Declaración ética:
Todos los participantes fueron informados completamente sobre el propósito de nuestro experimento y firmaron el formulario de consentimiento informado. Esta investigación fue aprobada por el comité de ética del Hospital Afiliado Longyan de la Universidad Médica de Fujian (Número de aprobación: LYREC2023-k007-01). Todos los procedimientos se realizaron de acuerdo con las directrices, regulaciones pertinentes y la Declaración de Helsinki.
Reclutamiento de participantes, criterios de elegibilidad y recopilación de muestras
Un total de 211 individuos diagnosticados con RA y 180 participantes sanos (no RA) fueron reclutados del departamento de otorrinolaringología ambulatoria del Hospital Afiliado Longyan de la Universidad Médica de Fujian entre enero de 2023 y mayo de 2025. Los criterios de diagnóstico para la RA se adoptaron a partir de las Guías de la Sociedad China de Alergia para el Diagnóstico y Tratamiento de la Rinitis Alérgica17. Se requería que los pacientes presentaran no menos de dos síntomas clínicos de RA, incluyendo picazón nasal, estornudos, congestión nasal o rinorrea. Además, el examen de la mucosa nasal debía demostrar palidez y edema, y el resultado de la prueba cutánea de prick (SPT) o la prueba sérica de IgE debía ser positivo. La prueba cutánea de prick se realizó por personal especializado en la sala ambulatoria de pruebas de alérgenos para garantizar la precisión y la consistencia de los resultados. Todos los pacientes con RA completaron el Cuestionario de Calidad de Vida en Rinoconjuntivitis (RQLQ) y la Evaluación del Puntaje Total de Síntomas Nasales (TNSS) con la ayuda del personal médico, y los puntajes se registraron para su posterior análisis.
Se reclutaron como grupo sin RA a voluntarios sanos que se sometían a exámenes físicos de rutina en el hospital. Los participantes elegibles no tenían antecedentes personales ni familiares de RA, ni historial de asma u otras enfermedades alérgicas, ni sinusitis crónica u otras enfermedades inflamatorias de la cavidad nasal, ni infección del tracto respiratorio en el mes anterior. Además, se excluyeron del estudio a individuos con antecedentes de enfermedades graves cardíacas, hepáticas, pulmonares o renales, o de cualquier tumor maligno.
Se recogieron muestras de sangre venosa periférica de los dos grupos de voluntarios. Una porción de la sangre venosa anticoagulada se utilizó para la extracción de ADN y para extraer ARN plasmático. Otra porción de la sangre venosa se separó para obtener suero, el cual se utilizó para la detección de factores relacionados con el suero (inmunoglobulina E (IgE), interleucina-4 (IL-4), IL-6 e IL-10).
Extracción de ADN:
Se extrajo ADN de 200 µL de muestras de sangre venosa periférica utilizando un kit de extracción de ADN genómico de sangre completa (consulte la Tabla de materiales). Las muestras de sangre se recolectaron en tubos anticoagulantes con heparina de litio y luego se alícuotaron y congelaron a -20 °C para su almacenamiento. Los procedimientos operativos específicos deben seguir estrictamente las instrucciones del kit. Finalmente, se utilizaron 100 µL de tampón de elución para eluir el ADN. La pureza de la muestra de ADN extraída se determinó mediante un analizador de ácidos nucleicos/proteínas (espectrofotómetro) (la relación OD₂₆₀/OD₂₈₀ estuvo entre 1,8 y 2,0). Las muestras de ADN tras el análisis se almacenaron a -20 °C para su uso posterior en experimentos de genotipificación.
Detección del genotipo
El kit de genotipificación SNP TaqMan estaba disponible para detectar la distribución de los genotipos miR-146a rs2910164. La información del kit se ha ingresado en la lista de materiales de consumo. El volumen total de reacción de PCR fue de 10 µL, que contenía 5 µL de mezcla maestra, 0,5 µL de mezcla de cebadores y sonda de tipificación, 10 ng de ADN molde y agua libre de RNasa. La amplificación de ADN se realizó utilizando el instrumento de PCR cuantitativa en tiempo real Roche LightCycler 480 II con detección de fluorescencia. Condiciones de la reacción: pre-desnaturalización a 95 °C durante 10 min; 40 ciclos (95 °C durante 15 segundos, 60 °C durante 1 min), y la lectura de fluorescencia FAM/VIC a 60 °C. Una vez finalizada la amplificación, las señales de doble fluorescencia FAM/VIC recopiladas se analizaron mediante el software LightCycler 480, y los datos de genotipo se procesaron estadísticamente. Una señal única de FAM representa un genotipo homocigoto, una señal única de VIC representa otro genotipo homocigoto, y la presencia de ambas señales indica un genotipo heterocigoto. Las muestras con señales anormales o resultados inconsistentes tras la repetición se volverán a analizar. Cada experimento se realizó incluyendo un control sin molde y un control positivo para control de calidad. Todas las muestras se sometieron a tres réplicas técnicas.
