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Todas las estadísticas resumen utilizadas en los análisis de Randomización Mendeliana (MR) y Estudio de Asociación Transcriptoma Amplia (TWAS) se derivaron estrictamente de conjuntos de datos previamente publicados y desidentificados. La aprobación ética y el consentimiento individual para los estudios originales están documentados en sus respectivas publicaciones. En consecuencia, la aprobación ética adicional para este estudio de minería de datos fue eximida por la Junta de Revisión Institucional del Hospital Tongde de la provincia de Zhejiang (Zhe Tongde Lunshen 2024 [Yan] No. 028-JY). Las herramientas utilizadas para esta investigación se enumeran en la Tabla de Materiales.
1. Adquisición y procesamiento de datos RNA-seq
Los datos transcriptómicos se obtuvieron de la base de datos Gene Expression Omnibus (GEO) (GSE272198) para evaluar la conservación de las vías inmunitarias innatas en especies de mamíferos para la validacióninicial 17. Los macrófagos derivados de la médula ósea (BMDM) se infectaron con S. aureus (multiplicidad de la infección, MOI = 10) durante 1 hora, seguido de tratamiento con lisosafina (20 μg/mL) y gentamicina (50 μg/mL) para eliminar bacterias extracelulares. Tras tres lavados con solución salina tamponada con fosfato (PBS), las BMDM se cultivaron durante 24 horas, se lisaron en un reactivo de extracción total de ARN y se secuenciaron.
La calidad del ARN se evaluó mediante un sistema automatizado de electroforesis para garantizar su integridad. Las bibliotecas se prepararon a partir de tres experimentos independientes y se secuenciaron en una plataforma de secuenciación de alto rendimiento. Las lecturas en bruto se alinearon con el genoma del ratón (GRCm38, mm10) usando STAR (v2.7.10a). Se identificaron genes (DEGs) expresados diferencialmente mediante DESeq2 (v1.38.0). Para mitigar los falsos positivos, la significación estadística se definió como un valor p ajustado (FDR) < 0,05 y un cambio de fold |log₂| > 1. El análisis de Ontología Génica (GO) se realizó usando clusterProfiler (v4.6.0), y el Análisis de Enriquecimiento de Conjuntos Génicos (GSEA) se realizó usando GseaVis (v0.0.5). Los mapas de calor se generaban usando el paquete pheatmap (v1.0.12) en R (v4.2.0).
Análisis TWAS
Se obtuvieron datos de secuenciación de ARN de sangre entera y secuenciación del genoma completo (WGS) del proyecto Genotype-Tissue Expression (GTEx) (V8)18. Se utilizaron modelos de expresión génica preentrenados de un repositorio público (https://doi.org/10.5281/zenodo.3842289). Las estadísticas resumen de osteomielitis para TWAS se obtuvieron del consorcio FinnGen, que comprende 2.336 casos y 473.264 controles12.
TWAS se llevó a cabo utilizando tres algoritmos: imputación de tejido articular (JTI), PrediXcan19 y UTMOST 12,20. JTI estima la similitud en la expresión génica y la accesibilidad epigenética a la cromatina para optimizar la precisión de la predicción. PrediXcan aplica regresión neta elástica con validación cruzada de cinco veces, mientras que UTMOST mejora la precisión aprovechando datos de expresión multitisular utilizando LASO de grupo disperso. El marco modificado de UTMOST descrito por Zhou et al.12 estandariza los hiperparámetros para una estimación imparcial. Se retuvieron como imputables genes con puntuaciones estables de validación cruzada—predefinidos como un coeficiente de correlación r > 0,1 y una significación predictiva p < 0,0521. Se establecieron modelos de transcriptoma de sangre entera utilizando matrices de covarianza SNP del conjunto de datos de referencia 1000 Genomes.
Posteriormente se analizaron las asociaciones entre la expresión génica prevista y el riesgo de osteomielitis. Para tener en cuenta las pruebas múltiples, la significación estadística para TWAS se definió principalmente utilizando un umbral de Tasa de Descubrimiento de Falsos (FDR) de < 0,05. Dada la naturaleza generadora de hipótesis de este estudio en varias etapas, también se priorizaron loci que cumplían con un umbral sugestivo (nominal) de p < 0,05 para análisis posteriores de aleatorización mendeliana (SMR) y colocalización. Esta estrategia integradora pretende maximizar la captura de posibles factores regulatorios mientras se basa en la validación cruzada multi-ómica (TWAS + SMR) para garantizar la robustez de los candidatos priorizados.
Análisis SMR
Este estudio se ajustó a las directrices STROBE (Fortalecimiento de la Notificación de Estudios Observacionales en Epidemiología) 22. Para definir computacionalmente un fenotipo que representa la predisposición genética a la disfunción mitocondrial (en adelante denominada "mitodys" para fines de análisis), se extrajeron transcripciones correspondientes a todos los genes relacionados con mitocondrias conocidos de la base de datos MitoCarta3.023. Este conjunto de genes sirvió como base predefinida e informada por la biología para la predicción posterior del riesgo poligénico. Todas las interpretaciones funcionales posteriores relacionadas con las "mitodias" se derivan de esta inferencia computacional y deben considerarse predictivas y generadoras de hipótesis.
Los instrumentos de loci de rasgos cuantitativos de expresión (eQTL) se generaron utilizando variantes dentro de 1000 kb de las secuencias codificantes (cis-eQTLs). Las estadísticas resumen se obtuvieron del consorcio eQTLGen y del GTEx V824. Se seleccionaron un total de 8.932.843 SNPs vinculados a 1.013 transcritos relacionados con las mítoldias basándose en un umbral de significación genómica P < 5E-8. Las estadísticas basales de GWAS para los resultados de osteomielitis se obtuvieron de FinnGen20.
Se realizó un análisis de Randomización Mendeliana (SMR) basado en datos resumidos utilizando SMR (versión 1.0.3) con parámetros por defecto para estimar asociaciones pleiotrópicas entre rasgos de expresión génica y resultados de osteomielitis. El efecto causal beta_mitodys–osteomielitis representa el tamaño estimado del efecto log-odds de la disfunción mitocondrial en la osteomielitis y se calcula como:

Las razones de probabilidad (OR) representan el cambio por cada aumento logarítmico natural de una unidad en los niveles estandarizados de expresión génica. La colocalización se evaluó más a fondo utilizando la prueba de heterogeneidad en instrumentos dependientes (HEIDI).