Name: Antígeno Específico de la En Vivo Matar ensayo utilizando CFSE células diana marcadas (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2010-11-09T17:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 49 s
Description: Aprende a evaluar la citotoxicidad in vivo de células T CD8+ específicas de antígeno mediante el ensayo de muerte celular con marcaje CFSE en ratones. Este método permite cuantificar la lisis específica mediante citometría de flujo.

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Me gustaría agradecer a Bianca Mothé, Oseroff Carla y Marie-France DelGuercio por haberme introducido en ensayos inmunológicos y el manejo del ratón. Trabajar en el laboratorio de GA Splitter es financiado por el NIH subvención 1-SR1-AI-073558, GLRCE conceder 1-U54-AI-057153, y BARD Estados Unidos-3829-06.

1. Provocando las metas específicas de Efectos CTL mediante la inmunización (día 0) <ol><li> Antes de empezar, decidir sobre un efector específicos: sistema de destino. En este ejemplo de un clásico ensayo in vivo del CTL, vamos a utilizar una vacuna de péptido purificado específico para obtener células T CD8 +. El mismo péptido se utilizará para el pulso de las células diana singénicas, la creación de un efector específicos: sistema de destino. Si lo prefiere, puede optar por utilizar patógeno total o proteínas para obtener su efectores y objetivos específicos. </li><li> Descontaminar la superficie de trabajo en el interior de una campana de bioseguridad para garantizar la esterilidad de las inyecciones. Preparar la vacuna de péptido, en primer lugar la colocación de 50 mg de péptido purificado en 100 l de DMSO al 10% en PBS / ratón en un tubo de 2 ml. A continuación, agregue una cantidad igual de frío adyuvante incompleto de Freund y hasta la marca de 0,2 ml con 1 mm para la mezcla de granos. Desde este punto, mantener inmunógeno en hielo hasta la inyección. Asegure la tapa con Parafilm. </li><li> Use un batidor de cuentas establecido en RPM máximo para mezclar la emulsión durante 3 minutos, inmediatamente la colocación de la emulsión de vuelta en el hielo después de la mezcla. La emulsión resultante debe ser similar en consistencia a la mayonesa. Permita que la emulsión que se siente a 4 ° C durante la noche si el tiempo lo permite (hasta una semana), la mezcla aún más si la separación se nota. </li><li> Use una jeringa de 1 ml y 20 o 20,5 aguja para levantar la emulsión, teniendo cuidado de no tirar las bolas (cuentas debe ser mayor que calibre de la aguja, pero tenga en cuenta). </li><li> Ratón seguro para la inyección subcutánea en la base de la cola. Nosotros usamos un tubo de plástico de 50 ml modificado cónica de manera segura y suave inmovilizar el ratón para inyección. Inyectar el ratón con 0,2 ml de emulsión. </li></ol> 2. Recolección de las células diana (Día 8) <ol><li> Usted tendrá que ingenuo ratones singénicos de las células de su objetivo. La eutanasia a los ratones ingenuo de acuerdo con las normas AAALAC. </li><li> Desinfectar el ratón por aspersión 70% de etanol para reducir al mínimo la posibilidad de contaminación del pelo del ratón u otros contaminantes externos. </li><li> Usando tijeras de disección que cortar pequeños a través de la piel en el lado izquierdo del ratón. Tire de colgajo de piel para descubrir más de saco peritoneal y órganos internos. </li><li> Cortar a través del peritoneo, teniendo cuidado de no comprometer ninguno de los órganos subyacentes. El bazo se encuentra cerca de la superficie y es similar en color al hígado (rojo oscuro), pero más pequeño y más frijol en forma. Los ratones infectados en general, muestran el bazo notablemente mayor que los controles no infectados. </li><li> Retire con cuidado el bazo, teniendo cuidado de ser suave, para no romper el bazo en varias piezas con el fin de recuperar el número máximo de