Artículo de método

Inducción calibrada con alambre de estenosis ureterales segmentarias en ratas mediante laparotomía de línea media

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DOI:

10.3791/70726

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17 de abril de 2026

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1Department of Urology and Urosurgery, University Medical Center Mannheim, Medical Faculty of the University of Heidelberg, 2Department of General, Visceral, and Transplantation Surgery, Heidelberg University Hospital, 3Division of Intelligent Systems and Robotics in Urology (ISRU), German Cancer Research Center (DKFZ) Heidelberg, 4DKFZ Hector Cancer Institute at the University Medical Center Mannheim, 5Department of Urology, University Hospital Leipzig, 6Department of Plastic Surgery and Hand Surgery, TUM University Hospital Munich, 7ORSI Academy

En este artículo

Resumen

Este protocolo describe un modelo reproducible de rata para inducir estenosis ureterales segmentarias graduadas mediante ligadura parcial calibrada con alambre mediante laparotomía mediana. Una ligadura 6-0 alrededor del uréter y un alambre metálico de calibración generan un lumen residual definido, permitiendo una confirmación funcional inmediata de la gravedad de la obstrucción.

Resumen

Las estenosis ureterales siguen siendo un gran desafío en la urología reconstructiva y pueden derivar de lesiones iatrogénicas, inflamación crónica, traumatismos, anomalías congénitas o radiación. Estas lesiones conducen frecuentemente a una uropatía obstructiva progresiva y a la pérdida de función renal. A pesar de los avances en técnicas endoscópicas y quirúrgicas, las estenosis ureterales siguen siendo difíciles de abordar, y sus efectos de remodelación sobre el parénquima renal siguen siendo objeto de investigación continua, lo que subraya la necesidad de modelos preclínicos sólidos. Este estudio establece un modelo reproducible de rata para la inducción controlada de varios grados de estenosis ureterales segmentarias mediante ligadura parcial calibrada con alambre mediante laparotomía mediana. El protocolo permite la constricción segmentaria y no transsectante del uréter, destinada a aproximar el estrechamiento fibrótico a nivel funcional y anatómico, minimizando el daño isquémico evidente y manteniendo la viabilidad del tejido macroscópico con continuidad ureteral. Al proporcionar una plataforma experimental fiable con baja variabilidad entre animales y entre cirujanos, este enfoque apoya la investigación traslacional sobre mecanismos biomoleculares, biomateriales, modalidades de imagen y técnicas reconstructivas para la estenosis ureteral.

Introducción

Las estenoses ureterales son relativamente comunes y suponen un desafío significativo en urología. Se han reportado en hasta un 4,9% de los pacientes tras procedimientos endoscópicos para la enfermedad decálculos 1,2,3, con incidencias aún mayores en poblaciones de alto riesgo, como los receptores de trasplante renal, donde hasta un 7% pueden verseafectados 4. Aunque muchas estenosis son causadas por lesiones quirúrgicas o intervenciones médicas, las causas no iatrogénicas también constituyen una proporción importante. Estos incluyen inflamación crónica, infecciones del tracto urinario, traumatismos físicos, anomalías congénitas y radioterapia 5,6. Cada una de estas etiologías puede acabar provocando obstrucción urinaria, infecciones recurrentes, dolor, formación de cálculos y, si no se trata, una pérdida irreversible de la función renal. Los pacientes afectados suelen experimentar morbilidad y una reducción de la calidad de vida, como se muestra tanto en cohortes institucionales como en revisiones sistemáticas 5,7,8. La carga a largo plazo es considerable; En una cohorte multiinstitucional de pacientes con estenosis ureteronales tras cirugía de cálculos ureteroscópicos, se requirió nefrectomía del lado afectado en el 25% de los casos, lo que subraya la considerable morbilidad de estaafección 9.

