4 de febrero de 2009
Este protocolo muestra cómo diseccionar Drosophila Larvas en la preparación de inmunohistoquímica y / o imágenes de la unión neuromuscular.
Este procedimiento comienza colocando una larva de tercer estadio sobre la placa de disección. Se colocan alfileres en los extremos posterior y anterior de la larva. Se utiliza tijera para abrir la larva y pinzas para extraer los órganos internos.
Finalmente, se colocan cuatro alfileres más en cada esquina de la pared corporal de la larva para mantenerla tensa durante la fijación. Hola, soy Jonathan Brent del Laboratorio de Brian McCabe en el Departamento de Fisiología y biofísica solitaria en la Facultad de Médicos y Cirujanos de la Universidad de Columbia. Hoy les mostraremos el procedimiento para la disección de larva de Drosophila y de MJ.
Utilizamos este procedimiento en nuestro laboratorio para estudiar el desarrollo sináptico de la unión neuromuscular. Comencemos. En las larvas de drosophila, hay 30 músculos por hemisegmento cuya disposición dentro de la pared corporal periférica es conocida.
Un total de 35 neuronas motoras inerva estos músculos en un patrón altamente estereotipado. Para acceder a la unión neuromuscular o NMJ, es necesario diseccionar cuidadosamente cada larva con una disección adecuada. La NMJ puede utilizarse para imágenes de inmunohistoquímica o de electrofisiología.
Comience el procedimiento colocando una gota de tampón HL 3.1 sobre una placa de disección. El tampón se prepara por anticipado y se enfría en hielo. Seleccione cuidadosamente una larva de tercer estadio en fase de deambulación del costado del frasco utilizando pinzas de acero inoxidable grandes.
El movimiento indica que la larva no ha entrado en pupación. Coloque la larva con el lado dorsal hacia arriba en la gota de tampón sobre la placa de disección. El tampón frío anestesiará a la larva y manténgala inmóvil usando fórceps. Coloque un alfiler mnuchin entre las esferas posteriores, luego coloque un segundo alfiler cerca de los ganchos bucales oscuros para que la larva quede estirada y lista para abrirse.
Con tijeras de resorte, realice una pequeña incisión horizontal hacia el extremo posterior de las larvas. Inserte una hoja de la tijera en la cavidad del insecto y realice un corte longitudinal hacia el extremo anterior de la larva. A continuación, haga incisiones horizontales en el extremo anterior de las larvas, a la izquierda y a la derecha del alfiler.
Para extraer órganos como el intestino, agregue varias gotas de tampón HL 3.1 al animal; el intestino y otros órganos flotarán en la solución y podrán retirarse del cuerpo con pinzas. Asimismo, retire el sistema traqueal junto con los demás órganos. Ahora exponga los músculos internos del cuerpo sujetando hacia atrás los colgajos creados mediante las incisiones.
Asegúrese de estirar las paredes del cuerpo abiertas horizontal y verticalmente al sujetar las aletas. Retire cualquier resto de órganos y lave una vez.
Al agregar tampón HL 3.1 fresco, la larva ya está lista para ser fijada con formaldehído recién preparado diluido al 3,5 % en un XPBS, inmergiendo completamente las larvas y el fijador, y esperando 25 minutos. Cuando el período de fijación haya terminado, lave las larvas dos veces con tampón HL 3.1 durante tres minutos. Retire cuidadosamente los alfileres y transfiera las larvas a tubos de 1,5 ml que contengan un XPBS si es necesario.
Las larvas se pueden almacenar hasta dos días a cuatro grados Celsius. Para obtener resultados óptimos, utilice las larvas diseccionadas inmediatamente. Hay varios componentes clave en una larva de *Drosophila* diseccionada adecuadamente.
Primero, tenga cuidado de no dañar los músculos, especialmente los seis, siete y cuatro. Segundo, el animal debe estar adecuadamente extendido. De lo contrario, la unión neuromuscular podría no ser accesible o distinguible.
Aquí puede observarse una larva diseccionada adecuadamente. La junta neuromuscular es claramente visible y el sistema ya está listo para experimentos. Acabamos de mostrarle cómo diseccionar larvas esofágicas para estudiar la junta neuromuscular.
Al realizar este procedimiento, es importante mantener los músculos intactos. Si los músculos se dañan, no habrá uniones neuromusculares para estudiar. Eso es todo.
Gracias por ver el video y buena suerte con sus experimentos.
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Este protocolo muestra cómo diseccionar larvas de Drosophila para su preparación en inmunohistoquímica y/o imágenes de la unión neuromuscular. El procedimiento implica la colocación cuidadosa de alfileres y el uso de tijeras y pinzas para preparar las larvas para análisis posteriores.
La junta neuromuscular (NMJ) de la larva de Drosophila sirve como un modelo genéticamente accesible para estudiar el desarrollo y la plasticidad sináptica, ofreciendo alta accesibilidad y resolución a nivel celular. Este protocolo de disección permite la preparación reproducible de la NMJ para aplicaciones posteriores, como imágenes, inmunohistoquímica y electrofisiología, apoyando la validación de objetivos y la reducción de riesgos mecanicistas en las fases iniciales del descubrimiento. Al proporcionar un método estandarizado para aislar y visualizar estructuras sinápticas, la técnica mejora la confianza predictiva en la evaluación de objetivos neurobiológicos y la clarificación de vías.
El flujo de trabajo de disección se integra en las primeras etapas del descubrimiento al permitir la comprobación de hipótesis, avanza hacia la identificación de compuestos activos mediante fenotipos sinápticos cuantificables y apoya la validación preclínica mediante cribado fenotípico relevante para la enfermedad.