Análisis digital de la canalización intraoperatoria de fluoresceína en ojos humanos durante la canaloplastia abinterna

Resumen

Este estudio presenta un flujo de trabajo estandarizado de código abierto para cuantificar la canalografía intraoperatoria de fluoresceína durante la canaloplastia ab-interna, que puede utilizarse para evaluar los patrones de salida acuosa del humor y potencialmente predecir el resultado postoperatorio en relación con la presión intraocular.

Resumen

La canaloplastia del abdomen interno (AbiC) es una cirugía de glaucoma mínimamente invasiva diseñada para potenciar la salida fisiológica del humor acuoso mediante la dilatación circunferencial del conducto de Schlemm. Aunque la canalografía de fluoresceína se ha utilizado intraoperatoriamente durante la canaloplastia ab-externa para visualizar las vías de salida, su aplicación cuantitativa durante AbiC aún no ha sido evaluada. Este estudio introduce un flujo de trabajo estandarizado para el análisis cuantitativo de la canalización intraoperatoria de fluoresceína durante AbiC, con el objetivo de evaluar los patrones acuosos de salida del humor y su potencial valor predictivo para los resultados quirúrgicos. Para ello, AbiC se realizó con imágenes viscoelásticas teñidas con fluoresceína y se adquirieron imágenes de canalografía de fase temprana y tardía durante la operación. Se desarrolló un flujo de trabajo de análisis de imágenes paso a paso utilizando el software de análisis de imágenes de código abierto para cuantificar la tinción subconjuntival con fluoresceína. Se aplicaron tres enfoques complementarios: medición de la intensidad de la tinción circunferencial utilizando anillos concéntricos alrededor de la córnea, análisis basado en cuadrantes de la tinción segmentaria y evaluación cualitativa de patrones de tinción focal correspondientes a posibles lugares de alteración de la malla trabeculares. Casos ejemplares sugirieron que una tinción extensa y homogénea con fluoresceína a través de los cuadrantes se asociaba con una reducción sostenida de la presión intraocular y la independencia de la medicación, mientras que se observó tinción limitada y heterogénea en ojos con resultados menos favorables. Este flujo de trabajo permite así una evaluación reproducible y cuantitativa de la salida acuosa del humor durante AbiC, sin requerir conocimientos en análisis de imágenes, y puede utilizarse para predecir el éxito de la cirugía mínimamente invasiva del glaucoma.

Introducción

El glaucoma es una enfermedad multifactorial con neuropatía óptica progresiva y una de las causas más comunes de ceguera en todo el^{mundo 1,2}. Se han identificado varios factores que contribuyen a la patogénesis del glaucoma —incluyendo la vulnerabilidad estructural de la lámina cribrosa, perfusión ocular alterada, genética y procesos autoinmunes—, pero el único factor de riesgo modificable sigue siendo la presión intraocular elevada (PIO⁾3,4,5,6,7,8 . El subtipo más común, glaucoma primario de ángulo abierto (POAG), se caracteriza por un aumento de la resistencia a la salida que conduce a una reducción del flujo de humor acuoso y, por tanto, a un aumento a largo plazo de la^{PIO 9}. Esto provoca pérdida de fibras nerviosas retinianas y defectos del campo visual a medida que avanza la enfermedad.

Existen varias estrategias de tratamiento disponibles, que se seleccionan en función de la gravedad y duración del glaucoma y de la PIO medida. Si la terapia tópica para reducir la PIO con colirios no es efectiva o no la tolera el paciente, se pueden realizar procedimientos láser o intervenciones quirúrgicas^10,11. Además de las cirugías tradicionales de filtrado como la trabeculectomía, ahora existen diversas cirugías de glaucoma mínimamente invasivas (MIGS) de menor riesgo^. Entre ellas se encuentra la canaloplastia abinterna (AbiC), que, a diferencia de la canaloplastia abexterna, no requiere una incisión de la esclerótica ni la creación de un^{colgajo 13}. El enfoque ab-interno ofrece un procedimiento significativamente menos invasivo en el que no se deja sutura como material extraño. También se ha demostrado que el efecto corresponde al del enfoque ab-externo, con un manejo significativamente más sencillo y menos^{complicaciones 14,15}. Otra ventaja de AbiC es que el tejido conjuntival se conserva para futuras intervenciones, si es necesario.