células. Colocar inmediatamente el bazo en una cónica de 15 ml que contienen 10 ml de medio preparado en el hielo. Continuar con los ratones restantes. </li><li> Vierta el contenido del tubo cónico de 15 ml (los medios de comunicación y el bazo) en un triturador de tejidos de vidrio. Triturar el bazo con un montón de fuerza en el brazo superior. Cuando todo el tejido ha perdido su color se puede suponer que se ha recuperado todas las células del tejido conectivo. </li><li> Vierta el contenido del molino a través de un filtro de 70 micras de células en un tubo cónico de 50 ml. Enjuague molino con medio fresco y se vierte a través de un colador de la célula. </li><li> Se centrifuga a 4 ° C, 1300 rpm durante 7 minutos. Elimínese el líquido sobrenadante. </li><li> Resuspender en 10 ml de reactivo de lisis preparado e incubar a 37 º durante 7 minutos. </li><li> Agregue hasta 50 ml con medio fresco y centrifugar, igual que el anterior. </li><li> Resuspender en 50 mL medios de comunicación fresca y centrifugar, igual que el anterior (paso de lavado). * Nota: En este momento se puede realizar una separación de células magnético para un tipo específico de célula (es decir, los macrófagos), si una población de células diana puro se desea para su transferencia a los ratones receptores. Además, en este momento usted podría introducir un tratamiento experimental en la cultura con el fin de estudiar los efectos de que el tratamiento de matar a células específicas. </li><li> Recuento de células y la placa de 1 x 10 7 por pocillo en 100μL de una placa de 96 cultivos de fondo y todo el tejido tratado. * Esta es una alta concentración de células / bien, pero debido a que el ensayo es una labor más rápida, no hemos visto la pérdida de la viabilidad de las células en esta concentración. </li></ol> 3. Tratamiento y etiquetado de las células diana <ol><li> Células pulso adecuado y se replica con el péptido patógeno específico o de control de péptido irrelevante: Añadir 1 mg / ml de péptido. Incubar a 4 ° C durante 1,5 horas. Mover a 37 ° C incubadora para los últimos 30 minutos. Durante este tiempo, preparar reactivos CFSE. </li><li> Prepare CFSE de acuerdo con las especificaciones del fabricante y se diluye a una concentración de trabajo entre 0,5 y 25 micras. Hacer "bajo" la concentración 10 veces menor que la CFSE "alto" de concentración. Por ejemplo, para el [bajo] añadir 0,5 l CFSE a 10 ml de PBS y de [alto], añadir 5 CFSE l de 10 ml de PBS. CFSE calientes preparadas a 37 ° C antes de su etiquetado. </li><li> Retire la placa de las células de la incubadora y el pEllet en una centrífuga de alta velocidad a temperatura ambiente, 1300 rpm durante 7 minutos. Flick para eliminar el sobrenadante. </li><li> Resuspender las células en cualquiera de [baja] o [alto] CFSE añadiendo 200 l de reactivo apropiado para los pozos correspondientes y se incuba durante 15 minutos a 37 ° C. </li><li> Retire la placa de las células de la incubadora y el pellet de nuevo a temperatura ambiente, 1300 rpm durante 7 minutos. Flick para eliminar el sobrenadante. </li><li> Resuspender las células en 200 l / pocillo de medio fresco calentado y se incuba durante 30 minutos a 37 ° C. </li><li> Retire la placa de las células de la incubadora y el pellet a temperatura ambiente, 1300 rpm durante 7 minutos. Flick para eliminar el sobrenadante. </li><li> Resuspender las células en 100 l / pocillo de PBS. </li><li> Para la transferencia adoptiva, añadir un bien [bajo] las células marcadas con un bien [alto] etiquetados células por ratón. Resultante de la inyección debe ser de 50% los objetivos específicos y 50% de células en 0,2 mL irrelevante. </li><li> No te olvides de dejar de lado algunas células marcadas para actuar como su control no transferidos durante el análisis de datos y para el funcionamiento del citómetro de flujo (ver Figura 