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Todos los procedimientos fueron aprobados por el Comité de Ética Animal de Guangzhou Miles Biotechnology Co., Ltd., con el número de aprobación IACUC-MIS2023045.
Establecimiento del Modelo de Ratas SUI
Se utilizaron un total de 20 ratas Sprague-Dawley (SD), de entre 6 y 8 semanas, para crear un modelo de lesión del suelo pélvico, simulando el parto. Para inducir la dilatación vaginal con balón (DVV), las ratas fueron anestesiadas mediante inyección intraperitoneal de ketamina (75 mg/kg) y xilazina (10 mg/kg). Se introdujo cuidadosamente un catéter de 10 Fr Foley desinflado en el canal medio vaginal, y luego se infló el balón con 3 mL de solución salina estéril. El balón se mantuvo en su lugar durante 4 horas para replicar el prolongado estiramiento mecánico de los músculos del suelo pélvico y la compresión del nervio pudendo asociado al parto. El periodo de modelado fue de 7 días. En el octavo día, se seleccionaron aleatoriamente 6 animales para pruebas urodinámicas.
El establecimiento exitoso del modelo se verificó mediante pruebas urodinámicas y la medición de los niveles séricos de lactato deshidrogenasa (LDH), que sirven como indicadores de lesión muscular. Tras confirmar el éxito de la modelización, las ratas SUI se dividieron aleatoriamente en un grupo simulado y un grupo de tratamiento, con cinco ratas en cada grupo. Al mismo tiempo, se proporcionaron cinco ratas SD normales como grupo de control. En el grupo simulado, se insertaron agujas de acupuntura en los puntos de acupuntura BL23 (situados 6 mm laterales al proceso espinoso L2) y GB30 (situados detrás de la articulación de la cadera) sin ninguna estimulación eléctrica. En el grupo de electroacupuntura, los mismos puntos de acupuntura se estimularon utilizando un dispositivo de electroacupuntura, siguiendo el método estándar de tratamiento clínico. El dispositivo de electroacupuntura se ajustó a una forma de onda densa y dispersa de 1 Hz a 2 V. Cada intervención duraba 30 minutos al día durante 10 días consecutivos. Todos los animales eran monitorizados diariamente y alojados bajo condiciones estándar de laboratorio. Al final del experimento, se realizaron pruebas urodinámicas en los animales de cada grupo. Posteriormente, cada grupo de ratas fue anestesiado con una mezcla de isoflurano al 3% y 1,0 L/min de oxígeno. Después de que las ratas perdieron el conocimiento, la concentración de isoflurano se ajustó al 5%, y se recogieron muestras tras la muerte de las ratas por insuficiencia respiratoria.
Pruebas urodinámicas
Tras la anestesia inducida por isoflurano, los animales se colocaron en posición supina y se aseguraron. Una incisión en la línea media del abdomen inferior dejó la vejigaal descubierto 18. Se implantó un catéter epidural a través de una fístula de 2 mm de diámetro en la cúpula de la vejiga, se avanzó 0,5–1,0 cm dentro del lumen y se aseguró con una sutura 11-0 mediante la técnica de cordón de bolso. El catéter se conectó a un sistema de monitorización de presión y se perfundió con solución fisiológica teñida de azul metileno a 37 °C a 10 mL/h mediante una bomba de microjeringa, con monitorización concurrente de presión intravesical. La capacidad máxima de la vejiga se calculó como el producto de la duración de la infusión (el intervalo entre la iniciación de la infusión y la primera gota de líquido uretral) y el caudal. La presión en el punto de fuga (LPP) se determinó registrando la presión intravesical máxima inmediatamente después de la liberación abrupta de la compresión abdominal aplicada manualmente. Todos los parámetros se adquirieron mediante un sistema de análisis urodinámico, con mediciones triplicadas por métrica. Todas las muestras fueron codificadas y analizadas aleatoriamente de forma ciega por tres operadores independientes, cada uno realizando una única medición. Los resultados de las tres mediciones independientes se utilizaron para el análisis estadístico.
Mide el nivel sérico de lactato deshidrogenasa (LDH)
En el día 7 postoperatorio, se obtuvo aproximadamente 1 mL de sangre total de la vena caudal de cada rata. Las muestras recogidas se dejaron a temperatura ambiente durante 1 hora para permitir la formación de coágulos, tras lo cual se centrifugaron a 2.000 × g durante 15 minutos. Se recogieron cuidadosamente aproximadamente 0,5 mL de sobrenadante como suero. Los niveles séricos de lactato deshidrogenasa (LDH) se determinaron cuantitativamente mediante un kit de ensayo de D-lactato deshidrogenasa según los protocolos del fabricante.
