Identificación de componentes activos y objetivos predichos de CC y desarrollo de la red "H-C-T".
Para explorar los mecanismos de los componentes clave y objetivos de la CC en la mejora de SONFH, los autores utilizaron la base de datos HERB 2.0 para identificar todos los componentes de CC evaluados. Se encontraron 85 compuestos bioactivos probables de los 209 constituyentes activos candidatos de CC (Tabla Suplementaria 1). Utilizando la plataforma suiza de predicción de objetivos y eliminando entradas duplicadas e inválidas, se obtuvieron 563 objetivos supuestos correspondientes a estos componentes de CC (Tabla Suplementaria 2). Los autores han identificado los componentes activos y objetivos de la CC.
Investigar los mecanismos moleculares implicados en el inicio y progresión de SONFH e identificar posibles blancos biomarcadores. El análisis del conjunto de datos GSE123568 en la base de datos GEO identificó DEGs asociados a SONFH, incluyendo 207 genes regulados al alza y 216 a la baja. El gráfico volcánico de los 425 DEGs se muestra en la Figura 2A, mientras que los patrones de expresión de los 60 DEGs principales ordenados por nivel de expresión se presentan como un mapa de calor en la Figura 2B, con la intensidad del color reflejando los valores de expresión transformados en logaritmómetro. Las bases de datos DisGeNET, OMIM y GeneCards proporcionaban 711 objetivos vinculados a SONFH. Combinando los 425 DEGs de la base de datos GEO, un total de 1136 objetivos están vinculados a SONFH. Tras la eliminación de duplicados, se confirmaron 1115 objetivos relacionados con SONFH, como se ilustra en la Figura 2C. Los autores han establecido preliminarmente una biblioteca de objetivos de enfermedades para SONFH.
Para identificar objetivos y componentes principales, un análisis de intersección entre los 563 objetivos de CC y los 1115 objetivos relacionados con SONFH identificó 61 objetivos comunes (Figura 3A y Tabla Suplementaria 3), que se incorporaron a Cytoscape 3.10.3 para construir la red "H-C-T" (Figura 3B). Esta red constaba de 147 nodos y 413 aristas. El análisis topológico indicó que (s)-4-nonanolido (grado:16), isohomogenol (grado:15), acetato de neril (grado:14), melilotocarpano A (grado:14), 3-metoxicinnamaldehído (grado:13) mostraron la mayor conectividad con los blancos proteicos.
Desarrollo y evaluación topológica de la red PPI.
Para explorar más a fondo los objetivos de CC en la mejora de SONFH. Cytoscape 3.10.3 se utilizó para visualizar la red PPI después de que se introdujeran 61 objetivos idénticos en la base de datos STRING. Había 463 aristas y 60 nodos en la red. En la Figura 4A, los nodos pasan en color y tamaño de más claro y pequeño a más oscuro y grande, lo que indica un aumento de grado de bajo a alto. El complemento MCODE facilitó la agrupación de estos objetivos en dos módulos funcionales (Figura 4A), entre los cuales el clúster 1 contenía 23 nodos y 216 aristas, con una puntuación de 19,636. Para caracterizar aún más la arquitectura de la red, se utilizaron DC, BC y CC como métricas topológicas. Con los valores medianos de estos parámetros establecidos como puntos de corte, los autores identificaron 8 objetivos activos (Figura 4B). El plugin CytoHubba utilizaba el algoritmo MCC para clasificar los nodos, identificando los 10 genes principales. (Figura 4C).
