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Comience con una configuración de ensayo que contenga viales colocados dentro de una cámara anaeróbica.
Cada vial contiene medios suplementados con nitrato de sodio, iones de mercurio y concentraciones variables de sulfato de magnesio.
Gire la configuración para mezclar los componentes, luego incube.
Durante la incubación, el sulfato de magnesio promueve la formación de complejos de mercurio no biodisponibles, reduciendo los iones de mercurio libres y biodisponibles de una manera dependiente de la concentración.
A continuación, agregue biosensores inducidos, bacterias modificadas genéticamente que transportan un plásmido y mezcle.
El plásmido contiene un regulador transcripcional sensible al mercurio y un promotor vinculado a un gen reportero fluorescente.
En condiciones anaeróbicas, las bacterias utilizan nitrato para respirar.
Los iones de mercurio libres ingresan a las células, se unen al regulador transcripcional y activan el gen fluorescente, produciendo proteínas fluorescentes.
Transfiera las alícuotas de cada vial a una placa de pocillos múltiples.
Con un lector de placas, mida la intensidad de la fluorescencia.
Una disminución de la fluorescencia con el aumento de las concentraciones de sulfato de magnesio confirma la capacidad del biosensor para detectar cambios en el mercurio biodisponible.
Antes de comenzar el experimento, verifique el monitor anaeróbico para asegurarse de que no haya oxígeno en la cámara anaeróbica. Diseñe el diseño de la placa de acuerdo con una plantilla de 96 pocillos. Para realizar experimentos en réplicas técnicas de tres, esto permitirá 32 tratamientos diferentes, que se representan mejor con una cuadrícula de cuatro por ocho para configurar los viales.
Configure la cuadrícula de cuatro por ocho de acuerdo con el diseño de la placa de ensayo. Luego, coloque viales estándar de PTFE de 7 mililitros en la bandeja. Los viales solo deben manipularse manipulando el exterior del vial.
Agregue el volumen del medio de exposición en cada vial correspondiente a cada tratamiento. A cada vial, agregue el volumen correspondiente de la variable química a probar de acuerdo con el diseño de la placa. Ahora agregue nitrato a cada vial para que la concentración final sea de 200 micromolares.
Excluya este paso para los espacios en blanco de tratamiento con biosensores constitutivos.
Para agregar mercurio a los viales, primero tome el caldo de cuatro a ocho micromolares y agite bien. Diluya la solución y el medio de exposición en un vial de PTFE de 7 mililitros a una concentración de 100 a 250 nanomolares para hacer una solución de mercurio que funcione.
A partir de esta solución de trabajo, agregue mercurio a los viales requeridos de acuerdo con el diseño de la placa. Después de agregar el mercurio o el cadmio, agite manualmente la placa con un movimiento orbital. El experimento puede detenerse ahora dependiendo del tiempo requerido para que el mercurio o el cadmio se especien en solución.
Cuando se reanude el experimento, pipetee suavemente el material del biosensor hacia adelante y hacia atrás para garantizar la homogeneidad. A continuación, añade 100 microlitros del stock del biosensor a cada vial y agita manualmente la placa como antes. Caliente el lector de placas a 37 grados centígrados y configure una ejecución cinética durante diez horas con lecturas cada dos puntos de cinco a cinco minutos.
Un temblor orbital entre lecturas, configuró la carrera para tomar mediciones de fluorescencia con una excitación de fluorescencia de 440 nanómetros y una emisión de 500 nanómetros. Ahora pipetee 200 microlitros de cada vial de PTFE en la cuadrícula de cuatro por ocho en los pocillos correspondientes de la placa de 96 pocillos.
Pipetea de un lado a otro cinco veces antes de transferir cada 200 microlitros. Coloque la placa de 96 pocillos en la bandeja del lector de placas. Luego coloque la tapa en la placa de 96 pocillos y comience el ensayo.