Preparación de ovocitos fijos de Drosophila para inmunotinción: un método de alto rendimiento para fijar y eliminar la membrana externa

0 vistas4:39 min • April 30th, 2023

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- Comience pulsando Drosophila anestesiada junto con tampón en una licuadora para romper las moscas en pedazos pequeños. Filtre la mezcla a través de una malla para eliminar las partes grandes del cuerpo. Luego, deje que los huevos se hundan mientras los fragmentos más grandes permanecen en la superficie y se pueden eliminar.

Repita este proceso usando una malla más pequeña para eliminar los desechos adicionales. Recoja los óvulos en un frasco y, si los óvulos se van a tratar con un medicamento, hágalo en este punto. A continuación, retire el líquido y reemplácelo con fijador. Agregue heptano para ayudar a que el fijador penetre en la membrana que rodea el huevo.

Luego, lave el fijador con PBS. Para teñir los ovocitos, retire las membranas externas protectoras para permitir la penetración de los anticuerpos. Pipetea los ovocitos en la parte esmerilada de un portaobjetos de vidrio. Coloque un cubreobjetos sobre los huevos y gírelo suavemente con un movimiento de adelante y hacia atrás para separar mecánicamente el corion y la membrana vitelina del huevo. Los ovocitos ya están listos para ser teñidos.

En el protocolo de ejemplo, prepararemos ovocitos en meiosis I para teñir y visualizar el aparato fusiforme.

- Para empezar, precorta el interior de un tubo de 5 mililitros y pipeta Pasteur con PTB para evitar que los ovocitos se peguen a las superficies. Agregue 100 mililitros de tampón de Rob a una licuadora y luego agregue de 100 a 300 moscas anestesiadas y pulse tres veces durante un segundo.

Filtre la suspensión resultante en un vaso de precipitados de 250 mililitros a través de una malla grande con poros de alrededor de 1500 micrómetros. Deje que el filtrado se asiente durante unos dos minutos y luego aspire la capa superior, eliminando tantas partes grandes del cuerpo como sea posible. Filtre la suspensión nuevamente en un vaso de precipitados de 250 mililitros a través de una malla más pequeña con un tamaño de poro de 300 micrómetros.

Enjuague el primer vaso de precipitados con tampón adicional en la pipeta recubierta para recoger los ovocitos restantes. Deje que la lechada se asiente durante tres minutos y luego aspire todos menos los 10 mililitros inferiores. Vierta la mayor cantidad posible de 10 mililitros en el tubo de 5 mililitros recubierto. Deje que la lechada se asiente durante unos dos minutos y luego retire con cuidado el líquido.

Agregue el resto de los 10 mililitros de lechada y deje que la mezcla se asiente nuevamente antes de eliminar el líquido. Enjuague los ovocitos restantes del vaso de precipitados con un tampón adicional en la pipeta recubierta. Deje que el enjuague se asiente en el tubo de 5 mililitros durante tres a cinco minutos.

Para arreglar los ovarios, primero, aspire todo el líquido de los tejidos e inmediatamente agregue 1 mililitro de mezcla fija. Coloque los pañuelos en un nutator durante dos minutos y medio. A continuación, agregue 1 mililitro de heptano, agite el tubo durante un minuto y luego deje que los ovocitos se asienten durante un minuto más.

Retire todo el líquido del pañuelo sedimentado, luego agregue 1 mililitro de 1x PBS. Agite el tubo durante 30 segundos y luego deje que los ovocitos se asienten durante un minuto. Después de eso, retire todo el líquido del tubo y llénelo con cinco mililitros de 1x PBS.

Con la pipeta recubierta, agregue aproximadamente de 500 a 1,000 ovocitos a un portaobjetos de vidrio esmerilado. Retire cualquier parte o material extraño del cuerpo con pinzas. Coloque un cubreobjetos en la parte superior del tejido y enrolle suavemente los ovocitos hasta que se eliminen todas las membranas. Arrastrar el borde del cubreobjetos a través de los ovocitos funciona bien. Verifique el progreso de la extracción de la membrana bajo un microscopio periódicamente. Demasiada presión destruirá los ovocitos.

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Última actualización: 22 agosto 2026