Esta carga clínica subraya la necesidad de modelos preclínicos robustos que puedan permitir la investigación sobre procesos biomoleculares asociados e informar la optimización del tratamiento. Las modalidades de tratamiento más comunes son los endoscópicos, como la dilatación o la incisión láser, así como la colocación de stents, reservando la reconstrucción quirúrgica para casos máscomplejos 10. A pesar de la mejora en los resultados iniciales, la recurrencia y la restenosis siguen siendo problemáticas. Las tasas de recurrencia reportadas tras la intervención oscilan entre el 11% y el 40%, y muchos pacientes requieren múltiples operaciones o colocación prolongada de stents para un alivio duradero y protección deórganos 11,12. El éxito del tratamiento está influenciado por el sitio de la estenosis, la duración, la etiología y los detalles de tratamientos previos; Varias revisiones recientes y grandes estudios de cohorte subrayan la necesidad de técnicas mejoradas y de una comprensión mecanicista másprofunda 4,5,13.

La investigación traslacional eficaz requiere modelos experimentales que repliquen estrechamente los mecanismos fibróticos, las características histopatológicas, el contexto anatómico y los procesos renales aguas arriba de la enfermedad de estenose ureteral humana. Entre ellos, los modelos de roedores se han convertido en plataformas fiables para estudiar la fibrosis ureteral y la pérdida funcional renal, así como para evaluar intervenciones antifibróticas y estrategiasreconstructivas 6,14,15,16,17. La base fisiopatológica de estos modelos fue establecida por Chevalier et al., quienes revisaron diferentes estrategias de obstrucción ureteral, centrándose en la obstrucción ureteral unilateral (UUO) como modelo reproducible de fibrosis intersticial renal y nefropatía obstructivaen ratas 6.

Sobre esta base, los modelos contemporáneos han refinado el nivel y el patrón de obstrucción. Vroomen et al. introdujeron un enfoque técnicamente seguro utilizando electroporación irreversible para inducir una obstrucción urinaria unilateral parcial con cicatricesrenales 14. De manera similar, Chen et al. propusieron un modelo UUO reversible que permite el estudio dinámico de la regresión de fibrosis bajo condiciones hemodinámicas variables15. Nan et al. y Khater et al. aclararon aún más las cascadas moleculares que impulsan la progresión de la fibrosis ureteral y la modulación terapéutica en la obstrucción parcial16,17.

Los modelos anteriores que se basaban en ligadura ureteral completa, resección segmentaria, enterramiento en el músculo psoas o lesión térmica a menudo resultaban en grados de obstrucción no controlados y no estandarizados, isquemia extensa y necrosis, lo que conducía a una atrofia parenquimatosa renal severa en lugar de una obstrucción graduada. Estos enfoques, tal como describen Chevalier et al. y Thornhill et al., proporcionaron valiosas perspectivas mecanicistas sobre la nefropatía obstructiva, pero no recapitularon la característica de estrechamiento fibrótico localizado de la enfermedad benigna de estenose ureteralclínica 6,18. Sigue faltando modelos simples y estandarizados de roedores que generen estenosis segmentarias calibradas, no transectantes, con viabilidad tisular preservada y grados definidos de obstrucción urinaria renal.

Para abordar esta carencia, este estudio establece un protocolo quirúrgico estandarizado para la inducción controlada de estenosis ureterales parciales en ratas. El modelo está diseñado para ser reproducible, anatómicamente preciso y versátil para su uso en investigación preclínica que abarca urología reconstructiva, evaluación de imágenes intraoperatorias y aplicaciones de ingeniería de tejidos. Al minimizar la variabilidad entre operadores y replicar el estrechamiento fibrótico clínicamente relevante, este modelo ofrece una plataforma traslacional para avanzar en la comprensión mecanicista y acelerar el desarrollo terapéutico para la enfermedad de estenosis ureteral.

En la práctica, el grado de obstrucción puede ajustarse seleccionando el diámetro adecuado del alambre de calibración para que coincida con la pregunta de investigación. Los diámetros mayores (por ejemplo, 0,65 mm) se aproximan a una obstrucción parcial leve con flujo urinario casi fisiológico, mientras que los diámetros más pequeños (0,30–0,20 mm) modelan obstrucción de alto grado con una reducción marcada del flujo. Además, este enfoque quirúrgico puede aplicarse tanto como modelo terminal agudo para estudiar cambios hemodinámicos y funcionales inmediatos como adaptado para experimentos de supervivencia que investiguen la remodelación crónica de tejidos, la progresión de la fibrosis y la adaptación renal a largo plazo.