En este procedimiento, tras evaluar la cámara anterior mediante una incisión corneal, se introduce un microcatéter en el conducto de Schlemm con la ayuda de un gonioscopio, incisionando la malla trabecular y atravesándola en un círculo de 360°. Un viscoelástico expande el canal de Schlemm y las ostias de los canales colectores y puede inducir microrupturas focales de la malla trabecular¹⁶. Se cree que estos efectos facilitan la salida acuosa del humor al reducir la resistencia dentro de la vía convencional de salida, de acuerdo con la anatomía y fisiología del ojo y mejorando el acceso a los canales colectores, aunque los mecanismos exactos aún no se comprenden^{completamente 17}. Además, AbiC puede combinarse con cirugía de cataratas, lo que proporciona una reducción adicional de la PIO. En este contexto, la visualización intraoperatoria de las vías de salida puede proporcionar información indirecta sobre el estado funcional de la malla trabecular y el sistema distal de salida.

La canaloplastia ab-externa ya se ha combinado con canalización intraoperatoria con fluoresceína para visualizar las vías de salida 18,19,20. Los ojos con más zonas manchadas de la esclerótica y, por tanto, una mejora en la salida acuosa del humor mostraron una PIO más baja un año después del procedimiento. Por tanto, la canalización intraoperatoria puede utilizarse para predecir el efecto de la cirugía¹⁹. Que sepamos, aún no se ha investigado si esto también se aplica a AbiC. El objetivo de este estudio es, por tanto, evaluar un flujo de trabajo para analizar la canalización intraoperatoria durante AbiC. Desarrollamos este flujo de trabajo para cuantificar la intensidad y el alcance de la tinción subconjuntival con fluoresceína en una fase temprana y tardía. Esta es la primera evaluación del efecto del viscoelástico fluoresceinado en AbiC.

Posteriormente, se puede investigar si existe una correlación entre la cuantificación de las áreas teñidas y el grado de salida individual del humor acuoso, así como la reducción del medicamento inhibidor o inhibidor de la PIO utilizado postoperatoriamente. Se hipotetiza que una tinción más fuerte y, por tanto, un flujo acuoso visible más alto también significaría una mayor reducción en la PIO y el uso de medicación. Se utilizará la división en cuadrantes para comprobar si el flujo de salida se altera significativamente según la localización anatómica.

A largo plazo, el flujo de trabajo presentado se utilizará para aclarar si el éxito de AbiC puede predecirse a partir de la tinción con fluoresceína y también puede emplearse en otros tratamientos quirúrgicos necesarios.

Protocolo

Declaración ética:

Este estudio se llevó a cabo de acuerdo con la Declaración de Helsinki. Se consideró no intervencionista ya que era una revisión retrospectiva de los datos de los pacientes recogidos como parte de la práctica médica habitual. No se siguió ningún enfoque terapéutico prospectivo y todos los tratamientos se administraron de forma rutinaria como parte de la atención estándar. El Comité de Ética de Bonn revisó el protocolo del estudio y renunció al consentimiento informado dado el diseño no intervencionista (nº 2026-220). Los datos de los pacientes fueron desidentificados antes del análisis.

1. Canalización AbiC e Intraoperatoria

NOTA: Realiza AbiC en cada ojo utilizando el sistema de canaloplastia basado en microcatéter. El siguiente procedimiento describe el uso de este dispositivo. Realizar AbiC ya sea como procedimiento independiente o al final de una cirugía de cataratas sin incidentes mediante facoemulsificación.

