$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Comienza con una cuveta fría que contiene una suspensión de células bacterianas electrocompetentes, que tienen mayor susceptibilidad a la permeabilización de membranas.
La suspensión también contiene biomoléculas marcadas con fluoróforos orgánicos.
Aplicar un pulso eléctrico de alto voltaje para crear poros temporales de membrana, permitiendo la entrada de la biomolécula en el citoplasma.
Añade un medio rico en nutrientes y transfiere las células a un tubo. Incuba para promover la reparación de membranas.
Centrifuga las células y luego descarta el sobrenadante que contiene biomoléculas no internalizadas.
Resuspende las células en un tampón alto en sal que contiene un detergente para desprender las biomoléculas adheridas a la superficie.
Centrifuga de nuevo, descarta el sobrenadante y vuelve a suspender las celdas del buffer.
Transfiere la suspensión a un filtro y una centrífuga para descartar el flujo que contiene cualquier biomolécula no internalizada. Luego, enjuaga las células con un tampón nuevo y vuelve a suspenderlas.
Monta las celdas sobre una almohadilla de agarosa y coloca una cubierta. Las bacterias marcadas con fluorescencia están listas para ser visualizadas.
Comenzando con un stock de biomoléculas fluorescentes preparadas en un tampón de baja fuerza iónica, transfiere hasta cinco microlitros de las biomoléculas a una alícuota de 20 microlitros de bacterias competentes o a 50 microlitros de células de levadura competentes. La cantidad de biomoléculas fluorescentes incubadas con las células se correlaciona directamente con la cantidad de biomoléculas internalizadas por célula tras la electroporación.
Incuba la mezcla en hielo hasta 10 minutos. Al mismo tiempo, selecciona una cubeta de electroporación con el espaciado adecuado entre electrodos y enfría sobre hielo. Transfiere la mezcla de células a la cuveta preenfriada.
Golpea suavemente la cuveta varias veces para eliminar cualquier burbuja de la solución. Elimina cualquier humedad de la cuberta con una toalla de papel y coloca la cubetas en el electroporador. Aplica un pulso de alto voltaje a las celdas.
Justo después de este proceso, verifica que la constante de tiempo mostrada en el electroporador esté entre cuatro y seis milisegundos. Las constantes de tiempo más bajas suelen deberse a la presencia de exceso de sal o burbujas dentro de la cubeta, y pueden disminuir o inhibir completamente la absorción de biomoléculas en las células. Los pulsos de voltaje más altos mejoran la carga de la celda, pero también pueden afectar la viabilidad de la célula.
Inmediatamente después de la electroporación, añade 500 microlitros de medio rico y transfiere las celdas a un tubo nuevo de 1,5 mililitros. Dejar que la membrana celular se recupere incubando las bacterias a 37 grados Celsius o la levadura a 29 grados Celsius durante 2 a 10 minutos. Tras la incorporación de la biomolécula y la recuperación del crecimiento, se centrifugan las células durante un minuto en una centrífuga preenfriada a cuatro grados Celsius y se desecha del sobrenadante.
Resuspende el pellet en 500 microlitros de buffer y repite los procesos de centrifugado, eliminación de sobrenadante y resuspensión del buffer tres veces más. Estos pasos de lavado eliminarán todas las trazas de biomoléculas no internalizadas de la suspensión celular.
En el caso de la internalización de proteínas marcadas, se realiza un paso adicional de purificación pipeteando la suspensión celular en un tubo de 1,5 mililitros equipado con un filtro de membrana de 0,22 micras en la parte superior. Separa las celdas del tampón mediante centrifugación asegurándose de que quede suficiente líquido sobre el filtro para evitar que las células se sequen, y descarta la fracción de flujo directo. Debajo del filtro, añade 500 microlitros de PBS fresco sobre las celdas y repite la combinación de un centrifugado hacia abajo seguido de una adición de PBS fresco dos veces más.
Realiza un centrifugado final a 3.300 g durante un minuto para eliminar el lavado PBS anterior. Resuspende las células con 150 microlitros de PBS.
Por último, quita el desliz de la cubierta superior de la almohadilla de agarosa que ya había fabricado. Carga las celdas en la almohadilla pipeteando 10 microlitros de la suspensión de la celda en caída. Después de colocar una nueva cubierta limpia sobre la almohadilla de agarosa, las celdas entre sándwiches están listas para la microscopía fluorescente.