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Comience con gusanos adultos de C. elegans recién matados, estériles y de la misma edad con cutículas permeabilizadas, suspendidos en tampón.
Estos gusanos están infectados con bacterias en sus tractos intestinales.
Tome una placa de pocillo profundo que contenga partículas abrasivas en tampón y transfiera un solo gusano a cada pocillo.
Cubra el plato con una película de sellado y una tapa.
Incube la placa a baja temperatura para evitar el sobrecalentamiento durante la alteración del tejido.
Presione la tapa para sellar los pocillos.
Con un disruptor tisular, agite mecánicamente la placa. Las partículas abrasivas alteran los tejidos de los gusanos, liberando bacterias intestinales.
Golpee la placa y centríquela para granular el contenido.
Mezcle el contenido para distribuir uniformemente las bacterias, luego transfiéralas a pozos frescos.
Diluir en serie la suspensión bacteriana en tampón.
Coloque las diluciones en placas de agar e incube para permitir la formación de colonias.
Cuente las colonias para cuantificar la variación en las cargas bacterianas intestinales en gusanos individuales.
Para prepararse para la interrupción mecánica de los gusanos, obtenga una placa estéril de 96 pocillos de dos mililitros de profundidad y una cubierta de placa de silicona.
Use una espátula estéril para agregar una pequeña cantidad de carburo de silicio estéril de rejilla 36 a cada pocillo de modo que la rejilla apenas cubra el fondo del pozo. Agregue 180 microlitros de tampón de gusano M9 a cada pocillo. Etiquete las columnas y filas, y luego cubra la placa sin apretar con la cubierta de la placa de silicona.
A continuación, transfiera los gusanos permeabilizados a una pequeña placa de Petri con M9TX-01 llena hasta una profundidad de un centímetro. Con un microscopio de disección, pipetee gusanos individuales en volúmenes de 20 microlitros y transfiéralos a pocillos individuales de la placa de 96 pocillos. Para expulsar cualquier gusano pegado a la pipeta, aspire 20 microlitros de M9TX-01 de un área despejada de la placa de Petri y suéltelo nuevamente en la placa. Una vez que se transfieren todos los gusanos, cubra la placa de 96 pocillos con una hoja de película de sellado flexible con el lado posterior de papel hacia abajo sobre los pocillos de muestra.
Coloque la estera de sellado de silicona ligeramente sobre la película de sellado flexible sin presionar la tapa hacia abajo en los pocillos. Coloque el plato a cuatro grados centígrados durante 30 a 60 minutos para evitar el sobrecalentamiento durante la interrupción. Después de enfriar la placa, presione firmemente la estera de sellado de silicona en los pocillos para sellarlos.
Luego asegure las placas en el disruptor tisular. Agite los platos durante un minuto a 30 hercios. Luego gire las placas 180 grados y repita agitando durante un minuto.
Golpee las placas firmemente en el banco dos o tres veces para desalojar cualquier grano de la película de sellado flexible. Centrifugar las placas a 2.400 veces g durante dos minutos para recoger las muestras en el fondo de los pocillos. Luego retire la tapa de silicona y retire la película de sellado.
Para preparar una dilución en serie diez veces mayor de los digestores de gusanos, llene 180 microlitros de un X PBS en las filas B a D de una placa de 96 pocillos. Con una pipeta multipocillo ajustada a 200 microlitros, mezcle lentamente la digestión del gusano mediante pipeteo. Transfiera la cantidad máxima del líquido a la fila A de la placa de 96 pocillos que contiene PBS.
Con una pipeta multicanal, retire 20 microlitros de la fila superior y dispense en la fila B, seguido de mezclar. Repita este paso para la fila B a C y luego la fila C a D para obtener una dilución de 1000 veces. Para la cuantificación bacteriana de gusanos monocolonizados, coloque de 10 a 20 microlitros de cada dilución en placas de agar sólido. Para la colonización de múltiples especies, coloque 100 microlitros de cada dilución en placas de agar de 10 centímetros.