprano en presentaciones similares.

Introducción

La tuberculosis gástrica es una manifestación excepcionalmente rara de la infección por Mycobacterium tuberculosis en el cuerpo^humano. Su incidencia es extremadamente baja y, incluso en regiones con alta carga de tuberculosis, la afectación gástrica suele indicar que representa menos del 1% de los casos de tuberculosis^{gastrointestinal 2}. Esta baja incidencia se ha atribuido a varios factores protectores locales, incluyendo el efecto bactericida del ácido gástrico, la integridad de la barrera mucosa gástrica y el rápido vaciamiento gástrico, que en conjunto reducen el contacto bacilar sostenido con la pared^{gástrica 3}.

Las manifestaciones clínicas de la tuberculosis gástrica son heterogéneas y carecen de características patognomónicas, con síntomas y signos que varían según la ubicación de la lesión, la profundidad de afectación y la progresión de la^{enfermedad 4}. Los pacientes pueden presentar dolor o molestias en la parte superior del abdomen, náuseas, vómitos, anorexia y pérdida^{de peso 5}. Cuando la afectación gástrica coexiste con la tuberculosis extragástrica, también pueden aparecer síntomas constitucionales como fiebre baja, sudores nocturnos y^fatiga. Sin embargo, estas manifestaciones son inespecíficas y la sospecha clínica suele retrasarse porque la enfermedad puede asemejarse a afecciones gástricas comunes, incluyendo la enfermedad de úlceras pépticas, carcinoma gástrico, linfoma y tumores^submucosos.

Una barrera diagnóstica importante descrita en la literatura más amplia es que la biopsia endoscópica rutinaria con fórceps es frecuentemente no diagnóstica, especialmente cuando las lesiones son predominantemente submucosas o cuando los cambios granulomatosos son irregulares, lo que conduce a un error de^{muestreo 8}. Para superar esto, la estrategia diagnóstica multimodal presentada aquí ofrece ventajas significativas frente a las evaluaciones endoscópicas convencionales de modalidad única. Al integrar la imagen transversal, la adquisición de tejido profundo y las pruebas moleculares (PCR), este enfoque integral aumenta significativamente la confianza en el diagnóstico y minimiza los retrasos cuando las tinciones ácido-resistentes convencionales son^{negativas a 9}.

El objetivo general de este protocolo es formalizar un flujo de trabajo diagnóstico reproducible y escalonado para la sospecha de tuberculosis gástrica. La razón de presentar este caso concreto es demostrar cómo los clínicos pueden navegar sistemáticamente la incertidumbre diagnóstica cuando las biopsias superficiales iniciales fallan y la lesión imita fuertemente un tumor submucoso.

Este caso representativo es muy adecuado para clínicos y endoscopistas que buscan orientación práctica para el manejo de lesiones gástricas atípicas y refractarias que coexisten con hallazgos sistémicos inexplicables como la linfadenopatía¹⁰. Siguiendo este protocolo multimodal, los profesionales pueden mejorar el reconocimiento temprano, evitar resecciones radicales innecesarias e iniciar terapias antituberculosis dirigidas de forma más eficiente en entornos^{clínicos 11}.

Presentación del caso:
Una mujer de 70 años se presentó con un historial de un mes de dolor abdominal sin síntomas constitucionales típicos de tuberculosis. El examen físico y las pruebas de laboratorio basales no resultaron relevantes, pero la gastroscopia reveló una lesión subepitelial indeterminada en el fondo gástrico.

Diagnóstico, evaluación y planificación:
Dado el rendimiento no diagnóstico de biopsias endoscópicas superficiales, se realizaron imágenes transversales y ecografía endoscópica, que revelaron linfadenopatía sistémica concurrente y una masa originada en la muscle propria propia. Para llegar a un diagnóstico definitivo, se realizó una gastrectomía parcial laparoscópica para la adquisición de tejido de grosor completo. La histopatología demostró inflamación granulomatosa con necrosis caseosa, y la posterior reacción en cadena de la polimerasa tisular (PCR) confirmó la presencia del complejo Mycobacterium tuberculosis. El paciente fue gestionado con éxito con terapia antituberculosa estándar de primera línea, lo que resultó en una resolución completa de los síntomas sin complicaciones.