1. Coloca el espéculo de la tapa de modo que sea visible la mayor cantidad posible de tejido escleral para el análisis posterior.
2. Aplica anestesia tópica, como clorhidrato de metacaína por procuración. Desinfecta el ojo para ser operado con yodo. Administrar anestesia parabulbar.
3. Estandariza los ajustes del microscopio para todos los pacientes.
   NOTA: Para AbiC, ajusta el microscopio al 20% de luz LED, 100% reflejo del fondo de ojo y 0% de luz circundante. Para la canalización, ajusta el microscopio al 100% de luz LED, 0% de reflejo del ojo ocular y 100–0% de luz circundante.
4. Aplica los ajustes al Zeiss Lumera (microscopio quirúrgico oftálmico). Los ajustes pueden variar según otros modelos de microscopio.
   NOTA: Utilice un enfoque temporal, independientemente de si el procedimiento es independiente o combinado.
5. Crea una o dos paracentesis de 1,0 mm a dos horas de distancia de la posición temporal del asiento, aproximadamente 1 mm dentro de la córnea transparente.
6. Rellena la cámara anterior con viscoelasticidad.
7. Inclina la cabeza del paciente alejándose del lado del cirujano en un ángulo de aproximadamente 30°. Inclina el microscopio a un ángulo aproximado de 30°. Enfoca el tejido iris periférico y muestra el ángulo de la cámara anterior.
8. Mezcla el viscoelástico con tinte de fluoresceína.
   1. Aspira 0,05 mL de fluoresceína muy lentamente en la viscoelástica usando una cánula estéril para que se forme una sola caverna dentro de la viscoelástica.
   2. Deja que la fluoresceína difunda durante 5–10 minutos.
   3. Presiona lentamente el émbolo de la jeringuilla viscoelástica para expresar completamente la caverna llena de fluoresceína.
9. Rellena el dispositivo de microcatéter con viscoelástico teñido con fluoresceína.
10. Prueba el dispositivo adelantando el microcatéter más allá de la punta del inyector.
11. Aplica hidroximetilcelulosa sobre la córnea. Inserta el microcatéter AbiC en la cámara anterior a través de la paracentesis. Coloca un gonioprisma, como una lente gonioprisma de Swan-Jacob, sobre la córnea.
12. Utiliza la punta del dispositivo para incisar la malla trabecula. Utiliza el actuador azul del dispositivo para avanzar el microcatéter hacia el canal de Schlemm.
13. Avanzar el microcatéter 360° a través del canal de Schlemm mientras administra doce bolus de 2,5 μL de viscoelástico teñido girando el viscoinyector.
14. Entrega un bolo de 2,5 μL por hora de reloj.
15. Retrae el microcatéter lentamente 360° mientras administra doce bolos viscoelásticos de 2,5 μL.
16. Retira el microcatéter de la cámara anterior. Retira el gonioprisma de la superficie ocular.
17. Realinea la cabeza del paciente y el microscopio en una posición recta para asegurar una vista estandarizada y recta del ojo. Enjuaga la córnea para eliminar el tinte y la hidroximetilcelulosa.
    NOTA: Si es necesario, utiliza un hisopo para eliminar cualquier mancha superficial y evitar una interpretación incorrecta de la decoloración superficial.
18. Cambia al filtro de luz azul. Graba la fase inicial de la canalografía usando vídeo o una serie de fotos.
19. Haz zoom hacia atrás para visualizar la mayor cantidad posible de tejido escleral y asegúrate de que la imagen está enfocada.
20. Cuando termines, apaga el filtro de luz azul.
    PRECAUCIÓN: Utiliza sondas bimanuales de irrigación/aspiración para eliminar la viscoelasticidad de la cámara anterior. Previene el reflujo sanguíneo manteniendo la cámara anterior bajo irrigación con solución salina equilibrada hasta que la paracentesis esté hidratada.
21. Inyecta cefuroxima intracameralmente.
22. Vuelve al filtro de luz azul. Graba la fase final de la canalización usando vídeo o una serie de fotos aproximadamente 2 minutos después de la imagen tomada en la fase inicial.
23. Haz zoom hacia atrás para visualizar la mayor cantidad posible de tejido escleral y asegúrate de que la imagen está enfocada.
24. Apaga el filtro de luz azul e inyecta dexametasona subconjuntivamente.

2. Exportación de imágenes y almacenamiento de datos

1. Descarga las imágenes de tu software de microscopio, Zeiss Forum.
2. Abre la carpeta del paciente correspondiente al número de paciente en el software del microscopio y utiliza el botón "Exportar" para almacenar las imágenes en una carpeta seleccionada.
3. Divide las imágenes exportadas en carpetas de fase temprana y fase tardía.
4. Nombra cada imagen usando el formato "Paciente No._Eye_Image_No." y guarda las imágenes en formato JPEG.

3. Cuantificación del flujo subconjuntival vía FIJI

NOTA: Aplica este flujo de trabajo tanto a las fases tempranas como a las tardías de la canalografía.

