Name: Preparación de inmunógeno ratón hipófisis para la inducción de la hipofisitis autoinmune experimental (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2010-12-17T16:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 52 s
Description: Aprende a preparar proteínas de hipófisis de ratón para estudiar la hipofisitis autoinmune mediante homogeneización y centrifugación. Este protocolo permite investigar los mecanismos de la enfermedad.

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Este trabajo fue apoyado por el NIH subvención DK080351 para PC.

Protocolo experimental El primer paso de este protocolo experimental es recoger un gran número de glándulas pituitarias de ratón. El segundo paso consiste en homogeneizar las glándulas para preparar un extracto de proteínas. El tercer paso es para emulsionar estas proteínas con una mezcla de hidrocarburos. Paso 1: Recolección y almacenamiento de ratón glándulas pituitarias La glándula pituitaria del ratón se encuentra en la base del cráneo en una depresión del hueso esfenoides llamada silla turca, rodeada lateralmente por los nervios trigémino y anteriormente por el quiasma óptico. La glándula está compuesta de un lóbulo anterior más grande y más pequeño lóbulo posterior y medio, y pesa un promedio de 1,9 mg. La glándula pituitaria son recogidos de los ratones de cepas mixta, sexos, edades, y destinado a ser sacrificado por el centro de atención animal. Para aislar la glándula pituitaria, el ratón es la eutanasia, la piel sobre el cráneo disecado, y el hueso del cráneo a cielo abierto con unas tijeras. El cerebro se levanta para exponer la glándula pituitaria, la cual es entonces aislado de los alrededores de la duramadre, recogió del hueso esfenoides y se almacena en un tubo de plástico con hielo seco. En general, se utilizan 300 glándulas pituitaria del ratón para la preparación de una proteína, un número que puede ser recogido por una persona en 9 horas. Una vez que la colección se completa, el tubo que contiene las glándulas pituitarias se almacenan a -80 ° C hasta que esté listo para el siguiente paso. Paso 2. La extracción de las proteínas del ratón pituitaria <ol><li> Añadir el tampón de homogeneización a un tubo Falcon de 15 ml (catálogo no 352.059), mantenidos en un baño de hielo, con 250 l de tampón por cada 100 glándulas pituitarias recogidos. Utilice un tampón de fuerza iónica similar a la que es fisiológicamente el interior del citoplasma de la célula (0,2 M) y de pH fisiológico (7,4). Usamos tampón fosfato salino (0,161 M, pH 7,4), complementado con un cóctel de inhibidores de la proteasa (Sigma-Aldrich, el catálogo no P8340-1 ml). </li><li> Añadir la glándula pituitaria en el búfer antes de la homogeneización, y luego colocar el generador (5 mm de diámetro) de la homogeneizador Polytron en la parte inferior del tubo Falcon. Homogeneizar a máximas rpm durante 30 segundos, moviendo suavemente el tubo Falcon arriba y hacia abajo mientras lo mantiene en el baño de hielo. Luego, el resto del homogeneizado en hielo durante 1 min. Repita la homogeneización y refrigeración pasos dos veces más. Esta homogeneización suave debe romper las células y liberar las proteínas citosólicas sin interrumpir los núcleos. </li><li> Para eliminar los núcleos, el tejido roto y materiales insolubles (por ejemplo, tejido conectivo y los complejos de proteínas desnaturalizadas), se centrifuga el homogeneizado a baja velocidad (1000 g) durante 10 min a 4 ° C. </li><li> Transferir el sobrenadante (que ahora se llama post-nuclear sobrenadante, PNS) a un nuevo tubo Falcon, teniendo cuidado de dejar la bolita sin tocar, y almacenar el SNP en el hielo. </li><li> Resuspender el precipitado en el volumen original de tampón de homogeneización (250 l de tampón por cada 100 glándulas pituitarias recogidos), homogeneizar el anterior, se centrifuga como antes, y luego combinar el SNP segundo con el primero. </li><li> Alícuota de los dos combinados PNS muestras en tubos de microcentrífuga y se almacena a -80 ° C hasta que esté listo para el siguiente paso. Esta preparación de proteínas puede ser almacenado a -80 ° C, pero poco a poco pierde su potencia, lo que se recomienda para utilizar antes de 6 meses a partir de la preparación. Use una pequeña alícuota para determinar el rendimiento de proteína y la concentración por el ensayo BCA (Pierce catálogo no. 23.225), y la calidad de las proteínas por electroforesis en gel. En general, se obtienen alrededor de 60 mg de proteína de 300 hipófisis de ratón en 1,5 ml de tampón de homogeneización, a una concentración de alrededor de 40 mg / ml. </li></ol> Paso 3. Preparación de la emulsión para la inmunización <ol><li> Descongele rápidamente las alícuotas congeladas proteína necesaria para el experimento y ajustar la concentración de proteínas y 20 mg / ml. Este extracto de proteínas se emulsiona 1:1 con adyuvante completo de Freund (CFA, Sigma F-5881) que contiene 5 mg / mL de calor mató a Mycobacterium tuberculosis (Becton Dickinson, 231 141). Cada ratón recibirá 1 mg de extracto de pituitaria en 100 L de la emulsión. </li><li> El ejemplo anterior es para inmunizar a 10 ratones, en la que cada ratón inyectado con 100 L de la emulsión que contiene 1 mg de proteínas de la hipófisis. Permitir que dos ratones más por la pérdida de material durante la preparación, a fin de utilizar 12 mg de proteínas de la hipófisis. Aspire 600 l de los 20 mg / ml de extracto de proteína de la pituitaria anterior describe con una jeringa de 2,5 ml Hamilton gas. Resuspender el Comité de Libertad Sindical por agitación, y aspiran 600 l de CFA en otra jeringa de 2,5 ml Hamilton. Adjuntar y asegurar una de calibre 22 micro-emulsión aguja en la jeringa llena de CFA. Empuje lentamente el émbolo de la jeringa CFA de tal manera que la aguja está lleno de CFA, a continuación, colocar y fijar el otro extremo de lala aguja de la jeringa llena con extracto de pituitaria. </li><li> Avanzar lentamente el émbolo de la jeringa CFA para impulsar el componente de aceite en el extracto acuoso pituitaria, de tal manera que sólo una pequeña cantidad se mezcla. A continuación, empuje el émbolo de la jeringa extracto de pituitaria en la jeringa CFA. Repita esta acción aumentando gradualmente la cantidad de material mezclado. Continúe hasta que todo el contenido de las dos jeringas se mezclan. Usted obtendrá una solución blanquecina y uniformemente distribuida que representa la emulsión de agua en aceite. </li><li> Una vez que la emulsión se forma, repita el movimiento hacia adelante y hacia atrás por lo menos 500 veces para asegurarse de que la emulsión se mezcla bien. Después de que el ciclo de mezclado final, la 1:01 de agua en emulsión de aceite está listo para usar y contiene una concentración de proteína pituitaria de 10 mg / ml. La emulsión se inyectó el mismo día por vía subcutánea en ratones anestesiados SJL, como se detalla en el artículo JoVe compañero. </li></ol>

