4 de febrero de 2009
Este protocolo muestra cómo diseccionar Drosophila Larvas en la preparación de inmunohistoquímica y / o imágenes de la unión neuromuscular.
Este procedimiento comienza con la colocación de una larva de tercer estadio en la placa de disección. Los alfileres se colocan en los extremos posterior y anterior de las larvas. Se utilizan tijeras para abrir las larvas y fórceps para extraer los órganos internos.
Finalmente, se colocan cuatro alfileres más en cada esquina de la pared del cuerpo de la larva para mantenerla tensa durante la fijación. Hola, soy Jonathan Brent del laboratorio de Brian McCabe en el Departamento de Fisiología y Biofísica del Colegio de Médicos y Cirujanos de la Universidad de Columbia. Hoy te mostraremos el procedimiento para la disección de larvas de Drosophila y MJ.
Utilizamos este procedimiento en nuestro laboratorio para estudiar el desarrollo sináptico de la unión neuromuscular. Así que comencemos. En las larvas de Drosophila, hay 30 músculos por segmento de hemi cuya disposición dentro de la pared periférica del cuerpo se conoce.
Un total de 35 neuronas motoras inervan estos músculos en un patrón muy estereotipado. Para acceder a la unión neuromuscular o NMJ, es necesario diseccionar cuidadosamente cada larva con una disección adecuada. La NMJ se puede utilizar para obtener imágenes, inmunohistoquímica o electrofisiología.
Comience el procedimiento colocando una gota de tampón HL 3.1 en una placa de disección. El tampón se fabrica con anticipación y se enfría con hielo. Escoja con cuidado una larva de estrella del tercer extremo errante del costado del frasco con pinzas SS grandes.
El movimiento indica que las larvas no han entrado en la pupación: Coloque las larvas con el lado dorsal hacia arriba en la gota de amortiguación en la placa de disección. El tampón frío anestesiará a las larvas y las mantendrá quietas con fórceps. Coloque un alfiler de mnuchin entre las esféricas posteriores, luego coloque un segundo alfiler cerca de los ganchos de la boca oscura para que las larvas se estiren y estén listas para abrirse.
Con unas tijeras de resorte, haga una pequeña incisión horizontal hacia el extremo posterior de las larvas. Inserta una hoja de las tijeras en la cigüeya y haz un corte longitudinal hacia el extremo anterior de la larva. Luego, haga incisiones horizontales en el extremo anterior de las larvas a la izquierda y a la derecha del alfiler.
Para extraer órganos como el intestino, agregue varias gotas de tampón HL 3.1 al animal, el intestino y otros órganos flotarán en la solución y se pueden separar del cuerpo con fórceps. Además, extirpar el sistema traqueal con los demás órganos. Ahora exponga los músculos internos del cuerpo sujetando hacia atrás las solapas hechas por las incisiones.
Asegúrese de estirar las paredes del cuerpo para abrirlas horizontal y verticalmente. Al sujetar las solapas. Retire los restos de órgano y lávelos una vez.
Al agregar tampón HL 3.1 fresco, la larva ahora está lista para ser fijada con formaldehído recién hecho diluido al 3.5% en un XPBS, sumerja completamente las larvas y el fijador y espere 25 minutos. Una vez finalizado el período de fijación, lavar las larvas dos veces con el tampón HL 3.1 durante tres minutos. Retire con cuidado los alfileres, transfiera las larvas a tubos de 1.5 mil que contengan un XPBS si es necesario.
Las larvas pueden almacenarse hasta dos días a cuatro grados centígrados. Para obtener resultados óptimos, use las larvas disecadas inmediatamente. Hay varios componentes clave para una larva de Drosophila correctamente diseccionada.
Primero, tenga cuidado de no dañar los músculos, especialmente seis, siete y cuatro. En segundo lugar, el animal debe estar debidamente estirado. De lo contrario, es posible que la unión neuromuscular no sea accesible o distinguible.
Aquí se puede ver una larva debidamente disecada. El NMJ es claramente visible y el sistema ya está listo para los experimentos. Acabamos de mostrarte cómo diseccionar larvas de esófago para estudiar la unión neuromuscular.
Al realizar este procedimiento, es importante llevar los músculos intactos. Si los músculos están dañados, no habrá uniones neuromusculares para estudiar. Así que eso es todo.
Gracias por mirar y buena suerte con tus experimentos.
Vea la transcripción completa y acceda a miles de videos científicos
Este protocolo muestra cómo diseccionar larvas de Drosophila para su preparación en inmunohistoquímica y/o imágenes de la unión neuromuscular. El procedimiento implica la colocación cuidadosa de alfileres y el uso de tijeras y pinzas para preparar las larvas para análisis posteriores.
La junta neuromuscular (NMJ) de la larva de Drosophila sirve como un modelo genéticamente accesible para estudiar el desarrollo y la plasticidad sináptica, ofreciendo alta accesibilidad y resolución a nivel celular. Este protocolo de disección permite la preparación reproducible de la NMJ para aplicaciones posteriores, como imágenes, inmunohistoquímica y electrofisiología, apoyando la validación de objetivos y la reducción de riesgos mecanicistas en las fases iniciales del descubrimiento. Al proporcionar un método estandarizado para aislar y visualizar estructuras sinápticas, la técnica mejora la confianza predictiva en la evaluación de objetivos neurobiológicos y la clarificación de vías.
El flujo de trabajo de disección se integra en las primeras etapas del descubrimiento al permitir la comprobación de hipótesis, avanza hacia la identificación de compuestos activos mediante fenotipos sinápticos cuantificables y apoya la validación preclínica mediante cribado fenotípico relevante para la enfermedad.