Selección de Constituyentes Candidatos, Recuperación de Blancos y Superposición de Blancos
El flujo de trabajo para la identificación de dianas superpuestas candidatas entre compuestos y enfermedades se resume en la Figura 1A. Siete compuestos candidatos de C. sinensis cumplieron con los criterios predefinidos de cribado de OA ≥30% y BD ≥0,18, incluyendo ácido araquidónico, acetato de linoleilo, β-sitosterol, peroxiergosterol, cerevisterol, palmitato de colesterol y CLR (Tabla 2). Paralelamente, se recuperaron 1.134 genes asociados a glomerulonefritis de GeneCards, DisGeNET, PharmGKB y TTD, y su distribución entre las cuatro bases de datos se muestra en la Figura 1B. El análisis de intersección entre el conjunto de dianas asociadas a compuestos y el conjunto de genes asociados a la enfermedad identificó 23 dianas superpuestas (Tabla 1, Figura 1C). La red correspondiente de compuestos–dianas superpuestas se presenta en la Figura 1D, ilustrando las relaciones entre los compuestos candidatos representativos, las dianas superpuestas y la CGN. Estas dianas superpuestas incluyeron varios genes relacionados con la regulación inflamatoria, apoptosis y señales asociadas al sistema vascular, tales como PTGS2, CASP3, MAPK1, PPARG, TNFRSF1A y NOS3.
Análisis de Enriquecimiento Funcional y de Interacciones Proteína-Proteína
Para investigar la significancia biológica de los 23 blancos superpuestos, se realizaron análisis de enriquecimiento de vías GO y KEGG. Los resultados revelaron que estos blancos están enriquecidos significativamente en múltiples vías relacionadas con la inflamación y el metabolismo.
El análisis GO clasificó los objetivos en las categorías de proceso biológico (BP), componente celular (CC) y función molecular (MF). Los términos BP más significativamente enriquecidos incluyeron respuesta al lipopolisacárido, respuesta a moléculas de origen bacteriano y regulación de los procesos del sistema muscular. A nivel celular, los objetivos se enriquecieron en compartimentos de balsas de membrana, caveolas y gránulos alfa de plaquetas, mientras que los términos MF como actividad de oxidorreductasa y unión a receptores nucleares implicaron además funciones en estrés oxidativo y regulación transcripcional (Figura 2A).
El análisis KEGG reveló que la vía de lípidos y aterosclerosis (hsa05417) fue la más significativamente enriquecida (valor q <1 × 10−6), junto con vías como la señalización AGE-RAGE en complicaciones diabéticas, la señalización de TNF, la señalización de IL-17 y la señalización de HIF-1 (Figura 2B). Notablemente, la vía de lípidos y aterosclerosis incluyó 10 de los 23 objetivos, entre ellos CASP3, MAPK1, PPARG, NOS3 y TNFRSF1A.
En conjunto, estos resultados de enriquecimiento indican que los objetivos superpuestos están funcionalmente asociados con procesos biológicos relacionados con la inflamación, la respuesta al estrés y el endotelio, relevantes para la NCG.
Análisis de la red de interacciones proteína-proteína
Se construyó una red de interacciones proteína-proteína (PPI) para los 23 objetivos superpuestos utilizando STRING, lo que dio como resultado una red que contiene 23 nodos y 102 aristas (Figura 3A). El análisis topológico mediante CytoNCA identificó nueve objetivos centrales altamente conectados: PTGS2, MAPK1, PPARG, CASP3, EGF, JUN, PECAM1, BCL2 y PRKCA (Figura 3B). Entre estos objetivos, PTGS2 mostró una centralidad de red prominente y, por lo tanto, fue seleccionado para el posterior análisis de acoplamiento molecular. Estos resultados destacan un subconjunto de reguladores candidatos priorizados por la red, potencialmente relevantes para la intersección compuesto-enfermedad.
