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Tome un cultivo de Lactococcus lactis que exprese la peptidasa NisP unida a la membrana.
Mezcle el cultivo con un medio rico en nutrientes.
Agregue el agar fundido, mezcle y vierta en un plato para distribuir uniformemente L. lactis en el agar.
Una vez solidificado, perfore pozos en el agar.
A continuación, tome E. coli recombinante que produce variantes precursoras de tipo salvaje o modificadas del péptido antimicrobiano nisina.
Centrifugar para granular las bacterias, desechar los sobrenadantes y volver a suspender los gránulos en tampón.
Sonicar para lisar las bacterias, centrifugar y transferir los sobrenadantes a tubos frescos.
Normalice los lisados para igualar la densidad óptica utilizando tampón para garantizar niveles de péptidos constantes.
Pipetee cada muestra en pocillos de agar individuales e incube las muestras.
Durante la incubación, los péptidos precursores de la Nisina se difunden en el agar y son escindidos por NisP, generando nisina madura.
La nisina madura inhibe el crecimiento de L. lactis , formando halos claros alrededor del pozo.
Compare los tamaños de los halos para evaluar la actividad antimicrobiana de las variantes de nisina.
Agregue un mililitro de precultivo de Lactococcus lactis a 25 mililitros de caldo 2X M17 que contenga 10 microgramos por mililitro de cloranfenicol y dos por ciento de glucosa. Luego, agregue 25 mililitros de agar fundido tibio, mezcle y vierta la solución en una placa de Petri grande. Manteniendo condiciones estériles, seque la placa durante 10 a 15 minutos.
A continuación, esteriliza los extremos de una pipeta Pasteur de vidrio a la llama. Una vez que la pipeta se haya enfriado, use su extremo ancho para crear agujeros en el agar solidificado. Etiquete la parte inferior de la placa de Petri para cada muestra junto a la posición del orificio correspondiente.
Para el ensayo de actividad, tome las muestras de un mililitro de los cultivos de producción de E. coli y centrifugue durante tres minutos a 7.000 veces g. Aspire el medio restante y vuelva a suspender el sedimento celular en 500 microlitros de tampón de fosfato de sodio mediante pipeteo.
A continuación, sonique la muestra en hielo sumergiendo la punta de la sonda sonicadora en la suspensión celular. Inicie la sonicación. Luego, centrifugar el lisado celular durante 10 minutos a 13,000 veces g para granular los restos celulares.
Transfiera el sobrenadante a un nuevo tubo de reacción con hielo. Diluya y normalice los sobrenadantes a un mililitro de un OD600 igual a 0,6, en relación con la densidad celular recolectada, con tampón de fosfato de sodio y mezcla. Para probar la actividad antimicrobiana, agregue 40 microlitros de la muestra normalizada en el orificio designado del agar indicador.
Espere hasta que toda la muestra se difunda en el agar. Incube el plato durante la noche a 30 grados centígrados. Al día siguiente, tome fotografías de la placa de agar con un escáner de cama plana o una cámara digital.
El tamaño del halo de inhibición del crecimiento se puede medir a mano o mediante software.