Protocolo

Este protocolo se llevó a cabo en cumplimiento de las directrices del Comité de Ética en Investigación Humana Institucional del Hospital Popular de Dongguan, bajo el número de aprobación LW 2026-001. Se obtuvo el consentimiento informado por escrito del paciente antes de todos los procedimientos diagnósticos, terapéuticos y de seguimiento.

1. Elegibilidad del paciente y evaluación inicial

1. Historia médica
   1. Se registró la queja principal y el inicio documentado de los síntomas, duración, localización, carácter, factores agravantes (por ejemplo, posprandiales o nocturnos) y factores de alivio.
   2. Se registraron síntomas asociados (por ejemplo, eructos, náuseas, vómitos, reflujo, hinchazón, diarrea, escalofríos, fiebre, hematoquecia/melena) y evaluaron las características de alarma (por ejemplo, pérdida de peso no intencionada, fiebre persistente).
   3. Historial médico documentado y medicación actual (por ejemplo, hipertensión y diabetes mellitus tipo 2; terapia antihipertensiva y para reducir la glucosa).
   4. Se examinaron factores de riesgo relacionados con la tuberculosis (historial de exposición, tuberculosis previa, inmunosupresión) y antecedentes relacionados con malignidades.
2. Examen físico
   1. Evaluaron el estado general y los signos vitales (presión arterial, frecuencia cardíaca, temperatura, frecuencia respiratoria) para confirmar la estabilidad clínica.
   2. Examinaron la piel y la esclerótica para detectar ictericia.
   3. Palpar manualmente las regiones superficiales de los ganglios linfáticos (cervical, supraclavicular, axilar) utilizando las yemas del índice y del medio para evaluar si se agrandaban, sensibilidad o fijación.
   4. Examinó el abdomen sistemáticamente mediante inspección visual, auscultación de sonidos intestinales y palpación manual tanto ligera como profunda para evaluar distensión, sensibilidad (incluyendo rebote/protección), masas palpables y signo de Murphy.
   5. Examinaron articulaciones y extremidades inferiores en busca de anomalías (por ejemplo, edema, eritema, deformidad).
3. Investigaciones iniciales en laboratorio
   1. Se obtuvo el hemograma completo (CBC) utilizando el equipo estándar de laboratorio (véase la Tabla de Materiales).
   2. Obtuvieron pruebas de función hepática y renal [alanina aminotransferasa (ALT), aspartato aminotransferasa (AST), bilirrubina, creatinina, urea].
   3. Obtuvo electrolitos séricos [sodio (Na⁺), potasio (K⁺), cloruro (Cl⁻)].
   4. Se obtuvieron pruebas de coagulación [tiempo de protrombina (PT), tiempo de tromboplastina parcial activada (APTT)] y troponina cardíaca cuando clínicamente indicaron.
   5. Se obtuvieron marcadores tumorales séricos [por ejemplo, antígeno carcinoembrionario (CEA), antígeno de carbohidratos 19–9 (CA19–9), alfa-fetoproteína) (AFP)] para apoyar el diagnóstico diferencial.
   6. Realizé análisis de sangre oculta fecal.
   7. Evaluó Helicobacter pylori mediante un método institucional (serología, prueba de aliento a urea o antígeno de heces).
      NOTA: Se registró el método utilizado y su umbral de interpretación.