1). </li></ol> 4. La transferencia adoptiva <ol><li> Anestesiar a los ratones inmunizados previamente péptido (Del part # 1 del presente Protocolo), de acuerdo a las normas de AAALAC. </li><li> Inyectar 0,2 mL de las células diana a través de la etiqueta retro-orbital ruta en los ratones receptores. </li><li> Esperar 6 horas o tiempo predeterminado óptima antes de la eutanasia a los ratones receptores. </li></ol> 5. La cosecha células marcadas * Nota: Los pasos 5.1 a 5.11 son los mismos que los pasos 2.1 a 2.11 <ol start="12"><li> Recuento de células y la placa a la 1 x 10 6 por pozo en 100 L de 96 cultivos de fondo y el tejido alrededor de la placa tratada. </li><li> Fijar las células recuperadas y no transferidos por la adición de 100 l de paraformaldehído al 2% a una concentración final de 1% de paraformaldehído a todos los pocillos. </li></ol> 6. Citometría de flujo y análisis de datos <ol><li> Corra las muestras en un citómetro de flujo y análisis de los datos. </li></ol> 7. Resultados representante Un pico de la disminución de epítopo específico en el histograma resultante es un indicador de la muerte de las células específicas (Figura 1). Use las siguientes ecuaciones (aplicado en la Tabla 1) para determinar el valor real de la lisis de células específicas: Ratio = Porcentaje irrelevante: Porcentaje epítopo específico (pico [bajo]: [alto] pico), Porcentaje específico de lisis = [1 - (para no transferir el control de relación / proporción Experimental)] x 100 <img src="/files/ftp_upload/2250/2250fig1.jpg" alt="Figura 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 1"> Figura 1. CFSE perfil de los números de recuperar BALB / c esplenocitos de ratón. Indican el porcentaje de células del fenotipo CFSE alto o bajo. A) no transfirió el control. Todos los [altos] CFSE picos representan epítopo células diana específicas, mientras que [bajo] CFSE picos representan los objetivos de pulso con el péptido irrelevante. B) Las células CFSE etiquetados recuperado de ratón PBS receptor inmunizado (control). C) Las células CFSE etiqueta se recuperó de dos ratones diferentes péptidos destinatario específico, tenga en cuenta los picos de epítopo específico disminuido. <img src="/files/ftp_upload/2250/2250fig2.jpg" alt="Figura 2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 2"> Figura 2. Representación gráfica de los datos analizados. Tres puntos de datos se muestra para cada grupo de ratones, PBS, péptido A, y B. Péptidos <table border="1"><tbody><tr><td> Muestra </td><td> Epítopo CFSE% Pulsada de Alto </td><td> CFSE irrelevante% BAJA </td><td> Low Ratio: Alto </td><td> Matar por ciento epítopo específico </td></tr><tr><td> PBS </td><td> 42.8 </td><td> 57.2 </td><td> 1.34 </td><td> 16.97 </td></tr><tr><td> PBS </td><td> 43.1 </td><td> 56.9 </td><td> 1.32 </td><td> 15.94 </td></tr><tr><td> PBS </td><td> 44.3 </td><td> 55.7 </td><td> 1.26 </td><td> 11.74 </td></tr><tr><td> Un péptido </td><td> 39.7 </td><td> 60.3 </td><td> 1.52 </td><td> 32.56 </td></tr><tr><td> Un péptido </td><td> 38.6 </td><td> 61.4 </td><td> 1.59 </td><td> 35.61 </td></tr><tr><td> Un péptido </td><td> 40.6 </td><td> 59.4 </td><td> 1.46 </td><td> 29.99 </td></tr><tr><td> Péptido B </td><td> 38.7 </td><td> 61.3 </td><td> 1.58 </td><td> 24.68 </td></tr><tr><td> Péptido B </td><td> 38.5 </td><td> 61.5 </td><td> 1.60 </td><td> 25.32 </td></tr><tr><td> Péptido B </td><td> 39.3 </td><td> 60.7 </td><td> 1.54 </td><td> 22.76 </td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> PBS NT de control </td><td> 47.4 </td><td> 52.6 </td> 1.11 <td></td></tr><tr><td> Pep Un control de NT </td><td> 49.4 </td><td> 50.6 </td><td> 1.02 </td><td></td></tr><tr><td> Pep B NT de control </td><td> 45.6 </td><td> 54.4 </td><td> 1.19 </td><td></td></tr></tbody></table> Tabla 1. El análisis de datos representativos. "NT" no es transferido.