En este modelo, la obstrucción parcial se logra atando una ligadura 6-0 alrededor del uréter con un alambre metálico de calibración de diámetro definido y posteriormente retirando el cable, dejando un lumen residual que corresponde al tamaño del alambre. Este diseño permite un estrechamiento graduado y controlado geométricamente que puede correlacionarse directamente con la salida urinaria funcional renal.

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Protocolo

Todas las actividades animales descritas aquí se llevaron a cabo en instalaciones acreditadas y fueron aprobadas por el comité institucional de cuidado y uso animal (IACUC) del Consejo Regional de Baden-Wurtemberg en Karlsruhe, Alemania. Los animales experimentales se manejaron conforme a protocolos institucionales y en cumplimiento de la legislación alemana que regula el bienestar animal, así como de las directrices establecidas por el Consejo de la Comunidad Europea (2010/63/UE) y las directrices Investigación Animal: Reporte de Experimentos In Vivo (ARRIVE). Se utilizaron ratas Dawley Sprague macho (peso medio: 400 g) tras un periodo de aclimatación de 7 días en la instalación animal bajo condiciones estandarizadas. Los reactivos y el equipo utilizado se enumeran en la Tabla de Materiales.

1. Anestesia y analgesia

  1. Inducir la sedación usando isoflurano al 4 vol% administrado en 100% de oxígeno a través de una cámara de inducción a un caudal de 5 L/min.
  2. Al perder el reflejo de enderezamiento, administrar una inyección subcutánea de 100 mg/kg de ketamina (solución al 10%; aproximadamente 0,35 mL) y 4 mg/kg de xilazina (dilución 1:10 de solución al 2%; aproximadamente 0,75 mL) para anestesia disociativa, analgesia y sedación.
  3. Confirma la profundidad anestésica por la ausencia de respuesta a un estímulo firme de pellizco usando fórceps.
  4. Aplica pomada oftálmica en ambos ojos para evitar la desecación corneal.
  5. Conseguir analgesia adicional mediante una inyección subcutánea de 5 mg/kg de carprofeno (dilución 1:10 de solución al 5%; aproximadamente 0,35 mL).
  6. Mantener la anestesia con isoflurano suplementario al 4 vol% mediante una mascarilla neonatal según sea necesario durante todo el procedimiento.
  7. Mantén la temperatura corporal entre 36,5 y 37,5 °C utilizando una almohadilla termostatizada controlada durante todo el procedimiento.

2. Preparación del sitio de operación e instrumentos

  1. Preparar la mesa de fregado con todos los instrumentos necesarios, incluyendo pinzas de preparación atraumática, pinzas romas para el sobreholt, tijeras de preparación, ligaduras monofilament 6-0 no reabsorbibles, hilos metálicos de calibración (aleación con superficie electropulida y extremos desebavados; 0,65, 0,55, 0,30, 0,20 mm de diámetro; esterilizados (autoclave) antes de su uso), hisopos de algodón humidificados, hisopos de gasa, jeringuilla de 1 mL con aguja integrada de 30 G, azul de metileno (solución al 0,5%, sin diluir), solución isotónica de cloruro de sodio (0,9% NaCl) y tubos capilares.
  2. Montar el animal en el aparato de exposición quirúrgica a roedores como se ha descrito en informes anteriores19,20.
  3. Afeitar la zona de acceso abdominal y realizar alternar triples exfoliaciones con etanol al 70% y hisopos antisépticos a base de povidona-yodo o clorhexidina en círculos concéntricos desde el lugar de la incisión hacia fuera. Repite tres veces.
  4. Cubre al animal con cortinas estériles, dejando expuesto solo el campo quirúrgico.
  5. Manipular anestésicos volátiles, punzantes y tintes químicos conforme a las normativas institucionales de bioseguridad, utilizando sistemas adecuados de eliminación de gases, equipos de protección y contenedores aprobados para la eliminación de objetos punzantes.

3. Acceso quirúrgico mediante laparotomía de línea media

  1. Realizar una incisión cutánea abdominal mediana de aproximadamente 3 cm con tijeras finas.
  2. Incire la línea alba longitudinalmente en la línea media para acceder a la cavidad peritoneal.
  3. Utiliza ganchos de preparación y compresas húmedas para retraer la pared abdominal y exponer el retroperitoneo.