Análisis de enriquecimiento GO
Para explorar más a fondo los mecanismos de la CC en la mejoría de la ONFH, se realizó un análisis de enriquecimiento de GO en 61 posibles objetivos, utilizando BP, CC y MF. Se enriquecieron un total de 435 mandatos de GO, incluyendo 293 mandatos BP, 41 mandatos CC y 101 mandatos MF. Estos hallazgos se muestran en las Tablas Suplementarias 4, 5 y 6. La Figura 5A presenta visualmente los 10 términos más enriquecidos de BP, CC y MF usando un gráfico de burbujas. Los hallazgos indicaron que los términos BP estaban principalmente asociados con la transducción de señales, regulación positiva de la transcripción por ARN polimerasa II, regulación negativa del proceso apoptótico, regulación positiva de la transcripción con plantilla de ADN y regulación negativa de la transcripción por ARN polimerasa II. El análisis reveló que los términos MF estaban principalmente implicados en la unión a proteínas, la unión a iones metálicos y la unión idéntica a proteínas. Los resultados de la CC demostraron que la mayoría de los objetivos estaban ubicados principalmente en el citoplasma, la membrana y la membrana plasmática.
Análisis de KEGG
Para obtener información sobre los posibles mecanismos bioquímicos por los cuales la CC podría mejorar la SONFH, se realizó un análisis de enriquecimiento de vías KEGG para esclarecer los mecanismos bioquímicos a través de los cuales la CC podría mejorar la SONFH. Utilizando un criterio de cribado de P < 0,05 y FDR < 0,05, se identificaron 48 entradas de enriquecimiento KEGG (Tabla Suplementaria 7). Las 20 vías más enriquecidas significativamente, determinadas por el enriquecimiento y el recuento de pliegues, se visualizaron usando diagramas de burbujas y barras (Tabla 1, Figuras 5B y 5C). Utilizando Cytoscape 3.10.3, se construyó una red C-T-P con 167 nodos y 589 aristas (Figura 5D). Los efectos de CC sobre SONFH están principalmente relacionados con la infección por herpesvirus asociada al sarcoma de Kaposi, la vía de señalización de HIF-1 y la vía lipídica y aterosclerosis, según los análisis de enriquecimiento de la vía funcional GO y KEGG.
Verificación de MD
Para evaluar las posibles interacciones entre compuestos activos y objetivos clave, los 10 compuestos de la red C-T-P, incluyendo anethole, melilotocarpano A, acetato de nerilo, ácido caprílico, isohomogenol, 3-metaxicinamaldehído, (s)-4-nonanolido, miristicina, borneolo y acetato de cinamilo, se acoplaron con los objetivos clave AKT1, HIF-1α, STAT3, ESR1, CASP3, SRC y EGFR. Los resultados completos de acoplamiento para todos los pares compuesto–objetivo se resumen en la Tabla Suplementaria 8, y la información detallada sobre los compuestos, objetivos y parámetros de acoplamiento se proporciona en la Tabla Suplementaria 9. La Figura 6 presenta un mapa de calor de la distribución de energía de enlace.
En general, varios pares compuso-objetivo mostraron afinidades de unión relativamente favorables, con valores de energía de unión más bajos que indican interacciones predichas más estables. Cabe destacar que los resultados del acoplamiento mostraron una clara heterogeneidad en las afinidades de unión tanto entre compuestos como entre objetivos. Ciertos compuestos, como el melilotocarpano A, mostraron de forma consistente afinidades de unión relativamente fuertes entre múltiples objetivos, mientras que otros mostraron interacciones más moderadas o débiles, lo que sugiere que diferentes compuestos pueden contribuir de forma desigual a los efectos farmacológicos previstos.
Además, también se observó variabilidad entre los objetivos. Por ejemplo, ciertos objetivos como STAT3 y EGFR mostraron afinidades de unión relativamente moderadas o débiles con múltiples compuestos, con algunos valores que se acercan a -5,0 kcal/mol, en comparación con objetivos como AKT1 o SRC. Este patrón indica que no todos los objetivos centrales funcionan necesariamente como socios directos de alta afinidad de los compuestos identificados y pueden desempeñar roles reguladores indirectos dentro de la red de interacción. Estas diferencias pueden estar relacionadas con variaciones en la compatibilidad estructural entre ligandos y sitios de unión a proteínas, así como con las características inherentes de los objetivos.