<ol><li>Blattman, J. N., Wherry, E. J., Ha, S. J., van der Most, R. G., Ahmed, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Impact+of+epitope+escape+on+PD-1+expression+and+CD8+T-cell+exhaustion+during+chronic+infection%5BTitle%5D)+AND+%22J+Virol%22%5BJournal%5D)">Impact of epitope escape on PD-1 expression and CD8 T-cell exhaustion during chronic infection.</a> J Virol. 83 (9), 4386-4394 (2009).</li>
<li>Jenkins, M. R., Tsun, A., Stinchcombe, J. C., Griffiths, G. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+strength+of+T+cell+receptor+signal+controls+the+polarization+of+cytotoxic+machinery+to+the+immunological+synapse%5BTitle%5D)+AND+%22Immunity%22%5BJournal%5D)">The strength of T cell receptor signal controls the polarization of cytotoxic machinery to the immunological synapse.</a> Immunity. 31 (4), 621-631 (2009).</li>
<li>Ingulli, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tracing+tolerance+and+immunity+in+vivo+by+CFSE-labeling+of+administered+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol+Biol%22%5BJournal%5D)">Tracing tolerance and immunity in vivo by CFSE-labeling of administered cells.</a> Methods Mol Biol. 380, 365-376 (2007).</li>
<li>Durward, M. A., Harms, J., Magnani, D. M., Eskra, L., Splitter, G. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Discordant+Brucella+melitensis+antigens+yield+cognate+CD8%2B+T+cells+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22Infect+Immun%22%5BJournal%5D)">Discordant Brucella melitensis antigens yield cognate CD8+ T cells in vivo.</a> Infect Immun. 78 (1), 168-176 (2010).</li>
<li>Lyons, A. B., Parish, C. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Determination+of+lymphocyte+division+by+flow+cytometry%5BTitle%5D)+AND+%22J+Immunol+Methods%22%5BJournal%5D)">Determination of lymphocyte division by flow cytometry.</a> J Immunol Methods. 171 (1), 131-137 (1994).</li>
<li>Weston, S. A., Parish, C. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((New+fluorescent+dyes+for+lymphocyte+migration+studies.+Analysis+by+flow+cytometry+and+fluorescence+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22J+Immunol+Methods%22%5BJournal%5D)">New fluorescent dyes for lymphocyte migration studies. Analysis by flow cytometry and fluorescence microscopy.</a> J Immunol Methods. 133 (1), 87-97 (1990).</li>
<li>Akondy, R. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+yellow+fever+virus+vaccine+induces+a+broad+and+polyfunctional+human+memory+CD8%2B+T+cell+response%5BTitle%5D)+AND+%22J+Immunol%22%5BJournal%5D)">The yellow fever virus vaccine induces a broad and polyfunctional human memory CD8+ T cell response.</a> J Immunol. 183 (12), 7919-7930 (2009).</li>
<li>Wallace, P. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tracking+antigen-driven+responses+by+flow+cytometry%3A+monitoring+proliferation+by+dye+dilution%5BTitle%5D)+AND+%22Cytometry+A%22%5BJournal%5D)">Tracking antigen-driven responses by flow cytometry: monitoring proliferation by dye dilution.</a> Cytometry A. 73 (11), 1019-1034 (2008).</li>
<li>Labadi, A., Balogh, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differential+preferences+in+serosal+homing+and+distribution+of+peritoneal+B-cell+subsets+revealed+by+in+situ+CFSE+labeling%5BTitle%5D)+AND+%22Int+Immunol%22%5BJournal%5D)">Differential preferences in serosal homing and distribution of peritoneal B-cell subsets revealed by in situ CFSE labeling.</a> Int Immunol. 21 (9), 1047-1056 (2009).</li>
<li>Suffner, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dendritic+cells+support+homeostatic+expansion+of+Foxp3%2B+regulatory+T+cells+in+Foxp3.LuciDTR+mice%5BTitle%5D)+AND+%22J+Immunol%22%5BJournal%5D)">Dendritic cells support homeostatic expansion of Foxp3+ regulatory T cells in Foxp3.LuciDTR mice.</a> J Immunol. 184 (4), 1810-1820 Forthcoming.</li>
</ol>