4. Identificación y movilización del uréter izquierdo

  1. Identificar el espacio renal y retroperitoneal y movilizar suavemente la grasa retroperitoneal circundante usando una disección contundente con pinzas y hisopos de algodón humidificados (Figura 1A).
  2. Perfora la pelvis renal a través del parénquima renal con una fina aguja de 30 G (Figura 1B).
  3. Inyectar 0,01–0,2 mL de azul de metileno sin diluir para facilitar la identificación visual del uréter (Figura 1B.5).
  4. Observa la demarcación progresiva del contraste para seguir visualmente el curso ureteral desde la pelvis renal hacia la vejiga (Figuras 1B.6–10).
  5. Separa suavemente el tejido conectivo y adiposo circundante del uréter demarcado por el colorante usando pinzas finas y hisopos de algodón humidificados con un movimiento de arrancado (Figura 1C). Evita agarrar directamente, comprimir o una tracción excesiva de la pared ureteral para evitar rupturas o fístulas. Moviliza el uréter hasta que pueda seguirse continuamente desde la pelvis renal hacia la unión vesicoureteral (Figura 1D).

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Figura 1: Identificación y movilización asistida por contraste del uréter izquierdo. La flecha verde representa el lugar de la inyección renal. La flecha gris representa el uréter ingenuo. La flecha azul representa un uréter delimitado con colorante. La caja negra representa un área posteriormente ampliada. (A) Exposición retroperitoneal izquierda tras laparotomía mediana. (B) Demarcación del uréter asistida por colorante. (C) La disección roma moviliza el uréter desde el tejido circundante. (D) Uréter izquierdo completamente expuesto desde la pelvis renal hasta la unión vesicoureteral. (E) Ilustración esquemática de los pasos descritos, incluyendo jeringuilla y azul de metileno. Por favor, haz clic aquí para ver una versión ampliada de esta figura.

5. Ligadura parcial calibrada distal del uréter izquierdo usando un alambre metálico

  1. Elevar un segmento movilizado del uréter distal usando fórceps atraumáticos sin comprimir el uréter (Figura 2A.1–2).
  2. Pasar una sutura monofilamento 6-0 debajo del uréter usando pinzas romas (Figura 2A.3).
  3. Coloque un alambre metálico de calibración del diámetro deseado (0,65, 0,55, 0,30 o 0,20 mm) paralelo al uréter dentro del lazo de la ligadura (Figuras 2B.1–6).
  4. Aprieta la ligadura gradualmente usando un nudo deslizante con varios lanzamientos en la misma dirección hasta que el cabestrillo de sutura se adapte firmemente al complejo uréter-alambre sin aflojarse, lo que requiere al menos 4 lanzamientos con movimientos lentos de los dedos para permitir que la sutura se asiente entre los lanzamientos.
    NOTA: La tensión de sutura debe estar justo por debajo de la resistencia a la ruptura a la tracción, que es de 5–7 N para una sutura no reabsorbible de 6-0, por lo que se recomienda 3 N. Esto se traduce en un peso de tracción de unos 306 g y puede medirse con una báscula de resorte o es comparable a la fuerza digital cuando se sostiene un teléfono móvil normal con dos dedos en un agarre de pellizco. El aspecto esencial es que la sutura está completamente cerrada al complejo utérera-alambre y que hay tantos lanzamientos en bucle que no se aflojan antes de que sigan los lanzamientos de bloqueo. Debido a la naturaleza frágil de las suturas 6-0, no hay "demasiado apretado", ya que la sutura se romperá antes de que el tejido del uréter se deteriore. Ahora asegura el nudo con 3 lanzamientos de lazos de bloqueo en sentido contrario para evitar nudos de aire (Figuras 2B.7–10).
  5. Retirar cuidadosamente el alambre de calibración de forma lenta y recta para evitar lesiones por cizallamiento en la pared ureteral, dejando un residuo estandarizado de lumen ureteral correspondiente al diámetro del alambre (Figura 2C.1–5). La superficie pulida del alambre minimiza la fricción durante la extracción y reduce el riesgo de daño en el tejido.