2. Flujo de trabajo diagnóstico para lesiones gastrointestinales y sistémicas

1. Gastroscopia y muestreo inicial
   1. Se realizó una gastroscopia diagnóstica para evaluar el esófago, el estómago (incluido el fondo de ojo en la vista retrofleja) y el duodeno.
   2. Localización, tamaño, apariencia macroscópica documentada y capa sospechosa de origen, y imágenes representativas archivadas.
   3. Clasificó la úlcera duodenal usando un sistema estándar de estadificación endoscópica (por ejemplo, estadio activo con exudato) e imágenes archivadas.
   4. Se obtuvieron biopsias con pinzas de la superficie de la lesión y mucosa adyacente (≥6 fragmentos cuando fue técnicamente factible) usando pinzas endoscópicas (véase Tabla de Materiales) y colocaron muestras en formalina tampón neutra al 10% (véase Tabla de Materiales).
   5. Las muestras etiquetadas con identificadores de pacientes y lugares de muestreo se entregaron a patología en menos de 1 hora desde la recogida.
   6. Inició la terapia de supresión ácida para la úlcera activa y reevaluó la respuesta a los síntomas durante el seguimiento.
2. Imagen de sección transversal
   1. Se realizó tomografía computarizada torácica (TC) sin contraste utilizando un protocolo estándar para adultos (por ejemplo, 120 kVp; modulación automática de corriente en tubos; tono 0,9–1,2).
   2. Imágenes reconstruidas con un grosor de corte de 1,0 mm con formateos multiplanares y revisadas usando ventanas pulmonares y mediastinales.
   3. Nódulos pulmonares documentados (ubicación, diámetro máximo, densidad) y linfadenopatía mediastínica/hilar (estaciones, diámetro de eje corto).
   4. En comparación con imágenes previas cuando estaban disponibles para evaluar los cambios en los intervalos.
3. TAC abdominal superior con contraste
   1. Se realizó una tomografía computarizada abdominal superior con contraste salvo que fuera contraindicado.
   2. Se administró contraste yodado (véase Tabla de Materiales) a 1,5 mL/kg (máximo 120 mL) mediante un inyector de potencia a 3,0 mL/s, seguido de un lavado con solución salina de 30–40 mL (véase Tabla de Materiales).
   3. Fase arterial adquirida a los 25–30 s y fase venosa portal a los 60–70 s tras la inyección, y reconstruida con un grosor de corte de 1,0–1,25 mm.
   4. Engrosamiento/realce documentado de la pared gastrointestinal (bulbo duodenal, cardia, antro gástrico) y linfadenopatía abdominal mapeada (pericárdica, hepatogástrica, retroperitoneal) por localización y tamaño.
4. Ecografía endoscópica (EUS) y muestreo
   1. Se realizó EUS utilizando un ecoendoscopio de matriz lineal (rango de frecuencia típico 5–12 MHz; véase Tabla de Materiales).
   2. Se localizó la lesión y determinó la capa de origen (por ejemplo, muscularis propia) y se registró el tamaño de la lesión (por ejemplo, 12,4 mm × 5,3 mm), la ecogenicidad, la homogeneidad y las características acústicas posteriores mediante el archivo de imágenes.
   3. Se realizó aspiración/biopsia guiada por EUS con aguja fina para mejorar el rendimiento tisular de lesiones submucosas.
   4. Utilizó una aguja calibre 22 (véase Tabla de Materiales) y realizó 3 pasadas (2 pasadas con succión usando una jeringuilla de 10 mL; 1 pasada sin succión), con 10–15 movimientos de ida y vuelta por pasada bajo visualización continua por ultrasonidos.
   5. Preparaban manchas directas de cada pasada; Fijé inmediatamente un portaobjetos en etanol al 95% para citología y secé al aire otro para tinción rápida si estaba disponible.
   6. Colocó material residual en formalina amortiguada al 10% neutro para crear un bloque celular para histologia y colocó una porción separada en un tubo estéril para pruebas moleculares.
   7. Se monitorizó para detectar complicaciones inmediatas (dolor, sangrado, perforación) durante al menos 2 horas tras el procedimiento y documentó signos vitales y estado de síntomas.
      NOTA: Si el caso presentado no incluyó aspiración con aguja fina (FNA)/biopsia con aguja fina (FNB), sustituir los pasos 2.4.3–2.4.7 por el método exacto de muestreo utilizado y indicar explícitamente la limitación.