No hay conflictos de interés declarado. Los experimentos con animales se realizaron de acuerdo con las directrices y normas establecidas por el Comité Institucional y el empleo Comisión (IACUC) de la Universidad de Wisconsin-Madison.

Este ensayo puede ser modificado para investigar la capacidad proliferativa de las células, incluyendo la expansión clonal, porque CFSE relativamente divide en partes iguales entre la progenie 10,11. También es posible utilizar el etiquetado CFSE para investigar la migración de células 6,12, aunque hay otra célula de seguimiento métodos que pueden ser más apropiados en función de su hipótesis, por ejemplo, tetrámeros y bioluminiscencia 13, que también se puede combinar con el etiquetado ...

<table><tbody><tr><td>perlas de vidrio de 1 mm</td><td>Biospec Products</td><td>11079110</td><td></td></tr><tr><td>70 &amp;mu;filtro de células tipo m</td><td>BD Biosciences</td><td>352350</td><td></td></tr><tr><td>placa de 96 pocillos</td><td>Costar</td><td>3799</td><td></td></tr><tr><td>Adjulite Incompleto de Freund&amp;rsquo;s Adyuvante</td><td>Pacific Immunology</td><td>n/a</td><td></td></tr><tr><td>DMSO</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D-5879</td><td></td></tr><tr><td>SFB</td><td>GIBCO, por Life Technologies</td><td>16000-077</td><td></td></tr><tr><td>Citómetro de flujo FC 500</td><td>Beckman Coulter Inc.</td><td>n/a</td><td></td></tr><tr><td>Molinillo de tejidos de vidrio Kontes</td><td>Kontes Corp</td><td>885300-0015</td><td></td></tr><tr><td>Mini Beadbeater</td><td>Biospec Products</td><td>n/a</td><td></td></tr><tr><td>Aguja</td><td>BD Biosciences</td><td>305175</td><td></td></tr><tr><td>Parafilm &quot;M&quot;</td><td>Pechiney Plastic Packaging</td><td>PM992</td><td></td></tr><tr><td>Paraformaldehído</td><td>Electron Microscopy Sciences</td><td>157-8</td><td></td></tr><tr><td>PBS</td><td>GIBCO, de Life Technologies</td><td>10010-023</td><td></td></tr><tr><td>Reactivo de lisis PharmLyse</td><td>BD Biosciences</td><td>555899</td><td></td></tr><tr><td>RPMI 1640</td><td>GIBCO, de Life Technologies</td><td>11875-093</td><td></td></tr><tr><td>Jeringa</td><td>BD Biosciences</td><td>309602</td><td></td></tr><tr><td>Kit Vybrant CFSE</td><td>Invitrogen</td><td>V12883</td><td></td></tr></tbody></table>

antígeno específico de la en vivo matar ensayo utilizando cfse células diana marcadas

Antigen Specific In Vivo Killing Assay using CFSE Labeled Target Cells

Diacetato de carboxifluoresceína succinimidil ester (CFSE) puede ser utilizada para etiquetar con facilidad y rapidez una población celular de interés para la investigación en vivo. Este etiquetado tradicionalmente se ha utilizado para estudiar la proliferación y migración. En el método que aquí se presenta, hemos acortado la línea de tiempo después de la transferencia adoptiva de mirar la supervivencia y la muerte de las células CFSE epítopo específico etiqueta meta 6.4. El nivel de muerte específicas de un clon de células T CD8 + pueden indicar la calidad de la respuesta, ya que su cantidad puede ser engañosa. Específicas de células T CD8 + pueden llegar a ser funcionalmente agotado el tiempo con una disminución en la producción de citoquinas y matando a 7,8. Además, ciertos CD8 + clones de células T no se puede matar, así como otras con diferentes especificidades TCR 9. De la inmunidad mediada por células efectiva (CMI), los antígenos deben ser identificados que producen no sólo un número adecuado de responder las células T, sino también funcionalmente robusto responder las células T. Aquí se evalúa la eliminación de las células específicas por ciento de los dos péptidos clones específicos de células T en ratones Balb / c.

Muchas infecciones provocan una respuesta CTL fuerte, pero de vez en cuando, la cantidad de células de respuesta no se correlaciona con el control del patógeno<sup&gt; 1</sup&gt;. Una medida de la calidad del CTL es su capacidad de matar específicamente<sup&gt; 2</sup&gt;. CFSE etiquetado de las células diana pueden ser utilizados para investigar la calidad de la respuesta CTL<em&gt; In vivo</em<sup&gt; 3,4</sup&gt;.