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Figura 2: Ligadura parcial distal calibrada del uréter izquierdo usando un alambre metálico. (A) Uréter distal aislado y elevado con pinzas de sobreholt; Sutura 6-0 colocada debajo. (B) Alambre de calibración situado en paralelo al uréter dentro de la ligadura y ligadura mediante un nudo deslizante. (C) Extracción de cable, dejando un lumen residual estandarizado. (D) Ilustración esquemática de los pasos descritos con uréter (azul), alambre de calibración (gris) y ligadura (negro). Por favor, haz clic aquí para ver una versión ampliada de esta figura.

6. Identificación y movilización del uréter derecho

  1. Repita los pasos en analogía con el lado contralateral (Figura 3).

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Figura 3: Identificación y movilización asistida por contraste del uréter derecho. (A) Exposición retroperitoneal derecha con demarcación asistida por ureter asistido por colorante. (B) Disección roma que moviliza el uréter desde el tejido circundante. (C) Ilustración esquemática de los pasos descritos. Por favor, haz clic aquí para ver una versión ampliada de esta figura.

7. Ligadura completa proximal del uréter derecho usando un nudo deslizante sin alambre

  1. Elevar un segmento movilizado del uréter proximal usando pinzas atraumáticas sin comprimir el uréter (Figura 4A.1–3).
  2. Pasa una sutura monofilamento 6-0 no reabsorbible bajo el uréter usando pinzas romas (Figura 4A.4,5).
  3. Aprieta la ligadura gradualmente usando un nudo deslizante con varios giros en la misma dirección hasta que el cabestrillo de sutura aprete el uréter sin aflojarse, como se ha descrito anteriormente. Luego, asegura con lanzamientos de bucle de bloqueo en sentido contrario para lograr un cierre luminal casi completo (Figuras 4B.1–4).

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Figura 4: Ligadura completa proximal del uréter derecho usando un nudo deslizante sin alambre. (A) Uréter proximal aislado y elevado con pinzas Overholt; Sutura 6-0 colocada debajo. (B) Ligadura completa sin alambre usando un nudo deslizante. (C) Ilustración esquemática de los pasos descritos. Por favor, haz clic aquí para ver una versión ampliada de esta figura.

8. Validación funcional de la obstrucción ureteral parcial y completa

  1. Para validar la obstrucción parcial en el lado izquierdo, inyectar 0,2 mL de azul de metileno sin diluir de forma transparente en la pelvis renal usando una jeringuilla y observar el relleno antegrado del uréter distal al sitio de ligadura (Figura 5A.1–3).
  2. Inyectar 1,0 mL de solución salina en la pelvis renal para eliminar progresivamente la señal del contraste mediante el lavado y confirmar la continuidad de la permeabilidad ureteral (Figura 5A.3). Para aumentar aún más la certeza de la obstrucción ureteral incompleta, continúa la inyección hasta que se supere la capacidad volumétrica de la vejiga y se pueda observar una salida visible de líquido desde la uretra (Figuras 5A.4–5).
  3. Para validar la obstrucción completa en el lado derecho, inyectar 0,2 mL de azul de metileno sin diluir de forma transparente en la pelvis renal y confirmar la ausencia de paso distal del colorante (Figura 5B.1,2).
  4. Identificar la dilatación proximal del calibre ureteral aguas arriba del sitio de ligadura como indicador del bloqueo completo de salida (Figura 5B.3).
  5. Para una validación adicional más allá de la viabilidad viable del modelo animal, transectar ambos uréteres distalmente y posicionar los extremos ureterales abiertos directamente junto a capilares de vidrio para las mediciones de la recogida urinaria (Figura 5C).
  6. Para validar este modelo, cuantifique la producción urinaria por riñón durante un periodo de 30 minutos bajo condiciones fisiológicas y tras una ligadura parcial utilizando hilos de calibración de 0,65, 0,55, 0,30 y 0,20 mm de diámetro (Figura 5C.2).