Validación de Acoplamiento Molecular y Reacoplamiento
Para evaluar más a fondo la plausibilidad estructural de las relaciones candidatas asociadas a PTGS2 identificadas mediante el análisis de redes, se realizó un acoplamiento molecular utilizando una estructura de COX-2 unida a celecoxib. Se seleccionó la estructura cristalina con el identificador PDB 3LN1 porque contiene celecoxib unido al sitio activo de COX-2, lo que proporciona un bolsillo de unión al ligando definido experimentalmente para la validación del acoplamiento. Primero, se extrajo el ligando celecoxib co-cristalizado y se volvió a acoplar en el mismo bolsillo de unión. La posición del celecoxib reacoplado reprodujo estrechamente la posición cristalográfica, con una desviación cuadrática media (RMSD) de reacoplamiento de 0,876 Å y una afinidad de unión predicha de -12,3 kcal/mol (Figura 4A). Este resultado indicó que el protocolo de acoplamiento fue capaz de reproducir la posición conocida de unión del ligando bajo las condiciones de acoplamiento seleccionadas.
Utilizando el mismo receptor, caja de rejilla y parámetros de acoplamiento, se realizó el acoplamiento molecular de β-sitosterol en la región de unión a COX-2 definida por la celecoxib. El β-sitosterol mostró una afinidad de unión predicha de -7,2 kcal/mol (Figura 4B). La conformación acoplada se ubicó dentro de la región de acoplamiento a COX-2 previamente definida, y los residuos que rodeaban dicha conformación de β-sitosterol incluyeron ASN567, ASP333, GLN178, GLN336, GLY340, HIS337, HIS80, PRO500, THR79 y TYR341.
El acetato de linoleilo también se evaluó como candidato computacional secundario porque se mantuvo en la lista de constituyentes candidatos y se asoció con PTGS2 en el análisis de red. Bajo las mismas condiciones de acoplamiento molecular, el acetato de linoleilo mostró una afinidad de unión predicha de -7,5 kcal/mol, que fue ligeramente más favorable que la del β-sitosterol (Figura 4C). Su conformación predicha se ubicó cerca del ligando de referencia celecoxib dentro de la región de acoplamiento. Los residuos que rodean al acetato de linoleilo incluyeron ALA502, ALA513, ARG106, ARG499, GLN178, GLY512, HIS75, ILE503, LEU338, LEU345, LEU517, MET508, PHE504, SER339, SER516, TRP373, TYR371, VAL102, VAL335 y VAL509.
Viabilidad celular, activación inflamatoria y activación profibrótica
Se seleccionó el β-sitosterol para la validación a nivel de compuesto porque se identificó como un candidato asociado a PTGS2 en el análisis de red y tenía respaldo experimental previo por su actividad antiinflamatoria y antifibrotica. Primero se evaluó la viabilidad celular para determinar el rango de concentraciones adecuado para los experimentos posteriores. El tratamiento con β-sitosterol a 0,5, 1, 5 y 10 µM no redujo notablemente la viabilidad celular en comparación con el grupo control, mientras que 20 µM de β-sitosterol provocó una disminución leve. La exposición a LPS redujo la viabilidad celular, y el tratamiento conjunto con β-sitosterol mejoró parcialmente la viabilidad celular bajo estimulación con LPS, con el efecto más evidente observado a 10 µM (Figura 5A). Basándose en estos resultados, se utilizaron concentraciones de 1, 5 y 10 µM de β-sitosterol en los siguientes experimentos de activación inflamatoria inducida por LPS.
La estimulación con LPS aumentó notablemente la expresión de ARNm de genes inflamatorios en células HBZY-1. En comparación con el grupo control, el grupo tratado con LPS mostró niveles más altos de expresión de Tnf, Il6 y Ptgs2 (Figura 5B-D). El tratamiento con β-sitosterol redujo la sobreexpresión inducida por LPS de estos genes de manera dependiente de la concentración. La tendencia inhibitoria fue más evidente en el grupo con LPS más 10 µM de β-sitosterol. La celecoxib, incluida como control funcional de inhibición de COX-2, también redujo en cierta medida la expresión de genes inflamatorios, aunque su efecto fue menos pronunciado que el observado con 10 µM de β-sitosterol en varios marcadores transcripcionales (Figura 5B-D).