RT-qPCR
La extracción de miARN total del plasma se realizó a partir de 100 µL de plasma utilizando un kit específico para la extracción de miARN. La información del kit se ha ingresado en la lista de material de consumo. La concentración de ARN se determinó mediante un espectrofotómetro. La relación OD₂₆₀/OD₂₈₀ de las muestras de miARN extraídas y calificadas osciló entre 1,8 y 2,0. Se utilizaron 200 ng de ARN para la transcripción inversa y la síntesis de ADNc, siguiendo el procedimiento estándar del kit. La transcripción inversa se llevó a cabo en un volumen total de 20 µL, incluyendo una incubación a 42 °C durante 60 min y una inactivación a 85 °C durante 5 min. La reacción de qPCR se preparó según el protocolo establecido, con un volumen total de 20 µL. La mezcla de reacción se configuró de la siguiente manera: 10 µL de mezcla previa para qPCR, 0,4 µL del cebador directo, 0,4 µL del cebador inverso, 1 µL de la plantilla de ADNc y 8,2 µL de agua libre de RNasas. Se utilizaron cebadores específicos para miR-146a y el gen de referencia interna U6. La amplificación se completó utilizando el instrumento de PCR cuantitativa en tiempo real Roche LightCycler 480 II. Las condiciones del ciclo térmico de qPCR fueron: pre-desnaturalización a 95 °C durante 30 s, seguido de 40 ciclos de desnaturalización a 95 °C durante 5 s y hibridación y extensión a 60 °C durante 30 s. Todas las muestras se analizaron por triplicado técnico. Los datos experimentales se analizaron utilizando el software LightCycler 480. Utilizando U6 como referencia interna para corregir la variación entre muestras, primero se calculó ΔCt (el valor de Ct de miR-146a menos el valor de Ct de U6), luego se calculó ΔΔCt (el ΔCt del grupo experimental menos el ΔCt del grupo control), y finalmente se obtuvo el nivel de expresión relativo de miR-146a mediante 2⁻ΔΔCt.
ELISA
Los niveles séricos de IgE, IL-4, IL-6 e IL-10 se detectaron mediante kits de ELISA. Los procedimientos experimentales se basaron en el manual de instrucciones. Los pasos específicos fueron los siguientes: en primer lugar, la solución concentrada de lavado se diluyó, y los estándares se diluyeron de forma gradual para preparar las soluciones de trabajo para la curva patrón. En segundo lugar, se añadieron 50 µL de diluyente, solución estándar y la muestra por analizar a los pocillos y se incubaron a 37 °C durante 60 min. Tras la incubación, los pocillos se lavaron tres veces con tampón de lavado. Posteriormente, se añadieron 50 µL de la solución de trabajo del anticuerpo conjugado con enzima, y las placas se incubaron a 37 °C durante 30 min. Una vez finalizada la incubación, se descartó el líquido y los pocillos se lavaron nuevamente, seguido de la adición de la solución cromógena y una incubación de 15 min a 37 °C en la oscuridad. Tras añadir la solución de parada, se midió la absorbancia a 450 nm utilizando un lector de microplacas. Las concentraciones de las muestras se calcularon según la curva patrón. Cada muestra se analizó tres veces. Se consideraron válidos los datos con un coeficiente de variación inferior al 10 %. Durante el experimento se establecieron pocillos en blanco y pocillos de control para el control de calidad. El rango de detección y la sensibilidad del kit cumplieron con las especificaciones indicadas en el manual del fabricante.
Estadísticas de los datos
Los datos experimentales se analizaron utilizando los programas SPSS y GraphPad Prism 9. Los datos se presentaron como media ± desviación estándar (media ± DE). La prueba de Shapiro-Wilk se utilizó para evaluar la normalidad de las variables continuas, y la prueba de Levene se aplicó para evaluar la homogeneidad de varianza. La comparación de variables continuas entre los dos grupos se analizó mediante la prueba t para muestras independientes. Para comparaciones entre múltiples grupos, se realizó un ANOVA de un factor seguido de la prueba post-hoc de Tukey, y se aplicó un ANOVA de dos factores para evaluar los efectos principales de dos factores independientes y su efecto de interacción. Los valores atípicos se identificaron y excluyeron según la regla de las 3 desviaciones estándar. En este estudio no se detectaron datos faltantes. La curva de característica operativa del receptor (ROC) se utilizó para analizar la eficacia diagnóstica de miR-146a para AR. Se calcularon los parámetros relevantes de la curva ROC y los intervalos de confianza del 95 % mediante algoritmos estadísticos integrados. El análisis de correlación de Pearson se utilizó para medir la correlación lineal entre la expresión de miR-146a y los niveles de factores séricos relacionados. Se realizaron análisis de regresión logística univariante y multivariante para identificar factores de riesgo para AR. Las variables con p < 0,05 en el análisis univariante se incluyeron en el modelo de regresión logística multivariante. Se consideró estadísticamente significativo un valor de p < 0,05.