Antígeno Específico de la En Vivo Matar ensayo utilizando CFSE células diana marcadas

El éster succinimidílico del diacetato de carboxifluoresceína (CFSE) puede utilizarse para marcar de forma fácil y rápida una población celular de interés para su investigación in vivo. ...

El objetivo general del siguiente experimento es evaluar la calidad funcional de las células T CD8 positivas en respuesta a un antígeno particular, investigando su capacidad para destruir células diana in vivo. Esto se logra primero induciendo células T efectoras CD8 positivas específicas para el antígeno mediante la inmunización de ratones receptores. Como segundo paso, se otorga especificidad a las células diana primarias o se las trata de otro modo, lo que completa la creación del sistema efector-diana específico.A continuación, las células diana se administran a los ratones receptores mediante transferencia adoptiva retroorbital. Con el fin de observar la actividad citotóxica efectora in vivo, se obtuvieron resultados que indican si los linfocitos efectorores han destruido alguna de las células diana, basándose en el análisis citométrico de flujo de células teñidas con CFSE. Hola, mi nombre es Marina Ward.Soy estudiante de posgrado en el laboratorio de Gary Splitter en la Universidad de Wisconsin Madison. Este método proporcionará información sobre la actividad citotóxica de los linfocitos T citotóxicos y también puede aplicarse al estudio de la proliferación y supervivencia celular. El procedimiento de transferencia adoptiva será demostrado por el Dr. Jerome Harms, un científico de mi laboratorio. Comience estratégicamente definiendo un sistema específico de células efectoras y dianas.Por ejemplo, en un ensayo clásico de CTL in vivo, utilice una inmunización con péptido purificado para inducir linfocitos T CD8 positivos específicos; use el mismo péptido para pulsar las células diana singénicas, creando así un sistema específico de efecto sobre el blanco. Descontamine la superficie de trabajo de una campana de seguridad biológica para garantizar la esterilidad de las inyecciones. Prepare la inmunización con péptido colocándola primero en un tubo de dos mililitros.50 microgramos de péptido purificado en 100 microlitros de DMSO al 10 % en PBS por ratón. A continuación, añada una cantidad igual de adyuvante incompleto frío con perlas de un milímetro para mezclar. Cierre la tapa del tubo con parafina y almacene el inmunógeno en hielo hasta la inyección.Utilice un agitador de perlas ajustado a la velocidad máxima de rotaciones por minuto para mezclar la emulsión durante tres minutos, colocando inmediatamente después la emulsión de nuevo sobre hielo tras la mezcla. La emulsión resultante debe tener una consistencia similar a la de la mayonesa. Deje reposar la emulsión a cuatro grados Celsius durante la noche o hasta una semana, mezclando nuevamente si se observa alguna separación en el momento de la inmunización.Identifique los ratones para esta parte del experimento. Utilice una jeringa de un mililitro y una aguja de calibre 20 para aspirar la emulsión. Tenga cuidado de no aspirar ninguna perla al preparar las células diana.Se utilizan ratones ingénuos síngeños para sacrificar a estos ratones ingénuos. De acuerdo con las normas aprobadas por A-A-A-L-A-C. Rocíe el área correspondiente del ratón con etanol al 70 % para minimizar la posibilidad de contaminación proveniente del ratón, el pelo u otros contaminantes externos; utilizando tijeras de disección, haga un pequeño corte a través de la piel en el lado izquierdo del ratón.Tire del colgajo de piel para descubrir la bolsa peritoneal y los órganos internos. Corte a través del peritoneo teniendo cuidado de no dañar ninguno de los órganos subyacentes. Localice el bazo, que está cerca de la superficie y tiene un color rojo oscuro.Extraiga cuidadosamente el bazo e inmediatamente colóquelo en un tubo cónico de 15 mililitros que contenga 10 mililitros de medio RPMI preparado sobre hielo. Continúe con los ratones restantes. Transfiera el bazo y el medio a un homogenizador