Name: Una pantalla de alto rendimiento para Biominería actividad de celulasa de bibliotecas metagenómicas (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-02-01T17:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 21 s
Description: Descubre un método de cribado automatizado para identificar clones expresores de celulasa en bibliotecas metagenómicas usando Escherichia coli. Esta técnica permite medir la actividad celulolítica mediante lecturas de absorbancia.

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Los autores desean agradecer al Dr. Steve Withers y Chen Hong-Ming para proporcionar DNP-Cellobioside sustrato.

Antes de iniciar este protocolo, tendrá que tener su biblioteca metagenómica almacenados en un formato de placa de 384 pocillos. En nuestro estudio, hemos utilizado el vector de control de copia PCC1 fosmid en combinación con el fago T1-resistentes TransforMax EPI300-T1 R E. células de E. coli como el anfitrión de la biblioteca y se almacenan nuestros platos a -80 ° C 11. 1. La replicación de las placas biblioteca metagenómica <ol><li> Descongelar las placas que contienen la biblioteca a 37 ° C durante aproximadamente 20 minutos, o hasta que todos los pozos se descongelan. </li><li> Utilice la función de la luz ultravioleta en la esterilización de qPix2 para esterilizar el robot durante 15 minutos. </li><li> Preparar el caldo LB con cloranfenicol a una concentración final de 12.5ug/mL y arabinosa en 100ug/mL en una botella de 500 ml de reactivo. Cada placa se utilizan aproximadamente 20 ml, además de hacer un adicional de 50 ml para permitir el volumen muerto. </li><li> Configurar el qFill3 como las instrucciones del fabricante con la botella de los medios de comunicación conectado al colector a través de la tubería estéril. Programa que por la cantidad apropiada de los medios de comunicación, y la puso para llenar un volumen 45uL en cada pozo. </li><li> Purgar el aire de la tubería y el colector con la característica de purga del robot hasta que los medios de comunicación se ve que proviene de cada pin del colector. </li><li> Rellene el número deseado de placas con medio LB con el qFill3. Cada placa tiene unos 20 segundos para completar. </li><li> La carga de las placas de la biblioteca y las placas nuevas en las áreas apropiadas del robot qPix2. Rellene los baños de limpieza con los reactivos adecuados, el 2% Micro90 en el baño trasero, autoclave agua destilada en el baño de media, el 80% de etanol en el baño principal. </li><li> Utilice la opción "replicar" el programa de la qPix2. En el software, seleccionar el número apropiado cabeza, y los tipos de platos de origen y destino de las placas. También estableció la cabeza para limpiar entre repeticiones, generalmente 6 ciclos en cada baño es suficiente. Capacidad de la máquina es de 10 platos a la vez, y se tarda aproximadamente 15 minutos para replicar a todos con una cabeza de alfiler 384 (o aproximadamente 50 minutos con una cabeza de alfiler 96). Nota: Hay una opción de "Stir Fuente" o "Stir destino". Se recomienda no utilizar estas opciones como los problemas han ocurrido previamente con nuestro robot utilizando. </li><li> Una vez que las placas se replican, crecen las placas a 37 ° C durante 24 horas en una caja de humedad. Debido a que estamos induciendo un alto número de copias de fosmid con la adición de arabinosa, los clones tienden a crecer más lentamente que no inducida clones. Retorno de las placas de la biblioteca a -80 ° C. Nota: La incubación de un cuadro de la humedad garantiza la evaporación de los medios de comunicación no se produce en los pozos en el borde de las placas, manteniendo un entorno uniforme para todos los pozos. </li><li> Limpie el robot qFill3 por primera purga de agua (~ 50 ml) y 80% de etanol (~ 50 ml). Desmontar los componentes, y limpiar y esterilizar en autoclave de la botella, la tapa y el tubo envuelto en papel de aluminio. </li></ol> 2. La medición del crecimiento de E. Clones coli <ol><li> Quitar las placas de 37 ° C incubadora. Retirar y reservar las tapas, placas y colocarla sobre la plataforma de carga siempre con la revista RapidStak, hasta un máximo de 25 placas. Nota: La placa en la parte inferior de la pila será el primero en ser leído. Asegúrese de no perder de vista el orden de los platos, ya que el software no registra esto. </li><li> Quitar una revista de la Stak rápida, asegúrese de que