Perfilado proteómico y análisis bioinformático
Se realizó un análisis proteómico cuantitativo en tejidos musculares lisos uretrales aislados de grupos modelo y de tratamiento. Las proteínas se identificaron a partir de datos brutos de espectrometría de masas utilizando Proteome Discoverer 2.4 con un umbral de tasa de falsos descubrimientos del 1%. El análisis bioinformático de proteínas diferencialmente expresadas (DEPs) se realizó utilizando paquetes basados en R: el análisis de expresión diferencial se realizó usando el paquete limma (|log2FC| > 1, ajustado p < 0,05), el análisis de enriquecimiento de la ontología génica (GO) y el análisis de vías de la Enciclopedia de Genes y Genomas de Kyoto (KEGG) se realizaron utilizando el paquete clusterProferer, con términos/vías enriquecidos considerados significativos a p < ajustado 0,05 y valor q < 0,2; El agrupamiento jerárquico se visualizó usando el paquete pheatmap. Se construyó una red de interacción proteína-proteína (IBP) utilizando la base de datos STRING (v11.5, puntuación de confianza > 0.7).
Tinción por hematoxilina y eosina
Los tejidos musculares lisos de la rata estaban fijados con un 4% de paraformaldehído e incrustados en parafina. Las secciones en serie (5 μm de espesor) se preparaban usando un microtomo y se teñían con un kit estandarizado de tinción H&E. La evaluación morfológica se realizó mediante microscopía de campo claro con una magnificación de 40× a 400×, centrándose en la integridad estructural del tejido muscular, la infiltración de células inflamatorias y la remodelación de la matriz.
Tinción tricroma de Masson
Según el protocolo experimental aprobado por el comité de ética, recogimos muestras de los animales en el décimo día de tratamiento. Los tejidos musculares de la rata estaban fijados con un 4% de paraformaldehído y parafina incrustada. Las secciones en serie (5 μm de grosor) se cortaban usando un microtomo rotatorio. Las secciones desparafinizadas se teñieron con el tricromo de Masson. Las secciones teñidas se fotografiaban bajo un microscopio de campo claro a una magnificación del 100×.
Western blot
Las proteínas totales se extrajeron del tejido muscular liso de rata mediante una alteración mecánica en el tampón de lisis RIPA mantenido a baja temperatura y suplementado con inhibidores de proteasas. Los lisados se clarificaron mediante centrifugación a 10.000 × g durante 15 minutos a 4 °C, y se recogió el sobrenadante que contenía proteínas para su análisis. La concentración de proteínas se determinó mediante un ensayo de ácido bicinconínico (BCA) utilizando albúmina sérica bovina como estándar de calibración. Se cargaron cantidades iguales de proteína (30 μg) sobre geles SDS–poliacrilamida al 10% o 12% y se separaron bajo condiciones reductoras. Tras la electroforesis, las proteínas se transfirieron a membranas de PVDF con un tamaño de poro de 0,22 μm. Las membranas se incubaron en 3% de BSA durante 1 hora a temperatura ambiente para bloquear los sitios de unión inespecíficos, seguidas de una incubación nocturna a 4 °C con anticuerpos primarios reconociendo GAPDH, MYL1, TNNI2, TNNT1, TNNT3 y MYLPF. Tras lavarse con TBST tres veces, se aplicaron anticuerpos secundarios marcados con HRP durante 2 horas a temperatura ambiente. La detección de señales se realizó utilizando un sustrato quimioluminiscente y las imágenes se capturaron con un sistema de imagen por luminiscencia. La cuantificación de la expresión proteica se realizó mediante análisis densitométrico, con GAPDH como referencia interna.
PCR cuantitativa en tiempo real (qPCR)
Las muestras de tejido se lisaron utilizando un reactivo de extracción total de ARN y el ARN se aisló siguiendo las instrucciones del fabricante proporcionadas con el kit de extracción de ARN. Los cebadores específicos de genes se diseñaron utilizando software dedicado (Tabla 1) y su especificidad se verificó mediante análisis BLAST (homología ≥18 pb, Tm = 58–62 °C). El ARN se transcribía inversamente usando un kit de transcripción inversa, y la expresión del gen objetivo se detectaba mediante un kit de detección SYBR Green qPCR.
Análisis estadístico
Las comparaciones estadísticas entre dos grupos se realizaron utilizando una prueba t de muestras independientes, mientras que las diferencias entre múltiples grupos se evaluaron mediante ANOVA unidireccional seguida de análisis post hoc de Bonferroni. Los datos se expresan como media ± desviación estándar (DE) o media ± error estándar de la media (SEM). Se consideró que un valor de p < 0,05 indicaba la significancia estadística.