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Una sola célula madre de cáncer de mama da lugar a un grupo de células llamado mamosfera primaria. Para obtenerlas, primero se cultiva una línea celular de cáncer de mama hasta que confluya entre un 70% y un 80%, para asegurarse de que las células están en su fase de crecimiento. Añadir Tripsin-EDTA para separar las células del matraz, y añadir un medio con suero para detener la acción de Tripsin.
Ahora, tome las células en un tubo y centrifugue para obtener el pellet de celda. Vuelva a suspender el pellet en el medio de mamosfera sin suero y pase la suspensión a través de un filtro de tapa de filtro de celdas, para obtener una suspensión de una sola célula. Esta suspensión consta de células madre, células progenitoras y células diferenciadas que muestran diferentes expresiones de proteínas.
CD44 y CD24 son proteínas de la superficie celular características de las células madre del cáncer de mama. Son positivos para la expresión de CD44 y negativos para CD24. Aísle las células de la suspensión celular mediante fluorescencia o clasificación de células activadas magnéticamente. A continuación, tome una alícuota y una tinción de azul de tripán en las celdas, y calcule el número de células viables por mililitro utilizando un portaobjetos de hemocitómetro para encontrar la densidad de siembra.
Finalmente, siembre las células en una placa de adherencia ultra baja de seis pocillos, de modo que las células permanezcan suspendidas. Incubar la placa durante 5 a 10 días sin alterar la placa hasta que las esferas tengan 40 micras de diámetro. En el siguiente protocolo, generaremos mamósferas primarias a partir de una línea celular de cáncer de mama.
- Trabajando bajo una cubierta de cultivo estéril, comience este procedimiento con células MCF7 o MDA-MB-231 que tengan una confluente del 70 % al 80 %. Aspire el medio del matraz. Lave las células dos veces con PBS, luego agregue Tripsin-EDTA e incube durante dos a seis minutos. Después del desprendimiento, apague agregando medio de mamosfera que contenga un 10% de FBS.
Una vez que las células se hayan desprendido, transfiéralas a un tubo de centrífuga cónico de 15 mililitros y hágalo girar 200 veces g a temperatura ambiente durante cinco minutos. Después de esta centrifugación, decanta el sobrenadante, luego resuspende las células en uno a cinco mililitros de medio mamosofal. Pipetea hacia arriba y hacia abajo 10 veces para romper el pellet de la célula.
A continuación, transfiera la suspensión celular a un filtro de tapa de colado de celdas de 40 micras y recoja el flujo a través del tubo adjunto para obtener una suspensión de una sola celda. Pipetear una alícuota de 20 microlitros de las células resuspendidas en un hemocitómetro y utilizar un microscopio para examinarla. Si se observan grupos de células como se ven aquí, use una jeringa para pasar la suspensión dentro y fuera de una aguja de calibre 25 una o dos veces.
Una vez que las células se han dispersado en una sola suspensión celular como se muestra aquí, proceda a aislar los subconjuntos celulares CD44 positivos y CD24 negativos mediante clasificación de células activadas por fluorescencia o clasificación de células activadas magnéticamente utilizando la columna LS para seleccionar positivamente las células CD44 positivas. Dado que las celdas deseadas se adhieren a las paredes de la columna LS, deseche el flujo, luego retire las celdas de la columna, aplique cinco mililitros de tampón y aplique y presione el émbolo suministrado con la columna para eliminar las celdas deseadas.
A continuación, utilice una columna LD para purificar aún más la población mediante la selección negativa. Aquí, las celdas positivas CD24 se unen a las columnas LD. Recoja el flujo que contiene las células negativas CD24. A continuación, mediante citometría de flujo se confirman los fenotipos de todas las células aisladas. Usando el método de exclusión de azul de tripano, calcule la densidad de células viables.
Después de diluir adecuadamente la suspensión celular, siembre cada pocillo de una placa de fijación ultrabaja de seis pocillos con 500 a 4,000 células por centímetro cuadrado en 2 mililitros de medio de mamosfera completo. Incubar las placas teniendo cuidado de no tocarlas durante 5 a 10 días hasta que se observen las esferas. Continúe cultivando hasta que las esferas tengan al menos 40 micras de diámetro, pero aún no hayan comenzado a volverse apoptóticas.