está vacía, y pulsar en la pila de platos para ser leído. Datos por el mango, y las placas de todos debe ser cargado en la revista. Cargar el cargador en el RapidStak. Nota: La revista tiene un pequeño tornillo en la esquina que indica que los pozos A1 esquina de las placas debe ir. La revista sólo se montará en el RapidStak en una orientación. </li><li> Abra el programa RE SkanIt en el ordenador conectado a las máquinas. Seleccione "Nueva sesión" con un nombre adecuado. Seleccione la opción "Corning fondo plano de 384 y placa" como el tipo de plato. </li><li> En el "Diseño de placa", seleccione el "Mago" botón, y quiero que añadir 384 incógnitas a su plato. </li><li> En el "Protocolo", seleccione el "Loop Bueno" y, a entrar para 384 pozos. Un "Loop Bueno" aparece en el flujo de árbol en el lado izquierdo de la pantalla. Seleccione el icono y haga clic para añadir "medición fotométrica". Lo puso a leer a 600 nm. </li><li> Guarde su protocolo con un nombre único, y cerrar el programa RE SkanIt. </li><li> En el equipo, abra el programa PolaraRS. </li><li> En la página principal habrá listado de los instrumentos conectados al dispositivo RapidStak. El VarioSkan debe estar en el lado izquierdo de la mesa. Bajo el título VarioSkan, habrá dos enlaces, "RunSession" y la "incubación". Haga clic en el "RunSession" opción. </li><li> Aparecerá una nueva ventana, la ventana de análisis, aparecerá con un diagrama de flujo en el medio. Seleccione la opción "RunSession" tema (debe ser el presente artículo solamente). En la parte derecha de la pantalla un menú desplegableaparecerá. Busque el nombre de su RE SkanIt salvo correr en este menú. Nota: No parece haber ningún orden racional a este menú. No es por orden alfabético o por fecha de añadido, o en relación con que en la computadora el protocolo se guarda. Esto significa que debe mirar a través de todos los protocolos antes de encontrar su propio, que es un dolor. </li><li> Una vez que haya seleccionado el protocolo, en la esquina superior derecha, haga clic en "Ejecutar este ensayo". </li><li> Una ventana pop-up, le pide que denotan que la revista va a utilizar como fuente, y que la revista está vacío. El cuadro inferior de la pantalla se corresponde con la revista delante. [Opcional: Se le pedirá que introduzca el número de placas de carga para determinar una estimación de la cantidad de tiempo que tomará. Esta estimación es normalmente muy lejos.] </li><li> Asegurar tanto la RapidStak VarioSkan y se encienden, y presiona "Aceptar". </li><li> El RapidStak se cargará automáticamente en sus placas en el lector de placas, lo que permite realizar mediciones continuas de las placas. Para leer 25 placas de aproximadamente 50 minutos. Nota: Se recomienda observar la carga en la primera placa VarioSkan para asegurar una alineación correcta de las máquinas. Si el RapidStak no se carga correctamente el lector de placas, el uso de la "pausa este ensayo" en la esquina superior derecha de la ventana PolaraRS. </li><li> Una vez que el VarioSkan se hace la lectura de todos los platos, quitar el cargador lleno y lo coloca en la plataforma de carga revista. Levante el rectángulo exterior de la plataforma, y ​​la revista debe deslizarse, dejando las placas de pie en una pila en el centro. Vuelva a colocar las tapas de las placas adecuadas. </li></ol> 3. Además de la mezcla de ensayo a cada plato <ol><li> Prepare la mezcla de ensayo utilizando acciones premade 10x de la mezcla de lisis (10% Triton X-100, 100mm ris, 10 mM EDTA) en tampón 50 mM de acetato de potasio a pH 5,5. Prepare un inventario de hasta 75mg/mL DNP-cellobioside sustrato en DMSO, asegurándose de que el sustrato esté completamente disuelta. Añadir DNP-cellobioside solución de reserva de mezcla de ensayo a una concentración final de 0.1mg/mL. Cada placa se utilizan aproximadamente 20 ml de la solución, además de hacer un adicional de 50 ml para permitir el volumen muerto. Nota: DNP-Cellobioside no es fácilmente soluble en agua, por lo que se disuelve en DMSO aumenta la solubilidad. La presencia de DMSO en la solución final del ensayo no tiene efectos observables. </li><li> Configurar el qFill3 como las instrucciones del fabricante con la botella de los medios de comunicación conectado al colector a través de la tubería estéril. Programa que por la cantidad apropiada de los medios de comunicación, y la puso para llenar un volumen 45uL en