Aislamiento de bacterias resistentes a los antibióticos de una muestra de agua para análisis molecular

0 vistas3:16 min • September 26th, 2025

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Comience con una muestra de agua que contenga bacterias transmitidas por el agua y fíltrela para eliminar los desechos.

Transfiera el filtrado diluido a placas de agar con bajo contenido de nutrientes, cada una suplementada con un antibiótico específico. Extienda el filtrado e incube.

Las bacterias portadoras de un gen específico de resistencia a los antibióticos crecen en las placas de antibióticos correspondientes y forman colonias.

Cuente las colonias para determinar las unidades formadoras de colonias (UFC), que representan el número de bacterias resistentes a los antibióticos.

Seleccione una sola colonia de cada placa y suspendala en agua destilada estéril.

Caliente la suspensión para lisar las células y liberar el contenido intracelular, incluido el ADN bacteriano que contiene el gen de resistencia a los antibióticos.

Centrifugar los tubos para separar los desechos y recolectar el sobrenadante que contiene ADN.

Agregue reactivos de amplificación al ADN extraído.

Coloque los tubos en un termociclador y ejecute el programa para amplificar una región específica de ADN bacteriano.

El ADN amplificado está listo para el análisis de secuencias para identificar el gen de resistencia a los antibióticos.

Procese la muestra de agua de forma aséptica filtrándola a través de un paño de muselina estéril para eliminar cualquier partícula. Luego, diluya en serie la muestra de agua filtrada para su posterior análisis. Para determinar el recuento bacteriano resistente a los antibióticos, agregue los antibióticos por separado en tubos que contengan 20 mililitros de agar R2A fundido estéril modificado aproximadamente a 40 grados Celsius.

Revuelva para mezclar uniformemente y vierta sobre placas de Petri estériles antes de que el agar se solidifique. Extienda 100 microlitros de suspensión bacteriana en sus respectivas placas modificadas con agar R2A que contengan antibióticos. Incube las placas a 35 a 37 grados centígrados durante 48 horas y luego determine el recuento bacteriano.

Para preparar la plantilla de ADN de los aislados para la PCR, con un palillo estéril, tome una sola colonia pura aislada del aislado que crece en una placa de Petri. Suspender la colonia bacteriana en 100 microlitros de agua estéril doble destilada en un tubo de microcentrífuga y hervirla en un baño de agua hirviendo o en un baño seco durante 10 minutos a 100 grados centígrados. Centrifugar la suspensión a 10.000 g durante dos minutos para granular los residuos y transferir el sobrenadante a un tubo de microcentrífuga estéril fresco para utilizarlo como plantilla de ADN crudo.

Para amplificar la región V3 del gen 16S rRNA por PCR, prepare 40 microlitros de la mezcla de reacción en un tubo de PCR. Coloque el tubo en el bloque térmico y ejecute el programa apropiado en el termociclador de PCR.

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Última actualización: 1 agosto 2026