Generación de esferoplastos a partir de bacterias gramnegativas

0 vistas4:02 min • February 26th, 2026

Toma medios que contienen un antibiótico que bloquea la división celular.

Inocúlala con bacterias Gram-negativas en forma de bastone.

Incuba con el sacudido.

En presencia del antibiótico, las bacterias continúan creciendo sin dividirse y forman filamentos largos.

Recoge el cultivo y centrígalo a baja temperatura. Descarta el sobrenadante y lava los filamentos con una solución de sacarosa para evitar la lisis.

Descarta la solución de sacarosa.

Añade un tampón seguido de enzimas y EDTA. El EDTA debilita la membrana externa, permitiendo que la lisozima entre y descomponga la capa de peptidoglicano.

Esto elimina la pared celular, permitiendo que la célula bacteriana se reduzca. La DNasa I rompe el ADN cromosómico liberado de las células y evita la agrupación celular.

Añade una solución hipotónica con un suave giro, permitiendo que la célula absorba agua.

Las membranas flexibles permiten que la célula adopte una forma esférica llamada esferoplasto.

Transfiere una alicuota que contiene los esferoplastos en dos tubos con una solución isotónica fría para estabilizar los esferoplastos.

Para preparar esferoplastos Gram-negativos de E. coli, diluye el cultivo nocturno en una proporción de 1 a 100 en 25 mililitros de TSB en un matraz de 250 mililitros, y devuelva la bacteria a la incubadora de agitación durante otras 2,5 horas. Cuando la solución alcanza una densidad óptica de 0,5 a 0,8 a 600 nanómetros, se diluye el cultivo en una proporción de uno a diez en TSB fresco en un nuevo matraz de 250 mililitros para una segunda incubación de 2,5 horas con una concentración efectiva final de 60 microgramos por mililitro de cefalexina.

Producir filamentos unicelulares de unos 50 a 150 micrómetros de longitud, visualizados bajo un microscopio óptico con una ampliación de 1000x. Centrifuga la solución bacteriana para extraer los filamentos y decanta el sobrenadante. Lava los filamentos con la suave adición de un mililitro de sacarosa de 0,8 molares, cuidando de no alterar el pellet.

Tras un minuto, descarta el sobrenadante sin alterar el pellet y añade los reactivos indicados en su orden correspondiente a los filamentos. Después de diez minutos a temperatura ambiente, añade gradualmente un mililitro de solución A durante un minuto, mientras se revuelve suavemente la solución a mano. Incubar la solución durante cuatro minutos a temperatura ambiente, luego separar la suspensión filamentosa en dos alícuotas iguales entre dos tubos cónicos de 15 mililitros que contienen siete mililitros de la solución B de cuatro grados Celsius. A continuación, se comprimen los filamentos mediante centrifugación y se utiliza una pipeta serológica para eliminar cuidadosamente todos los sobrenadantes salvo uno o dos mililitros sin alterar los pellets.

Usa una micropipeta p1000 para volver a suspender suavemente los pellets. Revisa una pequeña alitería de la muestra para ver si se forman esferoplastos mediante microscopía óptica. El esferoplasto puede almacenarse a menos 20 grados Celsius durante hasta una semana o hasta que hayan pasado por tres ciclos de congelación y descongelación.

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Última actualización: 29 agosto 2026