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Microbiología
0 vistas • 3:38 min • February 26th, 2026
Tomemos una microplaca que contiene pozos de control y tratamiento, cada uno inoculado con una bacteria patogénica formadora de biofilmes.
Los pozos de tratamiento contienen una enzima que interrumpe la formación de biofilmes.
Incubar bajo condiciones microanaeróbicas para crear un ambiente con bajo oxígeno. Esto favorece la secreción de moléculas de señalización bacteriana que median la adhesión superficial. En los pozos de tratamiento, la enzima degrada estas moléculas, reduciendo así la unión bacteriana.
Lava los pozos para eliminar las células no adherentes.
Introduce un medio fresco e incuba. Las bacterias adheridas proliferan y secretan sustancias poliméricas extracelulares, que forman la matriz de biofilm.
Quita el medio y lava los pozos.
Añade un colorante catiónico e incuba para permitir la unión a los componentes de biofilm cargados negativamente.
Lava para eliminar el tinte que no se liga.
Incuba con un disolvente bajo agitación para liberar el colorante unido en la solución.
Mide la densidad óptica o OD para cuantificar la biomasa de biofilm.
Una menor OD en los pozos de tratamiento refleja una formación reducida de biofilm, resultante de una adopción celular inicial deteriorada.
Para empezar, cultiva un cultivo de 5 mililitros de A. baumannii S1 en LB a 30 grados Celsius en una incubadora agitada durante 16 horas.
Ajusta el cultivo a un OD600 de 0,8. Luego usa LB fresco que contenga 4 miligramos por mililitro de enzima GKL purificada para diluir el cultivo de 1 a 100. Y añadir 100 microlitros a los pozos de una placa de 96 pozos.
Usa las tapas para cubrir los platos y colócalos en un recipiente de plástico de 10 litros. Sella el recipiente e incuba a 30 grados Celsius durante tres horas antes de retirar suavemente el medio. Añade otros 100 microlitros de medio fresco en LB a los pozos y incuba la placa a 30 grados Celsius durante 21 horas.
Después de retirar suavemente el medio, utiliza 200 microlitros de agua estéril para lavar delicadamente las células bacterianas planctónicas. Coloca la punta de la pipeta en el fondo del pozo y retira cuidadosamente el medio líquido para asegurar que las perturbaciones sean mínimas en la biopelícula extraña entre la interfaz aire y líquido. Luego añade 100 microlitros de solución de violeta cristalina al 1% en cada pozo e incuba durante 15 minutos a temperatura ambiente.
Elimina la solución de violeta cristalina utilizando 200 microlitros de agua estéril para lavar los pozos tres veces. Añade 100 microlitros de ácido acético al 33% en cada pozo y incuba con suaves agitaciones durante 15 minutos para disolver el colorante. Cuantifica la cantidad de biofilm midiendo la absorbancia de la violeta cristalina a 600 nanómetros. La cantidad de violeta cristalino es proporcional a la cantidad de biofilm formada.
Este estudio investiga el impacto de una enzima en la formación de biopelículas por bacterias patógenas. La enzima interrumpe la formación de biopelículas al degradar las moléculas señalizadoras bacterianas, lo que conduce a una reducción en la adhesión y la proliferación.
La evaluación cuantitativa de la supresión de biopelículas inducida por enzimas aborda un desafío crítico en el descubrimiento de fármacos anti-virulencia, al permitir la medición directa de la adhesión bacteriana y la formación de la matriz. Este flujo de trabajo proporciona confianza predictiva para la validación de dianas y apoya la selección inicial de carteras en investigación y desarrollo de enfermedades infecciosas. La cuantificación confiable de la interrupción de biopelículas informa la reducción de riesgos mecanicistas y la priorización de estrategias anti-biopelículas.
Este método se integra en la continuidad del descubrimiento temprano hasta la identificación de fármacos líderes para la I+D de agentes antiinfecciosos, conectando la validación de dianas y el desarrollo de ensayos con la investigación traslacional.
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Última actualización: 22 agosto 2026