de tejidos de vidrio.Muela el bazo hasta que todos los tejidos hayan perdido su color. Pase los productos homogeneizados a través de un filtro celular de 70 micrones hacia un tubo cónico de 50 mililitros. Enjuague el homogeneizador una vez con medio fresco y combínelo con el homogenato de bazo vertiendo la mezcla a través del filtro. Centrifugue las muestras a cuatro grados Celsius y 1.300 revoluciones por minuto.Durante siete minutos, decante y deseche el sobrenadante. Re suspenda el botón celular en 10 mililitros de lisado, reactivos e incube a 37 grados Celsius durante siete minutos. Añada hasta 50 mililitros con medio fresco y recoga las células por centrifugación.Repita este lavado. Cuente las células y alícuota 10 millones de células por pocillo en una placa de cultivo celular de fondo redondo de 96 pocillos.Incubar a cuatro grados Celsius durante una hora y media. Transferir al incubador de 37 grados Celsius durante los últimos 30 minutos. Preparar el reactivo CFSE fresco según las indicaciones del fabricante y diluirlo a una concentración de trabajo entre 0,5 y 25 micromolar.Prepare dos soluciones de CFSE que difieran diez veces en concentración. Equilibre estas soluciones de CFSE de baja y alta concentración a 37 grados Celsius antes de la marcación. Retire la placa de 96 pocillos con las células diana del incubador y pelete las células por centrifugación.A temperatura ambiente, agite suavemente la placa para eliminar el sobrenadante. Reuspenda las células en 200 microlitros de solución de CFSE de concentración baja o alta e incube durante 15 minutos en un incubador a 37 grados Celsius. Pelieta las células por centrifugación a temperatura ambiente, agite suavemente la placa para eliminar el sobrenadante, reuspenda las células en 200 microlitros de medio fresco e incube durante 30 minutos. Vuelva a pelotar las células por centrifugación a 37 grados Celsius, deseche el sobrenadante y resuspenda los pellet en 50 microlitros de PBS. Reserve parte de las células marcadas para controles sin transferencia durante el análisis de datos y también para su análisis en el citómetro de flujo en el experimento de transferencia adoptiva.Añada una pocilga de células marcadas con CFSE de baja concentración a una pocilga de células marcadas con CFSE de alta concentración por ratón. Por lo tanto, la inyección resultante consiste en 50% de células diana específicas y 50% de células irrelevantes en 0,1 mililitro. Con el fin de facilitar la transferencia adoptiva, anestesie los ratones inmunizados con péptido e inyecte 0,1 mililitro de células diana marcadas por vía retroorbital en el receptor.Después de seis horas, sacrificar los ratones receptores para la obtención de células, aislar el bazo del ratón y purificar la población celular mediante el mismo protocolo que se utilizó. Al preparar las células esplénicas diana, sembrar las células a un millón por pocillo en una placa de cultivo tisular de fondo redondo de 96 pocillos, fijar las células recuperadas y no transferidas con paraformaldehído, analizar las muestras en un citómetro de flujo y evaluar los datos. La presentación típica de los resultados de la lisis celular específica se muestra de dos maneras.Un pico específico del epítopo reducido en el histograma FACS y el valor calculado indican lisis específica de células. Aquí, los números indican el porcentaje de células con fenotipo alto o bajo de CFSE en células control marcadas con CFSE no transferidas recuperadas de un ratón receptor inmunizado con PBS, y células marcadas con CFSE recuperadas de dos ratones receptores diferentes específicos para péptidos. Obsérvense los picos específicos del epítopo reducidos, indicativos de la destrucción específica de células.Alternativamente, los resultados pueden presentarse gráficamente para indicar la lisis específica de células para cada grupo de ratones. PBS, péptido A y péptido B. Después de ver este video, debería tener una buena comprensión de cómo desarrollar su propio ensayo in vivo de citotoxicidad de linfocitos T citotóxicos utilizando ratones.

