Cultivo tridimensional de células de carcinoma de pulmón: un método para estudiar las interacciones célula-matriz

0 vistas4:45 min • April 30th, 2023

- Primero, descongele los viales de la matriz de membrana basal a 4 grados centígrados durante la noche. La matriz de la membrana basal está formada por proteínas presentes en el microambiente tumoral que ayudan a mantener las características de las células cancerosas in vitro. Al día siguiente, coloque el vial de la matriz de la membrana basal en hielo para retener la matriz en estado líquido. Lleve las células de cáncer de pulmón a un tubo de centrífuga preenfriado y centrifugue a 4 grados centígrados. Aspire el sobrenadante y golpee suavemente para desalojar el pellet y colocarlo sobre hielo. A continuación, agregue un volumen apropiado de mezcla de membrana basal en este tubo y mezcle para hacer una suspensión celular uniforme. Realice todos los pasos a baja temperatura para evitar que la membrana basal se gelifique.

Transfiera un volumen apropiado de suspensión de matriz celular al centro de cada pocillo en una placa de pocillo preenfriada, cubriendo todo el pocillo. Incubar la placa del pocillo para que la matriz se solidifique. Examine bajo un microscopio para asegurar una distribución uniforme de las células dentro de la matriz. Agregue medio completo de cultivo 3D en cada pocillo e incube a 37 grados centígrados. Este medio facilita las interacciones de la matriz celular. Así, las células forman organoides con estructuras similares a las acinarias. En el siguiente protocolo, realizaremos el cultivo 3D de células de carcinoma de pulmón TUM622.

Para comenzar, descongele los viales de la matriz de membrana basal en un refrigerador de 4 grados centígrados durante la noche. Enfríe dos pipetas y puntas de plástico de mililitros a menos 20 grados centígrados durante la noche. Al día siguiente, caliente los reactivos utilizados para disociar las células TUM622, el tampón HEPES, la tripsina-EDTA y el tampón de neutralización de tripsina en un baño de agua a 37 grados centígrados. Saque la matriz de membrana basal descongelada del refrigerador y ponga el vial en hielo. Enfríe las placas de cultivo de tejidos en un enfriador de plataforma metálica colocado sobre hielo. Coloque los tubos de centrífuga en una rejilla de enfriamiento de metal sobre hielo. Calcule la cantidad de celdas necesarias, en función del número de pocillos y la concentración de celdas en cada pocillo, que se van a preparar. Transfiera la suspensión de la celda TUM622 a un tubo de centrífuga enfriado y gire a 300 veces g en una centrífuga de cubo colgante a 4 grados centígrados durante cinco minutos.

Con una pipeta de aspiración conectada a una punta sin filtrar, aspire el sobrenadante con cuidado, dejando aproximadamente 100 microlitros del medio en el tubo. Golpee suavemente el costado del tubo para desalojar y asociar el pellet, y luego devuélvalo a la rejilla de enfriamiento. Con las pipetas preenfriadas de dos mililitros, mezcle suavemente la matriz con hielo pipeteando hacia arriba y hacia abajo varias veces. Pipetear a una velocidad uniforme y moderada para que no se introduzcan burbujas en la matriz durante este procedimiento.

Transfiera 1,1 mililitros de la matriz a cada tubo de centrífuga. Con puntas preenfriadas, pipetee la matriz en cada tubo hacia arriba y hacia abajo unas 10 veces para hacer una suspensión celular uniforme. Transfiera 310 microlitros de la suspensión de la matriz celular a cada pocillo de una placa preenfriada de 24 pocillos. Coloque la pipeta en un ángulo de 90 grados con respecto a la superficie de la placa y agregue la suspensión al centro del pocillo. La suspensión se extiende y cubre todo el pozo. Para facilitar el análisis de inmunofluorescencia posterior, transfiera 60 microlitros de suspensión de matriz celular al centro del pocillo de un portaobjetos de cámara de 2 pocillos. Esto permite que la matriz forme una estructura en forma de cúpula con un volumen mucho menor.

Regrese la placa y la cámara, deslícela nuevamente a la incubadora de cultivo de tejidos e incube durante 30 minutos para permitir que la matriz se solidifique. Después de eso, examine la placa y deslícela bajo un microscopio óptico para asegurarse de que las células individuales se distribuyan uniformemente dentro de la matriz. Agregue 1 mililitro de medio completo de cultivo 3D precalentado en cada pocillo de la placa y 1,5 mililitros de medio de cultivo 3D en cada pocillo del portaobjetos de la cámara. Luego devuélvalos a la incubadora.

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Última actualización: 29 agosto 2026