Este estudio fue aprobado por el Comité de Ética del Hospital Zhangjiakou Primero (número de aprobación 2024-KY-18). Se informó a todos los participantes sobre los objetivos del estudio y los posibles riesgos, y proporcionaron consentimiento informado por escrito antes de su inclusión. Se recogieron muestras de sangre venosa de controles sanos durante exámenes físicos de rutina y de pacientes con LME inmediatamente después de su ingreso hospitalario. Las mediciones de laboratorio fueron realizadas por el laboratorio clínico del hospital. Las herramientas de investigación utilizadas en este protocolo se enumeran en la Tabla de Materiales.
1. Sujetos
Un total de 75 pacientes con lesión medular (SCI) fueron reclutados en el Hospital Zhangjiakou Primero entre enero de 2023 y enero de 2025. Los criterios de inclusión fueron lesión medular confirmada mediante tomografía computarizada (CT) o resonancia magnética (MRI), y un tiempo desde la lesión hasta el ingreso hospitalario de ≤ 12 h. Los criterios de exclusión fueron antecedentes de trauma o cirugía de médula espinal o cerebro en los últimos 6 meses; enfermedad cardiovascular grave, incluyendo infarto de miocardio o arritmia; embarazo o lactancia; y tumores malignos, función hepática o renal alterada, enfermedad cerebrovascular grave o enfermedades infecciosas.
Según los estándares de clasificación neurológica de la Asociación Estadounidense de Lesiones de la Médula Espinal (ASIA)26, 75 pacientes con lesión medular fueron clasificados en los grupos de función neurológica normal (n = 21), lesión medular incompleta (n = 36) y lesión medular completa (n = 18). La distribución de los sitios de lesión fue la siguiente: cervical, 36,0 %; torácica, 30,7 %; y lumbar, 33,3 %. Se reclutaron aleatoriamente 30 individuos sanos emparejados con la población de estudio para servir como grupo control. Se recopiló información clínica basal de todos los participantes. Los criterios de inclusión para los individuos sanos fueron: ausencia de antecedentes de trauma o cirugía de médula espinal o cerebro, o trastornos neurológicos; ausencia de antecedentes de enfermedades inflamatorias crónicas, trastornos autoinmunes o malignidades; ausencia de enfermedad cardiovascular, hepática o renal grave; ausencia de infección aguda o crónica en las últimas 4 semanas; y no estar embarazada ni en período de lactancia; además de estar emparejados por edad y sexo con el grupo de lesión medular.
La Medida de Independencia Funcional (FIM) se utilizó para evaluar la independencia funcional en las actividades diarias. La puntuación máxima de la FIM es 126. Se utilizaron las puntuaciones de sensación táctil, acmestesia y motora para evaluar la función sensorial y motora. Las puntuaciones máximas de sensación táctil y acmestesia fueron 112, y la puntuación motora máxima fue 100. Puntuaciones más bajas indican un deterioro neurológico más grave.
2. Cultivo celular, construcción del modelo y transfección
Las células microgliales inmortalizadas de ratón BV2 se obtuvieron del Centro de Recursos Celulares del Instituto de Biotecnología de Shanghái. Las células se cultivaron en medio de Eagle modificado por Dulbecco (DMEM) con alta glucosa, suplementado con 10% de suero bovino fetal (FBS), penicilina (100 U/mL) y estreptomicina (100 U/mL). Las células se mantuvieron a 37 °C en un incubador humedecido que contenía 5% de CO₂.
Para la construcción del modelo, las células BV2 fueron estimuladas con 0, 10, 20, 50, 100, 150 o 200 ng/mL de lipopolisacárido (LPS) durante 24 h. La concentración óptima de LPS se seleccionó en función de los resultados experimentales.
Para la transfección, las células BV2 se sembraron en placas de 6 pocillos y se transfectaron una vez que alcanzaron la confluencia adecuada. Se utilizó un reactivo de transfección a 1,5 µL/pocillo según las instrucciones del fabricante. Después de 6 h, el medio de cultivo se reemplazó con medio fresco y las células se cultivaron durante 24 h adicionales. El constructo de silenciamiento de LINC00707, el control negativo correspondiente, el oligonucleótido de miR-145-5p y el oligonucleótido de control correspondiente se utilizaron cada uno a una concentración de 50 nM por pocillo. Todos los experimentos de transfección se repitieron independientemente al menos 5 veces, con 3 réplicas paralelas por experimento independiente. Los datos se analizaron estadísticamente utilizando los resultados de al menos 5 experimentos independientes.
3. ELISA
Los sobrenadantes de cultivo de células BV2 transfectadas y estimuladas con LPS se recolectaron mediante centrifugación a 12.000 × g durante 10 min, y los niveles de interleucina-1β (IL-1β), IL-6 y factor de necrosis tumoral-α (TNF-α) se midieron utilizando los kits de ELISA correspondientes. En resumen, el ensayo se realizó incubando secuencialmente con un anticuerpo biotinilado, un conjugado de estreptavidina-HRP y un sustrato TMB según las instrucciones del fabricante. La absorbancia se registró a 450 nm utilizando un lector de microplacas. Los niveles de citocinas se determinaron a partir de curvas estándar. Cada muestra se midió por triplicado y se realizaron 6 experimentos independientes.