1. Carga una imagen de canalografía en FIJI²¹ (software de análisis de imágenes de código abierto). Recorta la imagen para que solo sea visible el ojo operado. Dibuja un rectángulo usando la "Herramienta de Rectángulo" y selecciona "Imagen > recortar" en el menú.
2. Dibuja el diámetro corneal de blanco a blanco en la imagen usando la "Herramienta de Línea Recta". Mide horizontalmente desde el limbo nasal hasta lateral. Establece el diámetro corneal de blanco a blanco como la escala usando el diámetro corneal conocido de la biometría preoperatoria bajo "Analizar > Escala > Distancia Conocida (unidades)".
3. Utiliza la "Herramienta Polígono" para marcar el límite entre la córnea y la esclerótica usando al menos 24 puntos. Si es necesario, revisa el vídeo quirúrgico o la imagen de la otra fase para identificar mejor el borde corneal. Utiliza puntos de referencia como vasos conjuntivales y la base de la micro-ruptura trabecular en la fase inicial.
4. Pulsa la "T" en el teclado o selecciona "Image > Overlay > To ROI Manager" para abrir el ROI Manager y guardar la marca corneal como ROI. Guarda la imagen para análisis posteriores, si es necesario.
5. Pulsa "Supr" en el teclado o selecciona "ROI Manager > Más > relleno" para eliminar la córnea.
   NOTA: Asegúrate de que la zona recortada parezca negra. Si es necesario, ajusta el color usando la herramienta "Selector de color".
6. Convierte la imagen fija en una imagen binaria en blanco y negro usando la herramienta "Umbral de color" en "Ajuste de > de imagen". Tras abrir la herramienta, selecciona "Default" como método de umbral, "Black & White" como color umbral y "HSB" como espacio de color. Elimina las marcas de las casillas "Pasar" para cada configuración y de la casilla "Fondo oscuro".
7. Asegúrate de que las áreas blancas correspondan a la mancha amarilla por fluoresceinada viscoelástica. Si es necesario, ajusta esto usando la herramienta "Selector de color".
8. Estandariza la imagen binarizada usando una de las siguientes tres opciones de configuración para facilitar una mejor comparabilidad entre imágenes.
   1. Para configuraciones totalmente estandarizadas para todo el colectivo de pacientes, se ajusta la barra superior a "Tono" = 140, "Saturación" = 205 y "Brillo" = 205. Ajusta la barra inferior a "Tono", "Saturación" y "Brillo" = 255.
   2. Para ajustes parcialmente estandarizados, elige individualmente el "Tono" de la barra superior y ajusta la barra superior "Saturación" y "Brillo" = 255. Ajusta la barra inferior "Tono", "Saturación" y "Brillo" = 255.
   3. Para configuraciones totalmente personalizadas, elige cada ajuste de barra superior individualmente para cada imagen. Ajusta la barra inferior "Tono", "Saturación" y "Brillo" = 255.
9. Compara la imagen binarizada con la original usando la función de "pilar" o la comparación directa.
10. Elige un ajuste mínimo para los ajustes parcialmente estandarizados y totalmente personalizados que siga representando áreas con manchas más claras, evitando la sobrerrepresentación de áreas con manchas fuertes. Si es necesario, elimina los reflejos de luz o el tinte superficial. Marque el artefacto con la "Herramienta de Polígonos" y pulse "Supr" o seleccione "ROI Manager > Más > rellenar".
11. Selecciona el negro como color de relleno bajo "Image > Color > Color Selecter" para que las áreas recortadas no se cuenten incorrectamente como tinte.
12. Cambia el tipo de imagen a "32 bits" mediante "Image > Type". Normaliza la configuración mediante "Procesar > mejorar contraste" y establece "% de píxeles saturados = 0,35".
13. Cuantifique la cantidad de salida acuosa de humor usando el enfoque 1, 2 o 3 como se menciona a continuación.
    1. Enfoque de cuantificación 1: Porcentaje de tinción con fluoresceína del área total circularmente fuera de la córnea.
       NOTA: Utiliza este enfoque para registrar el porcentaje de tinción con fluoresceína del área total circularmente fuera de la córnea.
       1. Dependiendo de la sección de imagen y del ancho de la apertura del párpado, proyectar tres anillos alrededor de la demarcación corneal previamente trazada, con cada anillo midiendo 1 mm de ancho.
       2. Selecciona la marca corneal en el Gestor de ROI y elige "Editar > selección > Hacer banda: 1".
       3. Recuperar el porcentaje de área teñida en el primer anillo. Selecciona "Analizar > establecer mediciones > valor gris medio > OK" y pulsa "Ctrl + M" en el teclado o selecciona "Analizar > medida".
       4. Anota los valores de la tabla que se abre.
       5. Pulsa "T" en el teclado o selecciona "Image > Overlay > To ROI Manager" para guardar el primer timbre en el ROI Manager.
       6. Repite los pasos 3.13.1.2 - 3.13.1.5 para el segundo y tercer anillo usando 2 o 3 unidades para la extensión de los anillos, partiendo de la marca corneal o de 1 unidad del anillo previamente dibujado.
       7. Revisa la imagen original para confirmar que los anillos contienen solo conjuntiva.
       8. Guarda la imagen binarizada bajo "File > Save As > Tiff" y nómbrala usando el formato "Patient ID_phase_Ring".
       9. Guarda los resultados correspondientes mediante "Archivo > guardar como" y nómbrales en consecuencia.
       10. Guarda el gestor de ROI correspondiente haciendo clic en "Deselect", luego en "Más > guardar" y nombrarlo en consecuencia.