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Figura 5: Validación funcional de la obstrucción ureteral parcial y completa. (A) Obstrucción parcial: la coloración del tinte y el lavado salino muestran relleno distal del uréter y flujo uretral, lo que indica una permeabilidad residual. (B) Obstrucción casi completa: ausencia de tinte distal, con un uréter proximal inflado aguas arriba de la ligadura. (C) La recogida capilar de volumen urinario unilateral durante 30 minutos por riñón muestra una reducción gradual de la salida de orina desde condiciones fisiológicas hasta la oclusión completa. (D) Medidas microscópicas de (1) diámetro de la ligadura, (2) diámetro del uréter externo, (3) diámetro del uréter interno y (4) grosor de la pared del uréter. Los asteriscos indican niveles de significación exploratoria. Por favor, haz clic aquí para ver una versión ampliada de esta figura.

9. Pasos y consideraciones terminales

  1. Cerrar la pared abdominal en múltiples capas bajo condiciones estériles, como se describió en informes anteriores 19,20,21.
  2. Tras la cirugía, observa a cada animal de forma continua hasta que recupere la reclinación esternal y la movilidad espontánea. Reubica a los animales solo cuando estén completamente alerta y sean capaces de moverse coordinadamente. Administrar analgesia postoperatoria con carprofeno subcutáneo a 5 mg/kg dos veces al día durante 48 horas y asegurarse de que el personal veterinario realice evaluaciones clínicas diarias para supervisar la recuperación y detectar posibles complicaciones.
  3. Documenta el bienestar animal utilizando sistemas de puntuación estandarizados como la Escala de Grimeca de Rata22 y la Puntuación de Condición Corporal23. Los criterios humanos incluyen una Puntuación de Grimacia de Rata ≥ 6 o una Puntuación de Condición Corporal de 1 a pesar de la analgesia adecuada. Eliminar inmediatamente los animales que presenten estos hallazgos, así como aquellos que presenten infección postoperatoria de heridas o dehiscencia de la pared abdominal, de acuerdo con los estándares institucionales de atención.
  4. Para experimentos no de supervivencia o para la interrupción tras el seguimiento, se sacrifica al animal mediante cardiotomía aguda bajo anestesia profunda o por luxación cervical (siguiendo protocolos institucionalmente aprobados). Opcionalmente, se reseccionan tanto riñones como uréteres en bloque para una posterior inspección anatómica, análisis biomolecular o imagen histopatológica.
  5. Deshacerse de los cadáveres animales, tejidos resecados, objetos punzantes y soluciones químicas restantes según las directrices de la instalación animal institucional y las directrices de bioseguridad.

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Resultados

La técnica de ligadura calibrada produjo una reducción dependiente del diámetro en el flujo urinario en todos los grupos experimentales. El flujo urinario se evaluó en un total de 14 ratas utilizando ambos riñones, lo que resultó en mediciones de 5 órganos por nivel de obstrucción parcial (0,65, 0,55, 0,30 y 0,20 mm de diámetro). Además, se incluyeron 4 animales que recibieron tratamiento simulado en un lado (el uréter fue movilizado y se ató una ligadura de nudo de aire suelta y no cons...

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Discusión

Este estudio establece un método quirúrgico reproducible para inducir estenosis ureterales unilaterales en ratas mediante laparotomía mediana y ligadura parcial calibrada, resultando en estrechamiento ureteral segmentario con viabilidad tesual macroscópica preservada que funciona y anatómicamente se asemeja a estenosis ureterales humanas benignas.

Clínicamente, la estenosis ureteral sigue siendo un factor importante en la obstrucción del tracto superior y la m...

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Divulgaciones

No se declaran conflictos de interés. No se recibió financiación específica. Uso animal aprobado por el Consejo Regional de Baden-Württemberg (IACUC 35-9185.81/G-62/23).