Dado que Ptgs2 codifica COX-2 y PGE2 es un importante producto prostaglandínico derivado de la actividad de COX-2, se midió la secreción de PGE2 mediante ELISA. El tratamiento con LPS aumentó la concentración de PGE2 en el sobrenadante de cultivo en comparación con el grupo control. El β-sitosterol disminuyó la producción de PGE2 inducida por LPS de manera dependiente de la concentración. La celecoxib también redujo la producción de PGE2 y sirvió como control positivo para la inhibición funcional del eje COX-2/PGE2 (Figura 5E). El análisis por inmunotransferencia mostró además que la LPS aumentó la abundancia de la proteína COX-2. El tratamiento con β-sitosterol redujo los niveles de la proteína COX-2 bajo estimulación con LPS, observándose una reducción más marcada a la concentración más alta. En contraste, la celecoxib redujo la producción de PGE2 pero mostró un efecto más limitado sobre la abundancia de la proteína COX-2 (Figura 5F).
Para complementar el modelo inflamatorio inducido por LPS, se utilizó un modelo de activación profibrótica inducida por TGF-β1 para evaluar si el β-sitosterol afectaba la expresión de marcadores fibróticos en células mesangiales. La TGF-β1 aumentó notablemente la expresión de ARNm de Col1a1 y Acta2 en comparación con el grupo control (Figura 6A,B). El β-sitosterol redujo el aumento inducido por TGF-β1 en ambos marcadores, y la reducción fue más evidente a 10 µM que a 5 µM (Figura 6A,B). El análisis por inmunotransferencia mostró un aumento correspondiente en la expresión de la proteína α-SMA tras la estimulación con TGF-β1, mientras que el tratamiento con β-sitosterol disminuyó la abundancia de la proteína α-SMA en células tratadas con TGF-β1 (Figura 6C).
DISPONIBILIDAD DE LOS DATOS:
Los datos brutos y procesados que respaldan este estudio se han depositado en Zenodo bajo el DOI: https://zenodo.org/records/21649482. Las imágenes de escaneo completo del perno western se proporcionan en el Archivo Suplementario 1.

Figura 1. Flujo de trabajo y red basada en la identificación de dianas superpuestas candidatas de compuestos y enfermedades de C. sinensis en la glomerulonefritis. (A) Esquema del flujo de trabajo que muestra la identificación de compuestos candidatos, recuperación y normalización de dianas asociadas a compuestos, recuperación de genes asociados a glomerulonefritis, análisis de intersección y construcción de la red de compuestos–dianas superpuestas. (B) Diagrama de Venn que ilustra la distribución de genes asociados a glomerulonefritis obtenidos de GeneCards, DisGeNET, PharmGKB y TTD. (C) Diagrama de Venn que muestra la superposición entre dianas asociadas a compuestos derivadas de TCMSP y genes asociados a la enfermedad, obteniendo 23 dianas superpuestas. (D) Red de compuestos–dianas superpuestas. El diamante verde representa a C. sinensis, los hexágonos azules indican compuestos candidatos, los círculos amarillos indican dianas superpuestas y el triángulo rosa representa CGN. Las aristas indican las relaciones correspondientes entre compuesto–diana o enfermedad–diana. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

Figura 2. Análisis de enriquecimiento funcional de los blancos superpuestos. (A) Análisis de enriquecimiento GO de los 23 blancos superpuestos. Se identificaron los principales términos BP, CC y MF. La longitud de las barras indica el número de genes; el gradiente de color representa el valor q. (B) Análisis de enriquecimiento KEGG de los 23 blancos superpuestos. Las vías se ordenan según el número de genes y la significancia estadística. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