<ol><li>Caturegli, P., Newschaffer, C., Olivi, A., Pomper, M. G., Burger, P. C., Rose, N. R. Autoimmune Hypophysitis Endocr Rev. 26, 599-614 (2005).</li>
<li>Blansfield, J. A., Beck, K. E., Tran, K., Yang, J. C., Hughes, M. S., Kammula, U. S., Royal, R. E., Topalian, S. L., Haworth, L. R., Levy, C., Rosenberg, S. A., Sherry, R. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cytotoxic+T-lymphocyte-associated+antigen-4+blockage+can+induce+autoimmune+hypophysitis+in+patients+with+metastatic+melanoma+and+renal+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22J+Immunother%22%5BJournal%5D)">Cytotoxic T-lymphocyte-associated antigen-4 blockage can induce autoimmune hypophysitis in patients with metastatic melanoma and renal cancer.</a> J Immunother. 28, 593-598 (2005).</li>
<li>Tzou, S. C., Lupi, I., Landek, M., Gutenberg, A., Tzou, Y. M., Kimura, H., Pinna, G., Rose, N. R., Caturegli, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Autoimmune+Hypophysitis+of+SJL+mice%3A+Clinical+Insights+from+a+New+Animal+Model%5BTitle%5D)+AND+%22Endocrinology%22%5BJournal%5D)">Autoimmune Hypophysitis of SJL mice: Clinical Insights from a New Animal Model.</a> Endocrinology. 149, 3461-3469 (2008).</li>
<li>Goudie, R. B., Pinkerton, P. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Anterior+hypophysitis+and+Hashimoto%27s+disease+in+a+woman%5BTitle%5D)+AND+%22J+Pathol+Bacteriol%22%5BJournal%5D)">Anterior hypophysitis and Hashimoto's disease in a woman.</a> J Pathol Bacteriol. 83, 584-585 (1962).</li>
<li>Caturegli, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Autoimmune+hypophysitis%3A+an+underestimated+disease+in+search+of+its+autoantigen%28s%29%5BTitle%5D)+AND+%22J+Clin+Endocrinol+Metab%22%5BJournal%5D)">Autoimmune hypophysitis: an underestimated disease in search of its autoantigen(s).</a> J Clin Endocrinol Metab. 92, 2038-2040 (2007).</li>
</ol>