    2. Enfoque de cuantificación 2: Análisis basado en cuadrantes de la tinción porcentual
       NOTA: Utiliza este enfoque para analizar el porcentaje de tinción individualmente para cada cuadrante.
       1. Completar los pasos 3.1–3.13.1.10 antes de comenzar el análisis de cuadrantes.
       2. Dibuja un rectángulo usando la "Herramienta de Rectángulo" para que represente exactamente la mitad de la imagen.
       3. Pulsa "Supr" en el teclado o selecciona "ROI Manager > Más > rellenar" para que solo quede la mitad de la imagen.
       4. Dibuja un segundo rectángulo que represente la mitad de la imagen restante.
       5. Pulsa "Supr" en el teclado o selecciona de nuevo "ROI Manager > Más > Rellenar" para que quede una cuarta parte de la imagen binarizada original.
       6. Aunque la córnea seleccionada no sea perfectamente redonda, intenta identificar un cuadrante que mida lo más cerca posible de 0,25 usando primero dos mitades exactas.
       7. "Desseleccionar" los tres anillos del primer enfoque a través del ROI Manager.
       8. Haz clic en "Más > Medida Múltiple > Una Fila Por Corte" para determinar la proporción teñida.
       9. Registra los resultados de la tabla que se abre.
       10. Repite los pasos 3.13.2.2 - 3.13.2.9 para los tres cuadrantes restantes.
       11. Guarda todas las imágenes binarizadas en cuadrantes bajo "File > Save As > Tiff" y nómbralas usando el formato "Patient ID_phase_Quadrant".
       12. Guarda los resultados correspondientes mediante "Archivo > guardar como" y nómbralos en consecuencia.
       13. Guarda el gestor de ROI correspondiente haciendo clic en "Deseleccionar", luego en "Más > guardar" y nombrarlo en consecuencia.
    3. Enfoque de cuantificación 3: Análisis de patrones de tinción focal correspondientes a alteraciones localizadas de mallas trabeculares
       NOTA: Utilice este enfoque para evaluar patrones de tinción focal que puedan corresponder a alteraciones localizadas de la malla trabecular. Durante el avance en el canal de Schlemm, el catéter puede inducir micro-rupturas en la pared interna de la malla trabecular e influir en herniaciones de la pared interna de la malla trabecular hacia ostias del canal colector. Por lo tanto, analiza las imágenes de fase temprana utilizando este enfoque.
       1. Completar los pasos 3.1 a 3.4.
       2. Haz clic en "Editar > hacer inverso".
       3. Pulsa "Del" en el teclado o selecciona "ROI Manager > Más > rellenar" para eliminar tejido escleral y así analizar únicamente las micro-rupturas trabeculares dentro del anillo corneal.
       4. Asegúrate de que la zona fuera del anillo corneal esté negra. Si es necesario, ajusta la pantalla en blanco y negro usando la herramienta "Selector de color".
       5. Dibuja un anillo ligeramente más pequeño en el interior del ROI corneal seleccionando primero el ROI corneal en el Gestor de ROI.
       6. Haz clic en "Editar > selección > ampliar > -0,2" para que un anillo 0,2 mm más estrecho aparezca dentro del anillo corneal.
       7. Pulsa la "T" en el teclado o selecciona "Image > Overlay > To ROI Manager".
       8. Haz clic en "Editar > selección > Haz que la banda > 0,2" para que aparezca un anillo 0,2 mm más ancho.
       9. Colocar este anillo sobre el anillo corneal para proporcionar el límite exterior y que solo se pueda analizar el área entre los dos anillos.
       10. Pulsa "T" en el teclado para guardar el anillo como retorno de inversión.
       11. Abre "Imagen > Ajustar > umbral de color" para comprobar la configuración del umbral.
       12. Utiliza configuraciones parcialmente estandarizadas. Elige individualmente el "Tono" de la barra superior, ajusta la barra superior "Saturación" y "Brillo" = 255, y la barra inferior "Tono", "Saturación" y "Brillo" = 255.
       13. Elige ajustes de color que permitan que el color rellene las zonas del anillo interior que muestran una ruptura trabeculare.
       14. Asegúrate de que las zonas teñidas aparezcan blancas en la imagen binarizada.
       15. Si es necesario, elimina artefactos y los lugares donde se hicieron los paracenteses. Marca las áreas con la "Herramienta de Polígono" y pulsa "Supr".
       16. Selecciona el negro como color de relleno bajo "Image > Color > Color Selecter" para que las áreas recortadas no cuenten incorrectamente como tinte.
       17. Haz clic en "Más > Múltiples Compases > Una Fila Por Corte".
       18. Registra los resultados de la tabla que se abre.
       19. Guarda las imágenes binarizadas bajo "Archivo > guardar como > Tiff" y nómbralas usando el formato "Paciente ID_phase_microruptures".
       20. Guarda los resultados correspondientes mediante "Archivo > Guardar como" y nómbralos en consecuencia.
       21. Guarda el gestor de ROI correspondiente haciendo clic en "Deselect", luego en "Más > guardar" y nómbrale en consecuencia.
14. Para la compilación de datos, abre una hoja de cálculo de Excel.
15. Copia todas las tablas de resultados recogidas previamente en una sola hoja de cálculo.
16. Para los resultados del análisis de cuadrantes, multiplica cada valor por cuatro para que los valores representen la tinción en una imagen completa y puedan compararse con los otros enfoques.