Figura 3. Red de interacciones proteína-proteína y priorización de dianas centrales de los blancos superpuestos. (A) Red de interacciones proteína-proteína construida a partir de los 23 blancos superpuestos utilizando STRING con un umbral de puntuación de interacción >0,4. (B) Las nueve principales dianas centrales se priorizaron mediante análisis de la topología de la red basado en CytoNCA. PTGS2 mostró una centralidad destacada en la red y fue seleccionado para el posterior análisis de acoplamiento molecular. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

Figura 4. Acoplamiento molecular y validación por reacoplamiento de los compuestos candidatos seleccionados con COX-2. (A) Superposición de la conformación cristalográfica de la celecoxib y la conformación reacoplada mejor clasificada en la estructura de COX-2 murino unida a celecoxib (PDB ID 3LN1). El reacoplamiento reprodujo la orientación experimental de unión. (B) Conformación mejor clasificada del β-sitosterol dentro de la región de acoplamiento de COX-2 definida por la celecoxib. Se incluye la conformación cristalográfica de la celecoxib como referencia espacial. (C) Conformación mejor clasificada del acetato de linoleilo dentro de la misma región de acoplamiento. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

Figura 5. El β-sitosterol atenúa la activación inflamatoria inducida por LPS y la producción de PGE2 en células mesangiales HBZY-1. (A) La viabilidad celular se midió mediante el ensayo con el Kit de Conteo Celular-8. Las células fueron tratadas con β-sitosterol a 0,5, 1, 5, 10 o 20 µM durante 24 h. En los grupos estimulados con LPS, las células fueron pretratadas con β-sitosterol a 1, 5 o 10 µM durante 2 h antes de la exposición a 1 µg/mL de LPS durante 24 h. La viabilidad celular se expresó en relación con el grupo Control. (B–D) Análisis cuantitativo por PCR en tiempo real de la expresión de ARNm de Tnf (B), Il6 (C) y Ptgs2 (D). La expresión génica se normalizó respecto a Gapdh y se expresó en relación con el grupo Control. (E) Concentraciones de PGE2 en los sobrenadantes de cultivo medidas mediante ensayo inmunoenzimático (ELISA). Se incluyó celecoxib como control positivo funcional para la supresión de la producción de prostaglandinas dependiente de COX-2. (F) Imágenes representativas de inmunotransferencia tipo Western de COX-2 y GAPDH en los grupos de tratamiento indicados. Los datos se presentan como media ± DE de seis experimentos biológicos independientes, mostrándose los valores individuales de cada réplica biológica. Los valores de las réplicas técnicas se promediaron antes del análisis. Las comparaciones se realizaron mediante ANOVA de un factor seguido de la prueba de comparaciones múltiples de Tukey. La significancia se indica mediante corchetes en los paneles individuales: *P < 0,05, **P < 0,01, ***P < 0,001 y ****P < 0,0001. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

Figura 6. El β-sitosterol reduce la expresión de marcadores profibróticos inducida por TGF-β1 en células mesangiales HBZY-1. (A–B) Análisis por PCR cuantitativa en tiempo real de la expresión de ARNm de Col1a1 (A) y Acta2 (B). La expresión génica se normalizó respecto a Gapdh y se expresó en relación con el grupo Control. (C) Imágenes representativas de inmunoensayos tipo Western blot de α-SMA y GAPDH en los grupos de tratamiento indicados. Los datos se presentan como media ± DE de seis experimentos biológicos independientes, mostrándose los valores individuales de cada réplica biológica. Los valores de las réplicas técnicas se promediaron antes del análisis. Las comparaciones se realizaron mediante ANOVA de un factor seguido de la prueba de comparaciones múltiples de Tukey. La significancia se indica mediante corchetes en los paneles individuales: *P < 0,05, **P < 0,01, ***P < 0,001 y ****P < 0,0001. Haga clic aquí para ver una versión ampliada de esta figura.