cada pozo. </li><li> Purgar el aire de la tubería y el colector con la característica de purga del robot hasta que los medios de comunicación se ve que proviene de cada pin del colector. </li><li> Agregue la mezcla de ensayo para cada plato con el qFill3. Cada placa tiene unos 20 segundos para completar. </li><li> Una vez que la mezcla de ensayo, se añade, se incuban las placas a 37 ° C en una caja de humedad durante 12-16 horas. Nota: El exceso de incubación de las placas una vez que la mezcla de ensayo se añade hará que la evaporación en los pozos exterior de la placa, lo cual generará mayores lecturas de absorbancia a la observada para los pozos en el interior. Esto se puede compensar mediante la incubación de las placas en una cámara húmeda. </li></ol> 4. Absorción de la lectura de los clones ensayados <ol><li> Quitar las placas de 37 ° C incubadora. Retirar y reservar las tapas, placas y colocarla sobre la plataforma de carga siempre con la revista RapidStak, hasta un máximo de 25 placas. Nota: La placa en la parte inferior de la pila será el primero en ser leído. Asegúrese de no perder de vista el orden de los platos, ya que el software no registra esto. </li><li> Quitar una revista de la Stak rápida, asegúrese de que está vacía, y pulsar en la pila de platos para ser leído. Datos por el mango, y las placas de todos debe ser cargado en la revista. Cargar el cargador en el RapidStak. Nota: La revista tiene un pequeño tornillo en la esquina que indica que los pozos A1 esquina de las placas debe ir. La revista sólo se montará en el RapidStak en una orientación. </li><li> Abra el programa RE SkanIt en el ordenador conectado a las máquinas. Seleccione "Nueva sesión" con un nombre adecuado. Seleccione la opción "Corning fondo plano de 384 y placa" como el tipo de plato. </li><li> En el "Diseño de placa", seleccione el "Mago" botón, y quiero que añadir 384 incógnitas a su plato. </li><li> En el "Protocolo", seleccione el "Loop Bueno" y, a entrar para 384 pozos. Un "Loop Bueno" aparece en el flujo de árbol en el lado izquierdo de la pantalla. Seleccione el icono y haga clic para añadir "medición fotométrica". Lo puso a leer a 400 nm. </li><li> Guarde su protocolo con un nombre único, y cerrar el programa RE SkanIt. </li><li> En el equipo, abra el programa PolaraRS. </li><li> En la página principal habrá listado de los instrumentos conectados al dispositivo RapidStak. El VarioSkan debe estar en el lado izquierdo de la mesa. Bajo el título VarioSkan, habrá dos enlaces, "RunSession" y Incubat "e ". Haga clic en el" RunSession "opción. </li><li> Aparecerá una nueva ventana, la ventana de análisis, aparecerá con un diagrama de flujo en el medio. Seleccione la opción "RunSession" tema (debe ser el presente artículo solamente). En la parte derecha de la pantalla un menú desplegable que aparece. Busque el nombre de su RE SkanIt salvo correr en este menú. </li><li> Una vez que haya seleccionado el protocolo, en la esquina superior derecha, haga clic en "Ejecutar este ensayo". </li><li> Una ventana pop-up, le pide que denotan que la revista va a utilizar como fuente, y que la revista está vacío. El cuadro inferior de la pantalla se corresponde con la revista delante. [Opcional: Se le pedirá que introduzca el número de placas de carga para determinar una estimación de la cantidad de tiempo que tomará. Esta estimación es normalmente muy lejos.] </li><li> Asegurar tanto la RapidStak VarioSkan y se encienden, y presiona "Aceptar" </li><li> El RapidStak se cargará automáticamente en sus placas en el lector de placas, lo que permite realizar mediciones continuas de las placas. Nota: Se recomienda observar la carga en la primera placa VarioSkan para asegurar una alineación correcta de las máquinas. Si el RapidStak no se carga correctamente el lector de placas, el uso de la "pausa este ensayo" en la esquina superior derecha de la ventana PolaraRS. </li><li> Una vez que el VarioSkan se hace la lectura de todos los platos, quitar el cargador lleno y lo coloca en la plataforma de carga revista. Levante el rectángulo exterior de la plataforma, y ​​la revista debe deslizarse, dejando las placas de pie en una pila en el centro. Las placas pueden ser eliminados de acuerdo a sus procedimientos de laboratorio. </li><li> Para exportar las lecturas de absorbancia, software de código abierto RE SkanIt, y elegir la opción "Abrir un archivo