3. Intervención quirúrgica y pruebas de laboratorio confirmatorias

1. Gastrectomía parcial laparoscópica
   1. Confirmó la ausencia de contraindicaciones quirúrgicas (por ejemplo, coagulopatía no controlada, enfermedad cardiopulmonar inestable) y revisó los resultados de laboratorio preoperatorios.
   2. Indujo anestesia general y se estableció neumoperitoneo en 12–14 mmHg.
   3. Insertaba puertos laparoscópicos estándar (por ejemplo, puerto de cámara umbilical de 10 mm más 2–3 puertos de trabajo; véase Tabla de Materiales) y realizaba una exploración sistemática.
   4. Localizó la lesión basándose en información endoscópica/imagenística preoperatoria (por ejemplo, fundus cerca del cardia/mayor curvatura).
   5. Se realizó una gastrectomía en cuña/parcial para eliminar la lesión con un margen bruto de ≥1 cm cuando anatómicamente era factible y logró hemostasia y cierre asegurado según la práctica institucional.
   6. Se entregó la muestra a patología inmediatamente, se registró el tiempo hasta la fijación y se orientó la muestra (proximal/distal o anterior/posterior) para su evaluación macroscópica.
2. Histopatología
   1. Tejido fijo en formalina tampón neutra al 10% durante 24–48 horas a temperatura ambiente.
   2. Se tomaron muestras de áreas representativas (centro de la lesión, interfaz con tejido adyacente y áreas fuertemente necróticas cuando están presentes), procesadas para incrustación de parafina y secciones cortadas con un grosor de 3–4 μm.
   3. Se realizó tinción por hematoxilina y eosina (H&E) y evaluó la inflamación granulomatosa y necrosis (incluida la necrosis caseosa).
   4. Se realizaron tinciones especiales: tinción ácido-schiff periódica (PAS) y tinción periódica ácido-plata (PASM) para elementos fúngicos, y tinción Ziehl–Neelsen o auramina-rodamina para bacilos ácido-resistentes.
      NOTA: Una tinción de bacilo ácido-rápido (AFB) negativa no excluyó la tuberculosis; La interpretación se integró con pruebas moleculares y hallazgos clínicos/de imagen.
3. Pruebas moleculares [reacción en cadena de la polimerasa tisular (PCR)]
   1. Seleccionaron tejidos para pruebas moleculares utilizando instrumentos limpios para evitar contaminación cruzada y emplearon áreas de trabajo separadas para los pasos pre y posterior a la amplificación.
   2. Extrajo ADN de tejido fresco (preferido) o tejido fijado en formalina, incrustado en parafina (FFPE) utilizando un kit de extracción validado. Para tejido FFPE, secciones desparafinizadas con xileno (2 × 10 min) seguidas de lavados graduados con etanol (100%, 95%, 70%) (véase la Tabla de materiales para reactivos), y secado al aire antes de la lisis.
   3. Se realizó una PCR en tiempo real dirigida al complejo de M. tuberculosis (por ejemplo, IS6110 u otro objetivo validado).
   4. Se utilizaron las siguientes condiciones de ciclo como perfil estándar de PCR en tiempo real: desnaturalización inicial a 95 °C durante 5 minutos; 40 ciclos de 95 °C durante 15 s y 60 °C durante 60 s.
   5. Se interpretaron los resultados usando umbrales de laboratorio [por ejemplo, umbral de ciclo (Ct) ≤ 38 como positivo, Ct 38–40 como indeterminado que requiere repetir pruebas y sin amplificación como negativo] y resultados indeterminados confirmados mediante extracción repetida y PCR repetida.
      NOTA: Sustituye los genes objetivo y los umbrales de Ct por los utilizados por el laboratorio si es diferente.
4. Ensayo de liberación de interferón-gamma (IGRA)
   1. Se realizó IGRA en sangre total para apoyar la evaluación de la infección por tuberculosis.
   2. Recogieron 1 mL de sangre en cada tubo de ensayo [control nulo, tubos de antígenos para el bacilo de tuberculosis, control de mitógenos] y mezclaron invirtiendo 10 veces inmediatamente después de la recogida.
   3. Incubó tubos a 37 °C durante 16–24 horas, centrifugó a 2.000–3.000 × g durante 15 minutos y extrajo plasma para la medición de interferón-gamma mediante ensayo inmunoenzimático ligado a enzimas (ELISA).
   4. Interpretó IGRA como positivo cuando (antígeno TB − cero) ≥0,35 UI/mL y ≥25% de cero, con una respuesta mitógena adecuada según criterios de ensayo.
      NOTA: Si no se realizó IGRA en este caso, explícalo explícitamente y exponga la razón.
5. Integración diagnóstica
   1. Se estableció el diagnóstico integrando (i) inflamación granulomatosa con necrosis caseosa en histopatología, (ii) evidencia molecular del complejo M. tuberculosis en PCR, y (iii) hallazgos clínicos/de imagen de apoyo.
   2. Se registraron diagnósticos alternativos (por ejemplo, malignidad, linfoma, infección fúngica) y los hallazgos negativos que apoyan la exclusión.