Agradecimientos

Los autores agradecen agradecido el servicio de almacenamiento de datos SDS@hd apoyado por el Ministerio de Ciencia, Investigación y las Artes de Baden-Württemberg (MWK) y la Fundación Alemana de Investigación (DFG) mediante la subvención INST 35/1314-1 FUGG e INST 35/1503-1 FUGG. Además, los autores agradecen el apoyo del NCT (Centro Nacional de Enfermedades Tumorales de Heidelberg, Alemania) a través de su programa estructurado de postdoctorado y el programa de Oncología Quirúrgica. También reconocemos el apoyo, mediante fondos estatales aprobados por el Parlamento Estatal de Baden-Wurtemberg, a la Alianza Innovación Campus de Salud + Ciencias de la Vida de Heidelberg Mannheim, procedente del programa de postdoctorado estructurado de Alexander Studier-Fischer: Inteligencia Artificial en Salud (AIH) - Una colaboración de DKFZ, EMBL, Universidad de Heidelberg, Hospital Universitario de Heidelberg, Hospital Universitario de Mannheim, Instituto Central de Salud Mental, y el Instituto Max Planck de Investigación Médica. Además, agradecemos el apoyo a través del Instituto Oncológico DKFZ Hector en el Centro Médico Universitario de Mannheim.

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Pinzas de preparación atraumáticaEsculapFB395RDE BAKEY ATRAUMATA Pinzas atraumaticas, rectas
Abrazaderas de sobrehol romasEsculapBJ012RPreparación del BEBÉ-MEZCLADOR y pinza de ligadura, doblado, 180 mm
CánulaBD (Beckton, Dickinson)301300BD Microlance 3 cánula 20 G
Tubos capilaresSigma AldrichP1174Microcapilar, calibrado 100 & micro; L
CarprofenoCP Pharma115carprofeno 0,5% (5% con 50 mg/mL diluido 1:10) (Carprosol®)
Intercambios de algodón whoolAmazonASIN: B0FPDB8ZGSIntercambios de algodón no estériles de whool
(autoclave para experimentos de supervivencia)
Varas de fijaciónLegefirm‎ 500343896Diapasón usados como varillas metálicas de fijación en forma de Y
Cambios de gasasMedrullASIN: B09164D1JGSustituciones de gasas estériles
Almohadilla térmicaGardineer RealIP67Bolsa térmica Royal Gardineer tamaño S, 20 vatios
isofluranoCuidados Críticos Piramal.PZN / EAN 09714675 / 4150097146757100% isoflurano 250 mL
Vaporizador de isofluranoUNO ROESTVASTSTAAL BV180000002Vaporizador de isoflurano
Solución isotónica de cloruro de sodioB. BraunASIN: B007PZJOQ4Solución de cloruro de sodio al 0,9%
KetaminaCP Pharma1202Ketamina 10% (100 mg/mL)
Alambre de calibración metálico
(0,20 mm de diámetro)		QUARKZMANASIN: B0DCZBT4LWCr20Ni80-Nichrom metálico
(0,20 mm de diámetro)
Alambre de calibración metálico
(0,30 mm de diámetro)		Rayher4006166052859Cr20Ni80-Nichrom metálico
(0,30 mm de diámetro)
Alambre de calibración metálico
(0,55 mm de diámetro)		SKYPROUPC: 792138793816Cr20Ni80-Nichrom metálico
(0,55 mm de diámetro)
Alambre de calibración metálico
(0,65 mm de diámetro)		twippASIN: B07WFWNNRMCr20Ni80-Nichrom metálico
(0,65 mm de diámetro)
Azul de metileno 0,5%ProvepharmPZN / EAN 10179678 / 4150101796787METILTIONIONIOCLORURO Proveblue 5 mg/mL en viales de 10 ml
Ligaduras monofilamentos 6-0 no reabsorbiblesCOVIDIENVP-889-Xsutura quirúrgica monofilamento de polipropileno no reabsorbible; La aguja puede retirarse
Ungüento oftálmicoBayer Vital GmbH15786815% de dexpantenol
Tubo de perfusor de plásticoM. Schilling GmbHS702NC150Tubo de conexión COEX 150 cm
Tijeras de preparaciónEsculapBC177RTijeras de preparación JAMESON, dobladas, modelo fino, romo/romo, 150 mm (6")
Placa de aceroMaschinenbau Feld GmbHC010206Chapa galvanizada, 40 x 50 cm, grosor 4,0 mm
Jeringuilla con aguja integradaBLPRKOTBL2509L3yici08Jeringuilla de 1 ml con aguja integrada de 30 G
xilazinaCP Pharma1206xilazina 0,2% (2% con 20 mg/mL diluido 1:10) (Xylavet)

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