Figura 7. Interpretación integrada de las respuestas inflamatorias y profibróticas asociadas al β-sitosterol en células HBZY-1. Los análisis de red y de acoplamiento molecular priorizaron a PTGS2/COX-2 dentro de un contexto más amplio que incluyó a MAPK1, JUN y PPARG. El tratamiento con β-sitosterol se asoció con reducciones en la expresión inducida por LPS de Tnf, Il6 y Ptgs2, en la abundancia del proteína COX-2 y en la producción de PGE2, así como con reducciones en la expresión inducida por TGF-β1 de Col1a1, Acta2 y α-SMA. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
| N.º | Objetivo superpuesto | Compuesto(s) candidato(s) asociado(s) con el objetivo |
| 1 | PTGS1 | β-sitosterol; acetato de linoleilo; ácido araquidónico |
| 2 | PTGS2 | β-sitosterol; acetato de linoleilo; ácido araquidónico |
| 3 | CASP3 | β-sitosterol; ácido araquidónico |
| 4 | CASP8 | β-sitosterol |
| 5 | BCL2 | β-sitosterol |
| 6 | JUN | β-sitosterol |
| 7 | PON1 | β-sitosterol |
| 8 | PRKCA | β-sitosterol |
| 9 | TGFB1I1 | β-sitosterol |
| 10 | ADRB2 | β-sitosterol |
| 11 | RXRA | acetato de linoleilo; ácido araquidónico |
| 12 | TNFRSF1A | ácido araquidónico |
| 13 | TNFRSF1B | ácido araquidónico |
| 14 | ALOX5 | ácido araquidónico |
| 15 | SELP | ácido araquidónico |
| 16 | C1R | ácido araquidónico |
| 17 | COL1A2 | ácido araquidónico |
| 18 | PPARG | ácido araquidónico |
| 19 | PRKCB | ácido araquidónico |
| 20 | NOS3 | ácido araquidónico |
| 21 | PECAM1 | ácido araquidónico |
| 22 | MAPK1 | ácido araquidónico |
| 23 | EGF | ácido araquidónico |
Tabla 1: Objetivos superpuestos entre los objetivos asociados a compuestos derivados de TCMSP y los genes asociados a glomerulonefritis. Los registros de compuestos-objetivo se recuperaron de TCMSP, se desduplicaron manualmente y se normalizaron a símbolos genéticos humanos oficiales utilizando UniProt.
| Nombre de la molécula | MW | AlogP | OB (%) | Caco-2 | BBB | DL | FASA | HL |
| Ácido araquidónico | 304.52 | 6.41 | 45.57 | 1.2 | 0.58 | 0.2 | 0.28 | 4.39 |
| Acetato de linoleilo | 308.56 | 6.85 | 42.1 | 1.36 | 1.08 | 0.2 | 0.21 | 7.48 |
| β-sitosterol | 414.79 | 8.08 | 36.91 | 1.32 | 0.99 | 0.75 | 0.23 | 5.36 |
| Peroxiergosterol | 428.72 | 6.73 | 44.39 | 0.86 | 0.43 | 0.82 | 0.24 | 4.06 |
| Cerevisterol | 432.76 | 5.26 | 39.52 | 0.35 | -0.29 | 0.77 | 0.22 | 5.08 |
| Palmitato de colesterol | 625.19 | 14.35 | 31.05 | 1.45 | 0.68 | 0.45 | 0.18 | 7.93 |
| Colesterol (CLR) | 386.73 | 7.38 | 37.87 | 1.43 | 1.13 | 0.68 | 0.2 | 4.52 |
Tabla 2: Constituyentes candidatos de C. sinensis recuperados de TCMSP mediante criterios de cribado de biodisponibilidad oral y similitud con fármacos. Se conservaron los compuestos con una biodisponibilidad oral de al menos 30 % y similitud con fármacos de al menos 0,18. MW, peso molecular; ALogP, coeficiente de partición octanol-agua predicho; OB, biodisponibilidad oral; Caco-2, permeabilidad predicha en Caco-2; BBB, penetración en la barrera hematoencefálica; DL, similitud con fármacos; FASA, área superficial accesible negativa fraccional; HL, semivida.
Tabla suplementaria 1. Secuencias de cebadores utilizadas para la PCR cuantitativa en tiempo real en células mesangiales glomerulares de rata HBZY-1. Todas las secuencias se presentan en dirección 5′ a 3′.Haga clic aquí para descargar este archivo.
Archivo suplementario 1. Imágenes completas de las transferencias Western blot.Haga clic aquí para descargar este archivo.