Entre los pares evaluados, AKT1 mostró la menor energía de unión con melilotocarpano A (-9,6 kcal/mol), lo que sugiere una interacción potencialmente favorable. La Figura 7 ilustra el modo de enlace previsto de este complejo. Específicamente, SER205 de AKT1 forma enlaces de hidrógeno con melilotocarpano A, anethole y miristicina. Además, se predijo que el melilotocarpano A formaría enlaces de hidrógeno con GLY309 de HIF-1α, LEU438 y THR440 de STAT3, SER433 y ARG412 de ESR1, y ARG500 y GLU510 de SRC.
Para identificar compuestos candidatos representativos, se utilizó la energía de unión más baja para cada objetivo, y se estableció un umbral de energía de enlace de ≤ -5,0 kcal/mol para indicar interacciones relativamente estables. Según estos criterios, se identificaron como compuestos clave potenciales el melilotocarpano A, el anetario y la miristicina. En general, la mayoría de los componentes activos de CC mostraron posibles interacciones con los objetivos terapéuticos seleccionados, con algunos compuestos mostrando tendencias de unión relativamente más fuertes entre múltiples dianas. Sin embargo, debe señalarse que la DM es un enfoque computacional simplificado que proporciona predicciones preliminares de posibles interacciones y puede no tener en cuenta completamente la flexibilidad de las proteínas y los complejos entornos biológicos. Por lo tanto, estos resultados deben interpretarse con cautela, y las interacciones observadas no constituyen evidencia definitiva de unión directa.
Simulación de dinámica molecular
Para evaluar más a fondo la estabilidad de los complejos, los autores seleccionaron los complejos AKT1-melilotocarpano A, HIF-1α-melilotocarpano A y STAT3-melilotocarpano A para simulaciones de dinámica molecular. Entre los objetivos previstos, STAT3 y HIF-1α fueron seleccionados para simulaciones de MD basándose en sus roles centrales en la red de IBP y su relevancia biológica para la patología de SONFH. STAT3 mostró uno de los grados de conectividad más altos en la red PPI, lo que indica un posible papel regulatorio en múltiples vías de señalización. HIF-1α fue seleccionado porque el análisis de enriquecimiento KEGG identificó la vía de señalización HIF-1 como una de las vías más relevantes asociadas a la angiogénesis y la adaptación a la hipoxia en osteonecrosis.
Al mismo tiempo, los autores se centraron en AKT1 como objetivo representativo debido a sus fuertes puntuaciones de acoplamiento y su relevancia directa para las características patológicas de SONFH, especialmente la angiogénesis inducida por hipoxia y la regeneración ósea. Debido a limitaciones de recursos computacionales, se seleccionaron tres complejos representativos para simulaciones detalladas de MD, que es una estrategia comúnmente adoptada en estudios de simulación molecular basados en farmacología de redes. La desviación cuadrática media de la raíz (RMSD) evalúa eficazmente la estabilidad conformacional de los complejos proteína-ligando, donde valores más bajos indican mayor estabilidad estructural. Como se muestra en la Figura 8A, el complejo AKT1-melilotocarpano A completó su relajación en los primeros 12 ns y posteriormente alcanzó una meseta estable, observándose solo una fluctuación transitoria alrededor de 50-55 ns antes de volver rápidamente al equilibrio. El RMSD total durante toda la simulación fue de aproximadamente 0,369 nm. La Figura 8B ilustra que el complejo HIF1A-melilotocarpano A experimentó relajación en los primeros 16 ns, seguida del mantenimiento de una meseta estable. Se produjo una breve fluctuación entre 38 y 42 ns, tras lo cual se observó una rápida reestabilización. La RMSD total para este complejo era de 0,25 millas náuticas. En la Figura 8C, el complejo STAT3-melilotocarpan A experimentó relajación en 0,3 ns y luego alcanzó una meseta estable. La breve fluctuación ocurrió entre 5 ns y 80 ns. La simulación total fue de unos 0,21 nm. Como se muestra en los complejos AKT1-melilotocarpano A, HIF-1α-melilotocarpano A y STAT3-melilocarpano, mantuvieron la estabilidad sin alteraciones notables, lo que indica una combinación relativamente estable.