4. Manejo terapéutico y seguimiento de la terapia antituberculosa

1. Consulté especialistas en enfermedades infecciosas para confirmar el régimen tras la confirmación diagnóstica.
2. Se administró terapia antituberculosa estándar de primera línea (rifampicina, isoniazida, pirazinamida, etambutol) según las directrices institucionales/nacionales.
3. Ajustaron las dosis en función del peso corporal y la función hepática/renal y documentaron valores basales y de seguimiento en el laboratorio.
4. Se monitorizó para detectar eventos adversos (intolerancia gastrointestinal, hepatotoxicidad, erupción cutánea, síntomas visuales) y los gestionó según la práctica institucional.
5. Seguimiento programado a las 2 semanas tras el alta y luego cada 4 semanas durante el tratamiento temprano, con intervalos posteriores individualizados según la respuesta clínica.
6. Realizé hemogramas completos y pruebas de función hepática en cada visita.
7. Evaluó la resolución de síntomas y se evaluó la recurrencia basándose en evaluación clínica y repeticiones de imagen/endoscopía cuando clínicamente se indicaba.

Resultados

Resultados de la evaluación inicial
Una mujer de 70 años se presentó con dolor abdominal durante un mes. No informó de exposición conocida a la tuberculosis y negó síntomas constitucionales o alarmantes, incluyendo náuseas, vómitos, fiebre y pérdida de peso significativa. Su historial médico incluía hipertensión bien controlada y diabetes mellitus tipo 2, controlada con medicamentos orales crónicos. En el examen físico, estaba alerta y hemodinámicamente estable. No se observaron ictericia ni linfadeno...

Discusión

La tuberculosis gástrica es una manifestación poco común de tuberculosis gastrointestinal y puede surgir por diseminación hematógena o linfática, extensión directa de lesiones adyacentes o implantación en un contexto de defensa mucosa defectuosa. Dado que los síntomas son inespecíficos y las apariencias endoscópicas suelen solaparse con la enfermedad úlcera péptica, la malignidad, el linfoma y los tumores subepiteliales, el diagnóstico suele retrasarse y puede requerir un enfoque escalon...

Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo

Nombre	Empresa	Número de catálogo	Comentarios
Kit de tinte ácido resistente (Ziehl– Neelsen)	BD Difco	215073	Para la tinción AFB; alternativa aceptable para la tinción de auramina
Centrifugadora (2.000 y guion; 3.000 y más veces; g)	Eppendorf	5810 R	Separación por plasma para IGRA
Cubiertas	Citotest	10212424C	Para la preparación de la microscopía
Escáner CT (multi-detector)	Siemens Healthineers	Definición de SOMATOM AS+	Cualquier ≥ CT de 64 cortes aceptable; registrar kVp, grosor de corte, fases
Pinzas desechables para biopsias	Boston Scientific	1395 (Mandíbula radial 4)	Para biopsias mucosas/superficiales; cualquier pinza estéril de un solo uso es aceptable
Kit de extracción de ADN (FFPE)	QIAGEN	56404 (Kit de tejido FFPE con ADN QIAamp)	Si usas secciones FFPE para PCR
Kit de extracción de ADN (tejido)	QIAGEN	69504 (DNeasy Kit de Sangre y Tejido) Kit de Tejido)	Para la extracción de ADN de tejido fresco
Lector de placas ELISA	BioTek (Agilent)	Sinergia H1	Para la lectura IGRA ELISA (si se usa un kit que requiere lector)
Procesador de ultrasonidos EUS	Olimpo	EU-ME2	Cualquier procesador EUS equivalente aceptable
Aguja EUS-FNA/FNB, 22G	Cook Medical	EchoTip Ultra (22G)	Si tu caso usó FNA/FNB; registra el calibre y el número de pasadas
Gastroscopio	Olimpo	GIF-HQ190	Gastroscopio diagnóstico estándar; modelos equivalentes aceptables
Grocott' Kit de plata metenamina (GMS/PASM)	Abcam	ab150680	Para cribado fúngico (PASM/GMS)
H& Kit de tinción de E o reactivos	Sigma-Aldrich (Merck)	HT110116	Tinción de hematoxilina y eosina
Kit de prueba IGRA	Qiagen	QuantiFERON-TB Gold Plus	IGRA de sangre entera; criterios de interpretación de registros
Software de análisis / etiquetado de imágenes	NIH	ImageJ/Fiji	Para añadir barras de escala/anotaciones a imágenes histológicas
Insufflador	Karl Storz	ENDOMAT	Mantener el neumoperitoneo; registrar la presión utilizada
Laparoscopio	Karl Storz	26003BA	laparoscopio de 10 mm; equivalente aceptable
Bolsa de recuperación de muestras laparoscópica	Medicina Aplicada	Endo Catch II	Para la extracción segura del ejemplar
Grapadora laparoscópica (cuña/gastrectomía parcial)	Medtronic	GIA de endometriosis	Utiliza grapadora institucional; graba el tipo de cartucho si es relevante
Torre laparoscópica (cámara + fuente de luz)	Karl Storz	IMAGE1 S	Cualquier sistema de imagen laparoscópica equivalente es aceptado
Ecoendoscopio EUS lineal	Olimpo	GF-UCT180	EUS lineal recomendado para muestreo; equivalente aceptable
Portaobjetos de microscopio	Citotest	188105	Para los frotis de citología
Microtomo	Leica Biosystems	RM2235	Para 3– 4 μ M seccionado
Medio de montaje	Sigma-Aldrich (Merck)	6522	Deslizamiento por cobertura
Kit PCR complejo MTB (validado)	Sansure Biotech	Kit de diagnóstico de ADN para MTB	Utiliza tu institución' s validado MTB complejo PCR; registra el objetivo y el umbral de CT
Contraste iodado no iónico (para TAC)	GE Healthcare	Omnipaque 350	Utilizar el contraste estándar institucional; registrar la concentración y la dosis
Sistema de incrustación de parafina	Leica Biosystems	HistoCore Arcadia	Cualquier sistema de incrustación equivalente aceptable
Kit de tinción PAS	Sigma-Aldrich (Merck)	395B	Para cribado fúngico
Suministros de flujo de trabajo limpios por PCR (puntas de filtro)	Thermo Fisher Scientific	2069G	Utiliza puntas resistentes a aerosoles para reducir la contaminación
Inyector de potencia para contraste	Bayer	MEDRAD Stellant	Cualquier inyector aceptable; tasa de inyección y lavado de solución salina récord
Instrumento de PCR en tiempo real	Roche	LightCycler 480 II	Cualquier sistema de PCR en tiempo real validado es aceptable
Recipiente para muestras (a prueba de fugas)	Thermo Fisher Scientific	02-544-208	Para el transporte de tejidos fijados con formalina
Software estadístico/cifrado	GraphPad Software	Prisma	Si se usa para trazar; opcional
Jeringuilla (10 mL)	BD	309604	Para la succión durante el PAF cuando se usa
Sistema de videogastroscopia (endoscopia diagnóstica de gastroenterología superior)	Olimpo	CV-190 (procesador), CLV-190 (fuente de luz)	Cualquier plataforma de endoscopia equivalente es aceptable; modelo de registro utilizado
Formalina amortiguada al 10% de neutro	Sigma-Aldrich (Merck)	HT501128	Fijación de muestras de biopsia y resección
37 y deg; Incubadora C	Thermo Fisher Scientific	Heratherm	Para incubación IGRA
95% etanol	Sigma-Aldrich (Merck)	459844	Fijación inmediata de las láminas de citología