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Comienza con un pez cebra adulto infectado con una cepa resistente a antibióticos de Vibrio cholerae. Esta bacteria patógena expresa la enzima β-galactosidasa y coloniza el tracto intestinal.
Recoge el pez y transfiere a una solución que contenga una sobredosis de anestésico para eutanasiarlo.
Coloca el pez con el lado ventral hacia arriba y sujeciónalo con alfileres.
Desinfecta el abdomen, realiza una incisión longitudinal en la piel y dos incisiones laterales hacia la cabeza, luego sujeta la piel para exponer el tracto intestinal.
Transfiere el tracto a un tubo de homogeneización que contiene un tampón frío con cuentas de vidrio.
Incuba con agitación, permitiendo que las cuentas de vidrio alteren el tejido y liberen las bacterias.
Diluye en serie el homogeneado, lo emplacamos sobre el medio e incuba. El medio contiene un sustrato cromogénico de β-galactosidasa y un antibiótico para eliminar contaminantes.
Las bacterias expresan la enzima β-galactosidasa, que hidroliza el sustrato cromogénico, dando lugar a la formación de colonias pigmentadas de color azul.
Cuenta las colonias para estimar la carga bacteriana intestinal.
Cuando el experimento ha alcanzado su punto final deseado, toma una muestra de 15 mililitros del agua de infección para fines diagnósticos. Luego recoge los peces y deshazte del agua infectada adecuadamente. Orienta el lado ventral hacia arriba y asegura el cuerpo con un alfiler a través de la mandíbula inferior y otro pasador justo detrás del ano.
Inclina ambos pasadores alejándose del cuerpo. A continuación, limpia la superficie ventral del pez con etanol al 70%. Luego, esteriliza un bisturí y unas tijeras Vannas usando un 70% de etanol y una llama.
Ahora, usando el bisturí, haz una pequeña incisión longitudinal en el vientre que penetre las escamas, pero solo corte hasta la profundidad de la piel. A continuación, con las tijeras, extiende la incisión con cuidado a lo largo del cuerpo, cortando no más profundo que la piel. Evita cortar el ano.
Luego haz dos cortes laterales hacia la cabeza para ampliar la abertura. Luego, sujeta la piel a cada lado de las incisiones laterales a la superficie de disección, inclinando los pasadores hacia fuera, alejándolos del cuerpo. El tracto intestinal debería ser visible ahora como un tubo muy delgado y pálido.
Ahora, utiliza dos pares de pinzas esterilizadas con llama para extraer cuidadosamente todo el tracto intestinal, que puede ser bastante frágil. Transfiere el tejido a un tubo de homogeneización que contiene perlas de vidrio y un mililitro de tampón en frío. A continuación, homogeneiza los tejidos tal y como se describe en el protocolo de texto y cuantifica los niveles de colonización intestinal.
A continuación, haz diluciones en serie del homogeneado y amortiguador intestinal. Para cada pez, prepara cinco o seis diluciones multiplicadas por diez en volúmenes de un mililitro. Haz vórtices en los tubos para mezclar.
Luego, se placan entre 100 y 200 microlitros de cada dilución en placas LB de agar que contienen estreptomicina y X-gal. Incuba las placas a 30 grados Celsius durante 16 a 18 horas. Tras la incubación nocturna, cuenta las colonias de V. cholerae en las placas.
Estas bacterias suelen producir colonias azul pálido en medio LB con X-gal.