La flexibilidad de los residuos de aminoácidos en las proteínas se evaluó utilizando la fluctuación cuadrática media (RMSF). En la Figura 9A, la fluctuación global media del residuo fue de unos 0,17 nm, lo que sugiere que la estabilidad se mantuvo principalmente gracias al núcleo estructural y al bolsillo de unión. La mayor flexibilidad se limitaba en gran medida a regiones intrínsecamente móviles como segmentos terminales y regiones de bucle en lugar del núcleo bolsillo. Es bien sabido que estas regiones son flexibles por naturaleza. La Figura 9B muestra que aproximadamente el 94% de los residuos presentaron valores de RMSF por debajo de 0,20 nm, y solo alrededor del 6% superaron los 0,30 nm, lo que indica que la columna vertebral total de la proteína y los residuos internos fluctuaron dentro de un rango estable. La Figura 9C muestra que el residuo global medio era de aproximadamente 0,17 nm. No se identificaron fluctuaciones superiores a 0,15 nm en los datos, lo que indica que el bolsillo de unión mantuvo una conformación estable durante toda la simulación. Se ha demostrado que tanto los complejos AKT1-melilotocarpano A como HIF-1α-melilotocarpano A interactúan de forma fuerte y estable.
Los enlaces de hidrógeno son fundamentales para promover las interacciones proteína-ligando. La Figura 10A muestra que los complejos AKT1-melilotocarpano A formaban típicamente un enlace de hidrógeno, con un número de enlaces de hidrógeno que variaba entre 0 y 2. Entre melilotocarpano A y HIF-1α están separados por menos de 0,35 nm. AKT1 interactúa frecuentemente en proximidad con melilotocarpano A. Los complejos HIF-1α-melilotocarpano A forman de 0 a 2 enlaces de hidrógeno, principalmente un enlace de hidrógeno, como se muestra en la Figura 10B. En la Figura 10 C, el número de enlaces de hidrógeno del complejo STAT3-melilotocarpano A es de cero a cuatro. La mayoría de las veces, los átomos de A entre melilotocarpano A y HIF-1α están separados por menos de 0,35 nm. Los complejos HIF-1α-melilotocarpano A establecen 1-3 pares de contactos estrechos y a veces incluso 7-9 pares. Esto sugiere interacciones efectivas de enlace de hidrógeno entre la molécula pequeña y las proteínas objetivo. En resumen, tanto los complejos AKT1-melilotocarpano A como HIF-1α-melilotocarpano A demuestran estabilidad y resistencia.
La CC inhibe la reacción inflamatoria y la apoptosis de los ratones con SONFH
El análisis histológico con tinción ABH reveló cambios osteonecróticos pronunciados en el grupo SONFH, caracterizados por un aumento de lagunas vacías, núcleos picnóticos y arquitectura trabecular alterada, mientras que estas características patológicas se aliviaron notablemente tras el tratamiento con CC (Figura 11A). El análisis cuantitativo confirmó que las proporciones de lacunas vacías y núcleos picnóticos se redujeron significativamente en los grupos tratados con CC en comparación con el grupo SONFH (Figura 11B–C). El análisis micro-TC demostró una pérdida ósea trabecular severa en el grupo SONFH, que fue parcialmente revertida por la administración de CC (Figura 11D). De forma constante, el tratamiento con CC aumentó significativamente la VB/TV y la TB. Mientras disminuye Tb.Sp en relación con el grupo SONFH (Figura 11E–G). La tinción por inmunofluorescencia mostró una expresión elevada de HIF-1α y niveles reducidos de ALP en el grupo SONFH, acompañados de una expresión alterada de VEGF. El tratamiento con CC moduló la expresión de HIF-1α y VEGF y aumentó las señales ALP, indicando una mejora del microambiente óseo y de la actividad osteogénica (Figura 11H).
DISPONIBILIDAD DE DATOS:
Los conjuntos de datos utilizados o analizados durante el estudio actual están disponibles en el enlace: https://zenodo.org/records/19730455.