La Figura 1 ofrece una visión general del flujo de trabajo.

Figura 1: Visión esquemática del flujo de trabajo utilizado para cuantificar la salida acuosa del humor tras la canaloplastia abinterna (AbiC). El procedimiento incluye la canalización intraoperatoria de fluoresceína, adquisición de imágenes, procesamiento de imágenes mediante software de análisis de imágenes de código abierto, binarización y estandarización de imágenes, y análisis cuantitativo de patrones de tinción con fluoresceína. Por favor, haz clic aquí para ver una versión ampliada de esta figura.

Resultados

Se incluyeron pacientes mayores de 18 años con diagnóstico de glaucoma que se habían sometido a AbiC de forma independiente o en combinación con cirugía de cataratas. Además, las imágenes de canalografía debían estar disponibles al menos en la fase inicial o tardía. Una trabeculoplastia láser selectiva previa no era un criterio de exclusión, a diferencia de otros procedimientos quirúrgicos de glaucoma. Además, no se incluyeron pacientes con daño avanzado en glaucoma en el estudio.

Discusión

Este flujo de trabajo ofrece una guía paso a paso para utilizar software de análisis de imágenes de código abierto para cuantificar la cantidad de salida acuosa de humor tras AbiC. Las características del software de análisis de imágenes de código abierto proporcionan plantillas fáciles de usar que no requieren conocimientos de programación y pueden ser aplicadas por médicos sin soporte técnico. Este enfoque ayudará a evaluar el flujo acuoso del humor tras AbiC para valorar su potencial ...

Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo

Nombre	Empresa	Número de catálogo	Comentarios
Balanced Salt Solution	Bausch & Lomb	Ref.: BL705004
Bi-manual irrigation/aspiration probes	Zeiss	Ref.: 303060-0165-000
Cefuroxim	Laboratoires Thé&a	PZN: 09755705	Pre-mezclado por la farmacia
Dexamethasone	Dr. Winzer	PZN: 02192162
FIJI (ImageJ)	n/a	n/a	Software de análisis de imágenes de código abierto
Fluorescein dye	Alcon	PZN: 01467007
Healon Pro Viscoelastic	Johnson & Johnson	Ref.: 10-3100-12
Hydroxymethylcellulose	Johnson & Johnson	Ref.: 10310012
Iodine solution	Mundipharma	PZN: 03930490
iPrism S gonioprism lens	Glaukos	Ref.: OTB/LH-2
iTrack Advance Canaloplasty System	Nova Eye Medical	Ref.: Track-ADS	Sistema de canaloplastia basado en microcatéter
Lumera 700 Surgical Microscope + Calysto	Zeiss	Ref.: 6726521526	Microscopio quirúrgico oftálmico
Proxymetacaine hydrochloride	PUREN Pharma GmbH & Co. KG	PZN: 11055866
Sterile cannula	Braun	Ref.: 4657683