A pesar de que el primer paciente con hipofisitis autoinmune se informó en 1962 4, los autoantígenos patógenos hipófisis aún no se han identificado 5. Los modelos animales pueden ser muy útiles para identificar a estos autoantígenos, ayudar al descubrimiento de biomarcadores que son traducibles al cuidado del paciente. Este artículo ha demostrado un procedimiento sencillo para la preparación de proteínas de la hipófisis en una forma que es adecuada para la inducción de hipofisitis autoinmune en ani...

<table><tbody><tr><td>Tubos Falcon de 15 ml</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Tampón de homogenización</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Solución salina tamponada con fosfato</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Cóctel de inhibidores de proteasas</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Homogeneizador Polytron</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Ensayo BCA</td><td>Pierce, Thermo Scientific</td><td>23225</td><td></td></tr><tr><td>Adyuvante completo de Freund&amp;rsquo;s (CFA)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>F-5881</td><td></td></tr><tr><td>Mycobacterium tuberculosis</td><td>BD Biosciences</td><td>231141</td><td></td></tr><tr><td>Jeringa hermética de 2,5 mL de Hamilton</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Aguja microemulsionante de calibre 22</td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

preparación de inmunógeno ratón hipófisis para la inducción de la hipofisitis autoinmune experimental

Preparation of Mouse Pituitary Immunogen for the Induction of Experimental Autoimmune Hypophysitis

Hipofisitis autoinmune es una inflamación crónica de la glándula pituitaria causado o acompañado por una autoinmunidad. Tradicionalmente se ha considerado una enfermedad rara, pero la información se ha incrementado notablemente en los últimos años. Hipofisitis, de hecho, no es raro desarrolla como un &quot;efecto secundario&quot; en pacientes con cáncer tratados con anticuerpos que bloquean los receptores inhibitorios expresa en los linfocitos T, tales como CTLA-4 2 y los receptores de PD-1. Hipofisitis autoinmune puede ser inducida experimentalmente mediante la inyección de ratones con las proteínas de la hipófisis se mezcla con un adyuvante 3. En este artículo de vídeo que muestra cómo extraer las proteínas de ratón glándulas pituitaria y la forma de prepararlos de forma adecuada para la inducción de hipofisitis autoinmune en ratones SJL.

Hipofisitis autoinmune se puede reproducir en ratones mediante la inyección de un extracto de proteínas de ratón pituitaria.

Preparación de inmunógeno ratón hipófisis para la inducción de la hipofisitis autoinmune experimental

La hipofisitis autoinmune es una inflamación crónica de la glándula pituitaria causada o acompañada por autoinmunidad1. Tradicionalmente se ha considerado una...

La hipofisitis autoinmune se caracteriza por un agrandamiento de la glándula pituitaria y una deficiencia en una o más hormonas hipofisarias. Los autoantígenos causantes permanecen desconocidos. Aquí se demuestra un protocolo para preparar proteínas de la glándula pituitaria de ratón para su uso en el estudio de esta enfermedad.Primero se aíslan las glándulas pituitarias de ratones sacrificados. Luego, las pituitarias se homogenizan para romper mecánicamente las células y liberar las proteínas citosólicas. El homogenato se clarifica mediante centrifugación a baja velocidad y se evalúa su cantidad mediante un ensayo colorimétrico de BCA y su calidad mediante electroforesis en gel de poliacrilamida.Finalmente, el homogenato acuoso de proteínas se mezcla con un adyuvante oleoso. Esta mezcla se inyecta luego en ratones para crear un modelo murino que se asemeja a la hipofisitis autoinmune. Como se muestra en el video complementario, se han descrito cuatro técnicas para inducir hipofisitis en animales experimentales.La técnica presentada en este artículo, que consiste en la inyección de una mezcla de proteínas hipofisarias con adyuvante de gripe, es la más antigua, que data de la década

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Research

Investigación

JoVE Journal

Immunology and Infection

Inmunología e Infección

Este video muestra la forma de inducir hipofisitis autoinmune en ratones SJL y la forma de evaluar su gravedad por la histopatología.