Figura 1: Diagrama de flujo de la estrategia de estudio de farmacología en redes para la mejora de CC de SONFH. La Figura 1 muestra que el estudio identifica posibles objetivos de los ingredientes activos de la CC a partir de la base de datos, siendo la SONFH la enfermedad central. Tras intersectar estos con objetivos relacionados con la enfermedad, se construyó una red de "componente–objetivo–vía" y términos GO, KEGG. A continuación, se emplean acoplamientos moleculares y simulación de dinámica molecular para evaluar la afinidad de unión entre componentes clave y objetivos centrales, realizándose la confirmación final mediante verificación experimental. Por favor, haz clic aquí para ver una versión ampliada de esta figura.

Figura 2: Cribado de objetivos intersectantes asociados con SONFH. (A) Gráfico volcánico que representa la distribución de genes expresados diferencialmente en muestras de enfermedad. Los puntos rojos denotan genes regulados al alza, los puntos azules indican genes regulados a la baja y los puntos grises representan genes que carecen de expresión diferencial significativa. (B) Mapa de calor que muestra los patrones de expresión de los 60 genes expresados diferencialmente, con columnas correspondientes a muestras y filas correspondientes a genes. (C) Diagrama de Venn que muestra la superposición de objetivos relacionados con enfermedades obtenidos de diferentes bases de datos. Por favor, haz clic aquí para ver una versión ampliada de esta figura.

Figura 3: Cribado de objetivos intersectantes entre CC y SONFH. (A) Diagrama de Venn que ilustra la distribución de 61 objetivos comunes compartidos entre los objetivos predichos de compuestos activos en CC (amarillo) y objetivos relacionados con SONFH (morado). (B) La red Herb-Compound-Target (H-C-T) ilustra las interacciones entre compuestos y sus respectivos objetivos. El nodo cuadrado azul representa la enfermedad, los nodos cuadrados verdes denotan compuestos activos y los nodulos cuadrados naranjas indican objetivos comunes. Los bordes denotan las interacciones entre compuestos y sus objetivos. Por favor, haz clic aquí para ver una versión ampliada de esta figura.

Figura 4: Identificación de objetivos candidatos mediante análisis PPI. (A) Red PPI agrupada con el plugin MCODE. (B) Flujo de trabajo esquemático de la cribado topológica dentro de la red PPI. (C) Genes clave extraídos de la red PPI mediante el plugin CytoHubba. Por favor, haz clic aquí para ver una versión ampliada de esta figura.

Figura 5: Resultados del análisis de enriquecimiento GO y análisis de enriquecimiento de vías KEGG para los 61 objetivos comunes. (A) Gráfico de burbujas que muestra los 10 principales términos de análisis de enriquecimiento GO para BP, CC y MF. (B) Gráfico de burbujas que representa las 20 vías KEGG más enriquecidas significativamente. (C) Distribución de las 20 vías enriquecidas más basadas en la clasificación funcional KEGG. (D) Red ilustrativa C-T-P que representa los posibles mecanismos por los cuales la CC puede mejorar la osteonecrosis de la cabeza femoral. Por favor, haz clic aquí para ver una versión ampliada de esta figura.

Figura 6: Mapa de calor de energía de unión de las interacciones entre los compuestos activos de CC y los objetivos clave (kcal/mol). Por favor, haga clic aquí para ver una versión ampliada de esta figura.

Figura 7: Modos de unión de objetivos clave con compuestos activos específicos. AKT1-melilotocarpano A (A1), HIF-1α-melilotocarpano A (B1), STAT3-melilotocarpano A (C1), ESR1-melilotocarpano A (D1), CASP3-melilotocarpano A (E1), SRC-melilotocarpano A (F1), EGFR-melilotocarpano A (G1), AKT1-aniloto (H1), AKT1-miristicina (I1). (A2), (B2), (C2), (D2), (E2), (F2), (G2) y (H2) ilustran respectivamente sus modos de unión 2D. Por favor, haz clic aquí para ver una versión ampliada de esta figura.

