Separación de las fracciones de membrana interna y externa de bacterias gramnegativas

0 vistas3:47 min • August 29th, 2025

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Comience con la fracción total de la membrana de una bacteria Gram-negativa, incluidas las vesículas de la membrana interna y externa, suspendida en una sacarosa de baja densidad que preserva la integridad estructural.

Para separar las vesículas de membrana, agregue secuencialmente soluciones de sacarosa de alta y media densidad en un tubo de ultracentrífuga.

A continuación, agregue la fracción de membrana y la sacarosa de baja densidad para crear un gradiente de sacarosa discontinuo.

Ultracentrífuga para separar vesículas en función de sus densidades.

Las vesículas de la membrana interna menos densas forman una capa en la parte superior.

Las vesículas de la membrana externa más densas, ricas en lipopolisacáridos y proteínas, forman una banda en la interfaz de las soluciones de sacarosa de densidad media y alta.

Recoja la capa interna de la membrana y deseche la solución de gradiente, dejando una pequeña cantidad.

Luego, recoja la capa de membrana externa.

Agregue un búfer de almacenamiento a cada fracción para estabilizar.

Centrifugar para separar las vesículas y eliminar el sobrenadante.

Vuelva a suspender las vesículas de membrana purificadas, homogeneizarlas y almacenarlas a bajas temperaturas para su posterior análisis.

Para preparar el gradiente de sacarosa, sostenga un tubo de polipropileno o ultratransparente Open-Top en una posición ligeramente inclinada.

Agregue lentamente dos mililitros de la solución de sacarosa de mayor densidad. Luego agregue cuatro mililitros de la solución de sacarosa de menor densidad. Al preparar el gradiente de densidad, agregue la solución de sacarosa lentamente para evitar mezclar las capas.

Las capas de sacarosa deben ser ligeramente visibles y aparecer definidas en general. A continuación, agregue la fracción total de membrana que se resuspendió previamente en un mililitro de solución de sacarosa isopícnica de baja densidad. Finalmente, llene el resto del tubo agregando aproximadamente seis mililitros de la solución de gradiente de sacarosa isopícnica de baja densidad.

Ultracentrifugar las muestras utilizando un rotor de cubeta oscilante a 288.000 veces G y cuatro grados Celsius durante 16 a 23 horas. Corta el extremo de la punta de una pipeta P1000 a unos cinco mililitros de la punta. Una vez finalizada la centrifugación, utilice la pipeta para eliminar la capa superior marrón del tubo.

Transfiera esta capa, que contiene la fracción de membrana interna, a una botella de policarbonato para ultracentrifugación. Deje aproximadamente dos mililitros de la solución de sacarosa por encima de la interfaz entre la sacarosa al 53% y la sacarosa al 73% para asegurarse de que la fracción inferior de la membrana externa blanca no contamine la fracción de la membrana interna. De nuevo, utilizando una punta de pipeta P1000 sin el extremo, retire la capa exterior de membrana y transfiérala a un frasco de policarbonato.

Llene el vacío restante de la botella de policarbonato con un tampón de almacenamiento de membrana aislado y mezcle por inversión o pipeteo. Conserve las muestras en hielo. Para recoger las membranas, ultracentrifugar las botellas de policarbonato a 184.500 veces G y cuatro grados centígrados durante una hora.

Finalmente, deseche los sobrenadantes y agregue de 500 a 1,000 microlitros de tampón de almacenamiento. Vuelva a suspender las membranas mediante la homogeneización Dounce. Recoger las muestras en tubos de microcentrífuga de dos mililitros.

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Última actualización: 1 agosto 2026