Análisis microscópico del crecimiento bacteriano bajo estrés utilizando cámaras microfluídicas

0 vistas3:50 min • September 26th, 2025

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Comience con un plato microfluídico lleno de un medio nutritivo precalentado.

Fije la placa al sistema de colector y selle la configuración. Conduzca el medio a través de los canales para eliminar las burbujas de aire.

Coloque la configuración en una platina de microscopio y precaliéntela para evitar la expansión de la placa durante la obtención de imágenes.

A continuación, retire el medio, introduzca un cultivo bacteriano en las entradas de células y un medio inductor de estrés en las entradas de solución.

El medio inductor de estrés contiene un antibiótico que detiene la división celular sin inhibir el aumento de la masa celular.

Selle el sistema, luego inicie la carga celular para transferir las bacterias a la cámara de cultivo de la placa.

Usando luz transmitida, ubique un campo de visión que contenga celdas individuales distribuidas uniformemente.

Inyecte la cámara con el medio inductor de estrés para exponer las células al antibiótico.

Usando el modo de contraste de fase, capture imágenes de lapso de tiempo para observar la formación de células filamentosas alargadas con mayor contenido de ADN causado por la inhibición de la división celular mediada por antibióticos.

Primero, retire la solución de conservación de la placa microfluídica y reemplácela con medio nuevo precalentado a 37 grados Celsius como se describe en la Guía del usuario del software microfluídico. Fije la placa microfluídica al sistema de colectores.

Y en el software microfluídico, haga clic en el botón Sellar para sellar la placa al sistema de colectores. Después de eso, haga clic en el botón Priming. Coloque la placa microfluídica con el sistema de colector en la platina del microscopio y precaliente a 37 grados centígrados durante dos horas para evitar la dilatación de la cámara microfluídica.

Selle la placa microfluídica en el sistema microfluídico haciendo clic en el botón Sellar. Reemplace el medio del pocillo ocho con 150 microlitros de muestra de cultivo y reemplace el medio del pocillo uno al cinco con el medio deseado, con o sin el reactivo inductor de tensión. Selle la placa microfluídica y colóquela en la platina del microscopio.

En el software microfluídico, ejecute el procedimiento de carga celular. Compruebe que la carga de las células es satisfactoria mirando bajo el microscopio en luz transmitida. Enfoque cuidadosamente en modo de luz transmitida y seleccione varios campos de visión que muestren bacterias aisladas y no estén superpoblados, alrededor de 10 a 20 células por 100 microlitros cuadrados.

En el software microfluídico, haga clic en el botón Ejecutar una secuencia personalizada, luego programe la inyección del medio inductor de estrés durante 10 minutos a dos PSI, seguido de la inyección a un PSI durante la duración deseada del tratamiento de estrés. Realice imágenes de microscopía en el modo de lapso de tiempo con un cuadro cada 10 minutos, utilizando contraste de fase en luz transmitida y una fuente de luz de excitación de 560 nanómetros para la señal mCherry si es necesario. Inicie la adquisición de imágenes microscópicas y el protocolo de inyección microfluídica al mismo tiempo.

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Última actualización: 15 agosto 2026