Figura 8: RMSD de los valores de RMSD MD. (A) para complejos AKT1-melilotocarpano A. (B) Los valores RMSD de los complejos HIF-1α-Melilotocarpano A. (C) Los valores RMSD de los complejos STAT3-Melilotocarpan A. Por favor, haz clic aquí para ver una versión ampliada de esta figura.

Figura 9: RMSF de MD. (A) Los valores RMSF de los complejos AKT1-melilotocarpano A. (B) Los valores RMSF de los complejos HIF-1α-Melilotocarpan A. (C) Los valores RMSF de los complejos STAT3-Melilotocarpan A. Por favor, haz clic aquí para ver una versión ampliada de esta figura.

Figura 10: Enlaces H de MD. (A) Los valores de enlaces H de los complejos AKT1-melilotocarpano A. (B) Los valores de enlace H de los complejos HIF1A-melilotocarpano A. (C) Los valores de enlace H de los complejos AKT1-melilotocarpano A. Por favor, haz clic aquí para ver una versión ampliada de esta figura.

Figura 11: La CC inhibe la respuesta inflamatoria y la apoptosis en la cabeza femoral, mejorando así la SONFH. (A) Secciones representativas de la cabeza femoral teñidas con ABH. Las lagunas vacías se indican con puntas de flecha negras, y los núcleos picnóticos con flechas. (B–C) Análisis cuantitativo de la proporción de lacunas vacías (B) y el número de núcleos picnóticos (C). n = 5. (D) Reconstrucciones micro-TC tridimensionales representativas de cabezas femorales. (E–G) Cuantificación de parámetros micro-CT, incluyendo fracción volumétrica ósea (BV/TV), separación trabecular (Tb.Sp) y grosor trabecular (Tb.Th). (H) Tinción representativa por inmunofluorescencia de HIF-1α, VEGF y ALP en secciones femorales de la cabeza; los núcleos se contra-tinturaron con DAPI. Los datos se presentan como media ± DS (n = 5). *P < 0,05, **P < 0,01, ***P < 0,001. Por favor, haz clic aquí para ver una versión ampliada de esta figura.
| Término | Enriquecimiento de pliegues | Valor P | Conde | Identificadores de usuario |
| Cáncer de vejiga | 28.44 | 1.23E-07 | 7 | CREBBP, CXCL8, NOS2, MMP2, STAT3, F2, PTGS2, HIF1A, ESR1, MMP9, EGFR, MTOR, VEGFA, CASP3, ERBB2, EP300, PPARG, NFE2L2, BCL2L1 |
| Vía de señalización HIF-1 | 16.66 | 6.56E-10 | 11 | SRC, MMP2, STAT3, HIF1A, ESR1, MMP9, EGFR, MTOR, VEGFA, CASP3, ERBB2, KDR, PDCD4, PTPN6 |
| Resistencia a los inhibidores de tirosina quinasa de EGFR | 16.66 | 3.84E-07 | 8 | CCR1, CREBBP, CXCL8, SRC, CASP3, STAT3 ,EP300, TYK2, PTGS2, HIF1A, MTOR, VEGFA |
| Cruce de Adherens | 12.54 | 1.64E-05 | 7 | CREBBP, ABCB1, CASP3, ERBB2, STAT3, PDCD4, EP300, PTGS2, MMP9, EGFR, MTOR, VEGFA |
| Resistencia endocrina | 11.78 | 2.35E-05 | 7 | CREBBP, NOS2, NOS3, ERBB2, STAT3, SERPINE1, EP300, HIF1A, EGFR, MTOR, VEGFA |
| Vía de señalización AGE-RAGE en complicaciones diabéticas | 11.55 | 2.63E-05 | 7 | CCR1, CXCL8, SRC, CASP3, STAT3, CXCR2, PTGS2, EGFR, MTOR, VEGFA |
| Proteoglicanos en el cáncer | 11.43 | 1.19E-10 | 14 | CXCL8, SRC, NOS3, CASP3, STAT3, PPARG, MMP9, BCL2L1, NFE2L2 |
