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Un protocolo de montaje en cinta para la imagen de alta resolución en pila en Z de ojos compuestos de Drosophila

DOI:

10.3791/71043

April 3rd, 2026

In This Article

Summary

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El objetivo principal de este protocolo es permitir la obtención de imágenes no destructivas y el análisis cuantitativo de los ojos compuestos de Drosophila. Combina una estrategia de montaje en cinta con la adquisición estereomicroscópica de la pila Z y la reconstrucción de profundidad de enfoque extendida para producir imágenes de alta resolución y libres de artefactos.

Abstract

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Aquí presentamos un protocolo de montaje e imagen no destructivo para el análisis fenotípico de alta resolución del ojo compuesto de Drosophila. La fenotipización precisa del ojo compuesto de Drosophila suele estar limitada por su geometría convexa y fragilidad mecánica durante el manejo. Para abordar esto, detallamos un flujo de trabajo de imagen versátil y no invasivo que permite la visualización de alta resolución desde múltiples perspectivas. El protocolo utiliza una estrategia de montaje adhesivo personalizada sobre una plataforma de cinta invertida, asegurando las moscas por el cuerpo y las alas mientras deja la cabeza completamente intacta. De manera crucial, esta configuración flexible soporta orientaciones de montaje distintas: una posición lateral para captar la convexidad completa de los ojos individuales y una posición frontal para evaluar la simetría de toda la cabeza. Este método también facilita la disposición de matrices de alta densidad, permitiendo el procesamiento rápido de 20–30 muestras por sesión. Al integrar la estereomicroscopía de luz reflejada con la adquisición por pila Z y la reconstrucción de profundidad de enfoque extendida (EDF), el flujo de trabajo genera imágenes compuestas cuasi-3D uniformemente nítidas. Este enfoque preserva la pigmentación natural y produce imágenes de alta fidelidad y con mucho contraste, adecuadas para el análisis fenotípico cuantitativo a escala de órganos.

Introduction

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El ojo compuesto de Drosophila melanogaster es un modelo clásico y potente para estudiar el crecimiento, el patrón y la robustez de órganos durante el desarrollo. Compuesto por aproximadamente 800 ommatidios altamente ordenados, el ojo de mosca proporciona una lectura sensible y cuantificable de las perturbaciones genéticas que afectan a la proliferación, diferenciación y organizacióntisular 1,2,3. La manipulación genética del desarrollo ocular ha proporcionado históricamente conocimientos fundamentales sobre las vías de señalización....

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Protocol

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1. Recogida y sincronización de muestras

NOTA: Para garantizar la comparabilidad experimental, se requiere un control estricto del momento de la eclosión. Bajo condiciones estándar de cultivo a 25 °C, la eclosión suele ocurrir entre 10 y 12 días después de la puesta de huevos. Las pupas deben ser monitorizadas de cerca durante esta ventana, ya que el oscurecimiento de la casquilla pupal indica una eclosión inminente.

  1. Método de tapping directo (método estándar)
    1. Golpea suavemente el frasco estándar de cultivo de Drosophila de plástico 24 x 95 mm (sellado con un ....

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Results

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La trayectoria experimental completa, desde la recogida de muestras hasta la adquisición de imágenes, se resume en la Figura 1. La eficiencia del protocolo modificado se demuestra mediante la creación de matrices de muestras de alta densidad. Como se muestra en la Figura 2A, entre 20 y 30 moscas anestesiadas pueden organizarse en un patrón de cuadrícula sobre una única plataforma de cinta invertida. Los marcadores de orientación.......

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Discussion

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El ojo compuesto de Drosophila sirve como una potente lectura fenotípica para el cribado genético, donde los cambios observables en el tamaño del ojo, rugosidad opigmentación 2,3,8 suelen indicar perturbaciones en vías fundamentales de señalización como Hippo 5,6 o Hedgehog 7. Sin embargo, la eficiencia d.......

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Disclosures

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Los autores no declaran conflictos de interés.

Acknowledgements

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Este trabajo fue patrocinado por la Fundación Nacional de Ciencias Naturales de China (32071135).

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
Cilindro de gas de dióxido de carbono (CO2)Proveedor localN/A
Cerbatana anestesia COsub2<>T& LDG-08
Cámara de microscopio digitalLeicaDMC6200
Pinzas finasVETUSMOS-167B
Tapones de espumaDongpengN/A
Software de adquisición de imágenes (LAS X)Leica3.7.1
Software de procesamiento de imágenes (FIJI/ImageJ)NIHCódigo abierto
Iluminador LED para cúpulaLeicaLED5000 IDH
Iluminador LED de cuello de gansoCossimLG-10
Estereomicroscopio motorizadoLeicaM205 FCA
Lente objetivoLeicaPlanApo NA0.2 1.0x
Válvula de pedal neumáticaDELIXIFV-320
Viales estándar de cultivo de DrosophilaLAIBOER2424951
Medio alimenticio estándar de DrosophilaN/AHarina de maíz-agar-melaza
Portaobjetos estándar de microscopio de vidrioCitotest10127101P-G
Estereomicroscopio estándarNikonSMZ745
Cinta de enmascarar de papel blancaUBWIN25 mm de ancho

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Drosophila Compound EyeTape MountingZ Stack ImagingHigh Resolution ImagingPhenotypic AnalysisReflected Light StereomicroscopyExtended Depth FocusNon Destructive MountingSample Array PreparationQuasi 3D Imaging
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