Análisis del ciclo celular: un enfoque para estudiar la regulación del ciclo celular de las células de cáncer de pulmón transfectadas con miARN

0 vistas3:34 min • April 30th, 2023

- Un microARN o miARN es un ARN pequeño no codificante. Después de la transfección o introducción de ARNm en una célula, forma un complejo de proteínas de miARN. El complejo se dirige y se une a ARNm específico y regula negativamente su expresión, deteniendo la progresión del ciclo celular.

Para comenzar el análisis, agregue un fijador deshidratante adecuado a un cultivo recolectado de células de cáncer de pulmón transfectadas con miARN. El fijador preserva las células y también permeabiliza la membrana celular. Trata las células con una mezcla de yoduro de propidio, un colorante de ácido nucleico fluorescente y la enzima ribonucleasa.

El tinte entra en las células y tiñe tanto el ADN como el ARN. Las enzimas degradan específicamente el ARN, lo que permite una cuantificación óptima del ADN. Utilice un citómetro de flujo para determinar la proporción de células detenidas en diferentes fases del ciclo celular en función de la intensidad de fluorescencia de las células individuales.

Las células en las fases de reposo y crecimiento tienen un menor contenido de ADN y, por lo tanto, una menor intensidad de fluorescencia. Las células en la fase Gap 2 con el doble de cantidad de ADN producen el doble de intensidad de fluorescencia. Las células en la fase de síntesis de ADN inducen un valor de fluorescencia entre las otras dos poblaciones. El siguiente protocolo analizará la regulación del ciclo celular de las células de cáncer de pulmón tratadas con miRNA mediante la medición de su contenido de ADN mediante tinción PI y citometría de flujo.

- Transfecte las células como se describe en la sección anterior de este video. Extraiga las células de cada muestra en tubos estériles separados de 15 mililitros por tripsinización. A continuación, lavar las células dos veces con 1X PBS por centrifugación a 751 g durante 5 minutos y luego retirar el sobrenadante. Vuelva a suspender y rompa el pellet agregando 200 microlitros de PBS 1X helado a través del pipeteo.

Agregue 2 mililitros de etanol helado al 70% gota a gota al tubo mientras agita suavemente el tubo para fijar las celdas. Incubar los tubos durante 30 minutos a temperatura ambiente y colocarlos a 4 grados centígrados durante 1 hora. Retire los tubos a 4 grados centígrados y centrifuga.

Agregue 2 mL de PBS helado y vórtice y luego elimine el sobrenadante por centrifugación. Añadir 500 microlitros de PBS 1X que contenga yoduro de propidio y ribonucleasa A con concentraciones de 50 y 200 microgramos por mililitro, respectivamente, en cada muestra e incubar durante 30 minutos a temperatura ambiente. Transfiera las muestras a tubos apropiados que los protejan de la luz y que funcionen con un citómetro de flujo.

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Seguimiento temporal de la progresión del ciclo celular El uso de citometría de flujo sin la necesidad de sincronización

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Última actualización: 22 agosto 2026