| Vía de señalización de la relaxina | 10.25 | 1.02E-05 | 8 | OXTR, NOS2, NOS3, ERBB2, PTAFR, KDR, NOS1, EGFR, VEGFA |
| Infección por herpesvirus asociada al sarcoma de Kaposi | 10.20 | 1.45E-08 | 12 | SRC, ERBB2, STAT3, KDR, EGFR, MTOR, BCL2L1, VEGFA |
| Vía de señalización de la hormona tiroidea | 9.56 | 7.64E-05 | 7 | NOS2, SRC, NOS3, MMP2, NOS1, MMP9, EGFR, VEGFA |
| Esfuerzo cortante por fluidos y aterosclerosis | 8.21 | 0.000177 | 7 | CREBBP, CXCL8, SRC, CASP3, STAT3, EP300, TYK2, MMP9 |
| Hepatitis B | 8.18 | 4.41E-05 | 8 | CREBBP, STAT3, EP300, PTPN6, TYK2, EGFR, MTOR, BCL2L1 |
| Vía de señalización JAK-STAT | 7.93 | 5.35E-05 | 8 | SRC, VDR, STAT3, CYP3A4, ESR1, EGFR, MTOR, VEGFA |
| Infección por citomegalovirus humano | 7.34 | 6.2E-06 | 10 | CREBBP, CASP3, EP300, TYK2, PTGS2, EGFR, MTOR, VEGFA |
| Lipídios y aterosclerosis | 6.94 | 0.000035 | 9 | CXCL8, SRC, MMP2, ERBB2, MMP9, EGFR, VEGFA |
| MicroARNs en el cáncer | 6.25 | 2.06E-06 | 12 | CREBBP, SRC, ERBB2, EP300, PTPN6, PTPRF, EGFR |
| Carcinogénesis química - activación de receptores | 6.14 | 0.000265 | 8 | SRC, MMP2, ERBB2, ESR1, MMP9, EGFR, MTOR |
| Vías en el cáncer | 5.94 | 6.64E-10 | 19 | CXCL8, NOS3, CASP3, MMP2, STAT3, SERPINE1, VEGFA |
| Vía de señalización del calcio | 5.90 | 0.00011 | 9 | KAT2B, CREBBP, SRC, EP300, HIF1A, ESR1, MTOR |
| Infección por virus del papiloma humano | 4.00 | 0.00324 | 8 | SRC, NOS3, MMP2, KDR, MMP9, NFE2L2, VEGFA |
Tabla 1: Resultados de enriquecimiento de KEGG de las 20 vías enriquecidas más importantes.
Tabla suplementaria 1: Información básica de compuestos activos en CC.Por favor, haga clic aquí para descargar este archivo.
Tabla suplementaria 2: Los objetivos de 85 componentes activos en CC.Por favor, haga clic aquí para descargar este archivo.
Tabla suplementaria 3: Información sobre 61 objetivos comunes de CC-SONFH.Por favor, haga clic aquí para descargar este archivo.
Tabla suplementaria 4: Resultados de los términos de categorías de procesos biológicos del análisis de enriquecimiento GO.Por favor, haga clic aquí para descargar este archivo.
Tabla suplementaria 5: Resultados de los términos de categorización de componentes celulares a partir del análisis de enriquecimiento GO.Por favor, haga clic aquí para descargar este archivo.
Tabla suplementaria 6: Resultados de los términos de la categoría de función molecular a partir del análisis de enriquecimiento GO.Por favor, haga clic aquí para descargar este archivo.
Tabla suplementaria 7: Resultados de las vías del análisis de enriquecimiento KEGG.Por favor, haga clic aquí para descargar este archivo.
Tabla suplementaria 8: Energías de unión de acoplamiento molecular (kcal/mol) de pares compuso-objetivo.Por favor, haga clic aquí para descargar este archivo.
Tabla suplementaria 9: Detalles de objetivos y componentes para acoplamiento molecular.Por favor, haga clic aquí para descargar este archivo.