Cribado de modificaciones genómicas: un método para identificar mutantes generados por CRISPR en Drosophila

0 views • 3:48 min • April 30th, 2023

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- Cuando los embriones inyectados se convierten en adultos G0, se cruzan todas las moscas individuales con existencias de equilibrio adecuadas para ampliar las posibles líneas editadas con F1 CRISPR y poder rastrear la herencia de la modificación genómica. A continuación, se cruzan machos solteros F1 elegidos al azar con hembras equilibradoras adecuadas para poder recuperar la descendencia si un macho F1 es positivo para la mutación. Una vez que se haya tomado el cruce, transfiera el macho F1 a un tubo para su detección.

Para extraer el ADN genómico, aplaste la mosca con una punta de pipeta que contenga tampón de extracción. Una vez que el tejido se descompone, expulse el líquido. El tampón de extracción contiene proteinasa K, una enzima que digiere las proteínas de la muestra y se inactiva a altas temperaturas.

Ahora que el ADN es accesible, proceda a la detección por PCR. Por ejemplo, utilice cebadores diseñados para amplificar una región que incluya la nueva secuencia. Solo en presencia de la modificación se unirá el segundo cebador y se amplificará un producto de PCR. En el ejemplo, veremos moscas criadas y examinadas por PCR para la inserción de una secuencia de transactivación que reemplace el primer exón del gen sin ramas.

- Cuando los embriones nos-Cas9 previamente inyectados con el plásmido de expresión de ARN guía y el donante de reemplazo se convierten en adultos, cruza las moscas G0 individualmente con moscas balanceadoras de una línea apropiada para el alelo objetivo. Anestesiar a las crías F1 de cada cruzamiento G0 en una almohadilla de dióxido de carbono y elegir al azar de 10 a 20 machos bajo un microscopio estereoscópico. Cruce individualmente cada macho seleccionado con una hembra equilibradora de una línea apropiada para el alelo objetivo.

Cuando las larvas F2 eclosionen, elige el padre F1 de cada cruz. Extraiga el ADN genómico aplastando cada mosca durante 10 a 15 segundos con una punta de pipeta que contenga 50 microlitros de tampón de aplastamiento sin dispensar el tampón. A continuación, dispense el tampón restante en el tubo y mezcle bien.

Incubar a 37 grados centígrados durante 20 a 30 minutos. Después de la incubación, coloque los tubos en un bloque de calor a 95 grados centígrados durante 1 a 2 minutos para inactivar la proteinasa K. Después de centrifugar durante 5 minutos a 10.000 veces g, almacene la preparación a 4 grados centígrados para un análisis posterior por PCR.

Realice cribados basados en PCR de tres pasos utilizando los cebadores forward 1 y reverse 1 para detectar la existencia de la inserción o el reemplazo. Realice la PCR utilizando cebadores directos 2 e inversos 2 para verificar la inserción o el reemplazo de tres regiones principales. Realice la PCR con los cebadores M13F y la inversa 3 para comprobar los extremos del HDR.

- Mantener las líneas de mosca con el HDR de finales confirmados y establecer stocks de equilibrio de la generación F2. Al cruzar, el equilibrador vuela de nuevo para eliminar cualquier mutación no deseada en otros cromosomas.

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Last updated: 18 July 2026