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Inmunología e Infección

CFSE etiquetas covalentemente moléculas de larga vida intracelular con el colorante fluorescente, carboxifluoresceína. Por lo tanto, cuando una célula se divide CFSE marcado, todos sus descendientes tienen la mitad de la cantidad de fluorescencia, que de ese modo se puede utilizar para evaluar la división celular. En este artículo se describen los procedimientos normalmente utilizados para el etiquetado de linfocitos de ratón con CFSE.

El uso de diacetato de carboxifluoresceína Ester succinimidil (CFSE) para controlar la proliferación de linfocitos

Un protocolo simple de preparar los extractos de tejido humano para ser utilizado como una fuente de antígenos funcionales en ensayos de células T se describe. Este método permite respuestas de células T a los antígenos derivadas de tejido a...

Extracción de los antígenos tisulares para Ensayos funcionales

El video muestra un ensayo basado en citometría de flujo para analizar la inmunodominancia en linfocitos T citotóxicos o respuestas CTL. Las células diana fluorescentes inyectadas exhiben una fluorescencia variable correspondiente a epítopos inmunogénicos. La recolección y clasificación posterior al bazo revela una reducción de las células fluorescentes de alta intensidad, lo que confirma la inmunodominancia en las respuestas a CTL.

Ensayo para evaluar la inmunodominancia en las respuestas citotóxicas de los linfocitos T

Este protocolo describe un ensayo de citotoxicidad sensible basado en células. Al enumerar la disminución de la frecuencia de linfocitos T CD4+ diana vivos en presencia de un número cada vez mayor de linfocitos T CD8+ efectores, este ensayo permite la evaluación directa de la actividad citolítica de los linfocitos T CD8+ específicos del antígeno.

Ensayo de citometría de flujo basado en células para medir la actividad citotóxica

La capacidad de controlar las respuestas de células T en detalle en vivo es importante para el desarrollo de nuestra comprensión de la respuesta inmune. Aquí se describe el uso de conjuntos de blancos fluorescentes (TLC) en un ensayo in vivo de células T en el que evalúa&gt; 250 parámetros simultáneamente por citometría de flujo.

El uso de fluorescentes Arrays objetivo para la evaluación de las respuestas de células T<em&gt; En vivo</em

El objetivo de este protocolo es permitir la detección de en vivo matando de una célula de la blanco en un modelo murino de específica de antígeno.

En Vivo Ensayo para la detección de la función citolítica de células T específicas de antígeno utilizando un modelo de vacunación

Describimos aquí un ensayo de matanza in vivo basado en citometría de flujo que permite el examen de inmunodominancia en las respuestas de linfocitos T citotóxicos (CTL) a un antígeno tumoral modelo. Proporcionamos ejemplos de cómo este ensayo elegante se puede emplear para estudios mecaniísticos y para pruebas de eficacia de fármacos.

Confección de ensayos de citotoxicidad in vivo para estudiar inmunodominancia en respuestas de células T CD8+ específicas de tumores

Aquí se presenta un protocolo para medir las células CD4+ T proliferantes en respuesta a proteínas antigénicas o péptidos mediante dilución de tinte. Este ensayo es particularmente sensible a las células T específicas del antígeno poco frecuente y se puede modificar para facilitar la clonación de células específicas del antígeno.

Cuantificación de células CD4+ T específicas de antígenos humanos que utilizan éster de succinidilo de carboxifluoresceína

Este manuscrito describe cómo evaluar la inmunogenicidad in vivo de las vesículas extracelulares (EV) derivadas de células tumorales utilizando citometría de flujo. Los EV derivados de tumores sometidos a muerte celular inmunogénica inducida por el tratamiento parecen particularmente relevantes en la inmunovigilancia tumoral. Este protocolo ejemplifica la evaluación de los EV tumorales inmunoestimulantes inducidos por oxaliplatino, pero se puede adaptar a diversos entornos.

In vivo Detección de inmunogenicidad de vesículas extracelulares derivadas de tumores mediante citometría de flujo de células T esplénicas

Este protocolo proporciona un flujo de trabajo estandarizado in vitro. para la medición consistente de la citotoxicidad natural, mediada por receptores de antígenos quiméricos y dependiente de anticuerpos en células humanas natural killer mediante imagen de células vivas y citometría de flujo.

Cuantificación de la citotoxicidad de células NK potenciada por receptores de antígenos quiméricos y anticuerpos terapéuticos mediante imagen de células vivas y citometría de flujo

Aprende a evaluar la citotoxicidad in vivo de células T CD8+ específicas de antígeno mediante el ensayo de muerte celular con marcaje CFSE en ratones. Este método permite cuantificar la lisis específica mediante citometría de flujo.

Antígeno Específico de la En Vivo Matar ensayo utilizando CFSE células diana marcadas

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