4. Medición de ERO
Los niveles intracelulares de ERO en células BV2 estimuladas con LPS se midieron utilizando un kit de ensayo de especies reactivas de oxígeno. Brevemente, las células se incubaron con 10 µmol/L de DCFH-DA a 37 °C durante 20 min. Tras la incubación, se descartó el sobrenadante y las células se lavaron 3 veces con solución salina tamponada con fosfato (PBS) para eliminar el exceso de sonda extracelular. La intensidad de fluorescencia se midió utilizando un lector de microplacas con longitudes de onda de excitación y emisión de 488 nm y 525 nm, respectivamente. Los niveles relativos de ERO se calcularon en función de la intensidad de fluorescencia. Todas las muestras se analizaron por triplicado, y todo el experimento se repitió de forma independiente al menos 5 veces.
5. Detección del malondialdehído, la superóxido dismutasa y el glutatión
Se recolectaron las células BV2 tratadas y se prepararon homogeneizados celulares. Las muestras se centrifugaron a 12.000 × g durante 10 min a 4 °C para obtener el sobrenadante. Se utilizaron kits comerciales de detección para malondialdehído (MDA), superóxido dismutasa (SOD) y glutatión (GSH), siguiendo las instrucciones del fabricante, para determinar sus niveles en los sobrenadantes celulares. Todas las muestras se analizaron por triplicado, y todo el experimento se repitió de forma independiente al menos 5 veces.
6. Ensayo de luciferasa dual
Los fragmentos de la región no traducida 3' (3' UTR) de LINC00707 y TRAF6 que contienen los sitios de unión predichos para miR-145-5p, junto con las secuencias mutantes correspondientes, se clonaron en el vector reportero de luciferasa pmirGLO para generar los constructos reporteros de tipo silvestre (WT-LINC00707 y WT-TRAF6) y mutantes (MUT-LINC00707 y MUT-TRAF6). Las células BV2 se co-transfectaron con los constructos reporteros y oligonucleótidos de miR-145-5p, y se cultivaron durante 24 h. Posteriormente, las células se recolectaron y las actividades de luciferasa de luciérnaga y Renilla se midieron utilizando un lector de microplacas.
7. RT-qPCR
El ARN total se extrajo utilizando un reactivo de extracción de ARN. La calidad del ARN se evaluó mediante la relación OD₂₆₀/OD₂₈₀, considerándose aceptables valores entre 1,8 y 2,0. Aproximadamente 1 µg de ARN total se transcribió inversamente a ADNc utilizando un kit de transcripción inversa. La expresión génica se cuantificó mediante RT-qPCR utilizando una mezcla maestra de PCR con SYBR Green. La transcripción inversa se realizó a 42 °C durante 15 min, seguida de la inactivación de la transcriptasa inversa a 95 °C durante 3 min. El ADNc sintetizado se almacenó a −20 °C hasta su análisis. La PCR cuantitativa en tiempo real se realizó con una pre-desnaturalización a 95 °C durante 1 min, seguida de 40 ciclos de desnaturalización a 95 °C durante 5 s y hibridación y extensión a 60 °C durante 15 s. Las señales de fluorescencia se registraron al final de cada paso de hibridación y extensión. El análisis de la curva de fusión se realizó a 95 °C durante 15 s, seguido de 60 °C durante 1 min. Los niveles relativos de expresión se calcularon utilizando el método 2⁻ΔΔCt. GAPDH o 5S se utilizó como referencia interna para la normalización de la expresión génica. Las secuencias de los cebadores fueron las siguientes: LINC00707, sentido 5'-CCAACAGGGTATCAGAATTCTC-3' y antisentido 5'-TGCTGACAATAGCCATTAGG-3'; miR-145-5p, sentido 5'-GCCGAGGTCCAGTTTTCCCA-3' y antisentido 5'-CTCAACTGGTGTCGTGGA-3'; TRAF6, sentido 5'-ATTACAACTGAGGTGCTTCT-3' y antisentido 5'-GCATCTGGTTCTGTTATAGGA-3'; GAPDH, sentido 5'-ATCCCATCACCATCTTCCAGG-3' y antisentido 5'-CGCCCCACTTGATTTTGG-3'; y 5S, sentido 5'-TCGTCTGATCTCGGAAGCTAA-3' y antisentido 5'-AAGCCTACAGCACCCGGTAT-3'.
8. Análisis estadístico
Los análisis estadísticos se realizaron utilizando software estadístico. La normalidad de la distribución de los datos se evaluó mediante la prueba de Shapiro-Wilk, donde un valor de P > 0,05 indicaba una distribución normal. Los datos con distribución normal se presentaron como media ± DE, mientras que los datos con distribución no normal se presentaron como mediana (P25, P75). Para variables continuas con distribución normal, las comparaciones entre dos grupos se realizaron mediante la prueba t de Student, y las comparaciones entre múltiples grupos se realizaron mediante ANOVA de un factor seguido de la prueba post hoc de Tukey. Para datos con distribución no normal, se utilizó la prueba U de Mann-Whitney para comparaciones entre dos grupos y la prueba de Kruskal-Wallis para comparaciones entre múltiples grupos. La prueba de chi-cuadrado se utilizó para analizar las variables categóricas entre grupos. Se realizaron análisis de regresión logística univariante y multivariante para evaluar los factores clínicos asociados con la expresión de LINC00707. Las variables continuas se dicotomizaron en la mediana de la cohorte (grupo de valor alto = 1; grupo de valor bajo = 0). Las variables con P < 0,05 en el análisis de regresión logística univariante se incluyeron en el análisis de regresión logística multivariante. Los resultados se presentaron como odds ratios (OR) con intervalos de confianza del 95 % (IC), donde un OR > 1 indicaba una asociación positiva y un OR < 1 indicaba una asociación negativa. Todos los experimentos de fenotipo celular incluyeron al menos 4 réplicas biológicas independientes, con 3 réplicas técnicas por réplica biológica. Se consideró estadísticamente significativo un valor de P < 0,05.