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Comience inoculando una colonia de bacterias genéticamente modificadas en un medio líquido.
Estas bacterias expresan una proteína de fusión fluorescente en la membrana externa, una capa protectora externa.
Incubar para que las bacterias liberen vesículas extracelulares (EV), nanoestructuras unidas a la membrana involucradas en la comunicación intercelular, que incorporan la proteína fluorescente.
Transfiera el cultivo a una botella y centrifugue a baja velocidad para granular las células.
Transfiera el sobrenadante que contiene EV, proteínas celulares y desechos celulares. Centrifugar a alta velocidad y eliminar los residuos que contienen sobrenadante.
Filtre el sobrenadante a través de una membrana para eliminar cualquier bacteria y residuo restante.
Inocular una muestra en agar e incubarla. La falta de formación de colonias bacterianas confirma la ausencia de bacterias.
Transfiera la solución a un dispositivo de ultrafiltración con una membrana semipermeable y una centrífuga para atrapar los VE mientras elimina las proteínas más pequeñas.
Recoja los vehículos eléctricos concentrados en un tubo para su posterior análisis.
Comience inoculando colonias individuales de Escherichia coli en 250 a 1000 mililitros de caldo Luria-Bertani, o LB, usando un asa estéril. Luego, incube el cultivo aeróbicamente en una incubadora agitadora a 300 rotaciones por minuto y 37 grados Celsius. Después de 48 horas de incubación, clarifique el medio de cultivo bacteriano transfiriendo los cultivos celulares a botellas de centrífuga de polipropileno limpias de 500 mililitros para centrifugar en un rotor de ángulo fijo de gran capacidad a cuatro grados Celsius y 5.000 veces G durante 15 minutos.
Transfiera el sobrenadante a botellas de centrífuga limpias vertiendo cuidadosamente a la centrífuga a 10,000 veces G durante 15 minutos. A continuación, transfiera el sobrenadante a un dispositivo de filtro accionado por vacío de polietersulfona de 0,2 micras de un tamaño adecuado y conecte el dispositivo de filtración a un suministro de pared de vacío. Si la tasa de filtración disminuye significativamente, mueva el material sin filtrar a un nuevo dispositivo.
El medio filtrado se puede almacenar a cuatro grados Celsius durante la noche o se puede procesar de inmediato. Para comprobar la eliminación completa de las células viables, extender una alícuota del sobrenadante filtrado en placas de agar adecuadas y asegurar la ausencia de colonias después de la incubación en condiciones óptimas para la cepa bacteriana. Para concentrar el medio filtrado con un volumen de 100 mililitros, cargue 90 mililitros de medio de cultivo filtrado en el depósito del dispositivo de ultrafiltración centrífuga con un corte de peso molecular de 100 kilodaltons y centrifugue el medio en un rotor de cubeta oscilante a cuatro grados Celsius y 2.000 veces G durante intervalos de 15 a 30 minutos hasta que el volumen del medio en el depósito superior se haya concentrado a menos de 0,5 mililitros.
Para rellenar el depósito con cualquier medio de cultivo filtrado restante, retire el flujo en la parte inferior del dispositivo para reequilibrarlo. Si la viscosidad del medio concentrado en el yacimiento aumenta visiblemente, diluya el medio con PBS y vuelva a concentrarlo por centrifugación para reducir cualquier vesícula no extracelular, o proteínas EV, más pequeñas que el límite de peso molecular de 100 kilodaltons. Luego, transfiera el medio concentrado a un tubo de unión bajo en proteínas para almacenarlo a cuatro grados Celsius durante la noche.