La inducción de la hipofisitis autoinmune experimental en ratones SJL

Este video muestra una técnica de homogeneización eficiente para generar una emulsión adyuvante de antígeno para inducir encefalomielitis autoinmune experimental (EAE) en un modelo murino. La emulsión contiene un autoantígeno, la glicoproteína de oligodendrocitos de mielina (MOG), en la fase acuosa, rodeada por una fase oleosa continua que comprende una bacteria patógena inactivada. La emulsión asegura una liberación sostenida de antígenos para una respuesta inmunitaria prolongada.

Preparación de una emulsión antigénica adyuvante para inducir encefalomielitis autoinmune

El video demuestra la inducción de encefalomielitis autoinmune experimental en un modelo de ratón mediante la inyección de una combinación de glicoproteínas de oligodendrocitos de mielina y Mycobacterium tuberculosis inactivada. El modelo permite a los investigadores estudiar los mecanismos de la enfermedad y probar intervenciones terapéuticas.

Inducción de encefalomielitis autoinmune experimental en un modelo de ratón

En este video, se establece un modelo de ratón de esclerosis múltiple utilizando encefalomielitis autoinmune experimental (EAE). Al ratón se le inyecta una emulsión que contiene un péptido neuronal y un adyuvante, lo que desencadena una respuesta inmunitaria que activa las células T autorreactivas. A esto le sigue una inyección de toxina pertussis (PTX) para aumentar la permeabilidad de la barrera hematoencefálica, lo que permite que las células T autorreactivas se infiltren en el cerebro. Esta...

El trasplante de células madre / progenitoras neuronales (CPN) tiene grandes promesas en neurología regenerativa. La administración sistémica de NPC se ha convertido en el protocolo eficaz, de bajo invasiva, y terapéuticamente muy eficaz para entregar las células madre en el cerebro y la médula espinal de roedores y primates no humanos afectados por daño experimental inflamatoria crónica del sistema nervioso central.

Inyección sistémica de Neuronales células madre / progenitoras en ratones con EAE crónica

En este informe presentamos un protocolo que permite al investigador generar un modelo murino de uveítis intraocular. Más comúnmente conocida como uveítis autoinmune experimental (EAU), este modelo establecido captura muchos aspectos de la enfermedad humana. Aquí, describiremos cómo inducir y monitorear la progresión de la enfermedad utilizando varias lecturas.

Uveítis autoinmune experimental: un modelo de ratón inflamatorio intraocular

El presente protocolo describe la inducción de encefalomielitis autoinmune experimental en un modelo de ratón utilizando glicoproteína oligodendrocitos de mielina y monitoreando el proceso de la enfermedad utilizando un sistema de puntuación clínica. Los síntomas experimentales relacionados con la encefalomielitis autoinmune se analizan mediante análisis de tomografía microcomputarizada de fémur de ratón y prueba de campo abierto para evaluar el proceso de la enfermedad de manera integral.

Inducción y diversos indicadores de evaluación de la encefalomielitis autoinmune experimental

Se han establecido varios tipos de modelos animales de tiroiditis de Hashimoto, al igual que la tiroiditis autoinmune espontánea en el ratón NOD. Los ratones H-2h4 son un modelo simple y confiable para la inducción de HT. Este artículo describe este enfoque y evalúa el proceso patológico para una mejor comprensión del modelo murino SAT.

Generación de un modelo de tiroiditis autoinmune espontánea en ratones

Para inducir la encefalomielitis autoinmune experimental, un modelo animal de esclerosis múltiple, los ratones son inmunizados con una emulsión de agua en aceite que contiene un autoantígeno y un adyuvante completo de Freund. Si bien existen varios protocolos para la preparación de estas emulsiones, aquí se presenta un protocolo de homogeneización rápido, simple y estandarizado para la preparación de emulsiones.

Un método de homogeneización rápido, simple y estandarizado para preparar emulsiones de antígeno/adyuvante para inducir encefalomielitis autoinmune experimental

La encefalomielitis autoinmune experimental es uno de los modelos murinos de esclerosis múltiple más utilizados. En el protocolo actual, los ratones C57BL/6J de ambos sexos son inmunizados con el péptido glicoproteico de los oligodendrocitos de mielina, lo que resulta principalmente en paresia ascendente de la cola y las extremidades. Aquí discutimos el protocolo de inducción y evaluación de EAE.

Modelización de la esclerosis múltiple en los dos sexos: encefalomielitis autoinmune experimental inducida por MOG35-55

Aprende a preparar proteínas de hipófisis de ratón para estudiar la hipofisitis autoinmune mediante homogeneización y centrifugación. Este protocolo permite investigar los mecanismos de la enfermedad.

Preparación de inmunógeno ratón hipófisis para la inducción de la hipofisitis autoinmune experimental

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