existente". </li><li> Seleccionar el directorio donde ha guardado la sesión, pulse el icono "+" para expandir la lista y bajo el título de la partida serán las opciones de la etiqueta "Contenedor de 1" a "Container N", dependiendo del número de placas. Seleccione la primera placa para ser analizados. </li><li> En la barra de menú en la parte superior de la página, seleccione "Procesamiento de Datos&gt; Informe / Exportar" </li><li> Elija las opciones deseadas para la exportación. Nota: yo normalmente seleccione "Diseño de placas" y "fotométrica" ​​datos para la exportación. </li><li> Haga clic en "Ver informe" y luego "Archivo&gt; Guardar". Seleccione el directorio deseado. El formato de salida es una hoja de cálculo Microsoft Excel </li></ol> 5. Resultados representante Un ejemplo de las lecturas de absorbancia a partir de una sola placa de 384 y que contiene un clon positivo se muestra en la Figura 2. Los clones positivos muestran un marcado aumento de la absorción por los que no expresan actividad de celulasa. Las diferencias en el tiempo del ensayo, la ubicación y en la placa, o la concentración de DNP (puede ser introducido mediante el filtrado sin disolver DNP) pueden afectar las lecturas absolutas de absorbancia. Lecturas de absorbancia relativa, como la diferencia de absorbancia por encima del promedio o media de la placa de columna, son un método más robusto de la identificación de clones positivos celulasa. Tras la identificación de clones positivos de las placas de la biblioteca, se recomienda para replicar todos los clones positivos en una nueva placa para la detección de secundaria. Esto elimina los efectos derivados de la ubicación y la variación o la placa y permite una comparación más directa entre los clones positivos. <img src="/files/ftp_upload/2461/2461fig1.jpg" alt="Figura 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 1"> Figura 1. Diagrama de flujo del ensayo de alto rendimiento para una biblioteca metagenómica clonado en E. coli y se almacenan a -80 ° C. <img src="/files/ftp_upload/2461/2461fig2.jpg" alt="Figura 2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 2"> Figura 2. Lecturas de absorbancia de una placa de 384 pocillos que contienen un clon positivo. Celulasa clones positivos se pueden identificar por absorción aumentado significativamente en los clones negativos.

<ol><li>Rubin, E. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genomics+of+cellulosic+biofuels%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Genomics of cellulosic biofuels.</a> Nature. 454, 841-845 (2008).</li>
<li>Voget, S., Steele, H. L., Streit, W. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterization+of+a+metagenome+derived+halotolerant+cellulase%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Characterization of a metagenome derived halotolerant cellulase.</a> J. Biotechnol. 126, 26-36 (2006).</li>
<li>Duan, C. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+and+partial+characterization+of+novel+genes+encoding+acidic+cellulases+from+metagenomes+of+buffalo+rumens%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Appl.+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Isolation and partial characterization of novel genes encoding acidic cellulases from metagenomes of buffalo rumens.</a> J. Appl. Microbiol. 107, 245-256 (2009).</li>
<li>Zhang, Y. H. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Outlook+for+cellulase+improvement%3A+Screening+and+selection+strategies%5BTitle%5D)+AND+%22Biotech.+Advances%22%5BJournal%5D)">Outlook for cellulase improvement: Screening and selection strategies.</a> Biotech. Advances. 24, 452-481 (2006).</li>
<li>Teather, R. M., Wood, P. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Use+of+congo+red-polysaccharide+interactions+in+enumeration+and+characterization+of+cellulolytic+bacteria+from+the+bovine+rumen%5BTitle%5D)+AND+%22Appl.+And+Environ.+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Use of congo red-polysaccharide interactions in enumeration and characterization of cellulolytic bacteria from the bovine rumen.</a> Appl. And Environ. Microbiol. 43, 777-780 (1982).</li>
<li>Sharrock, K. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cellulase+assay+methods%3A+a+review%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biochem+and+Biophys+Methods%22%5BJournal%5D)">Cellulase assay methods: a review.</a> J. Biochem and Biophys Methods. 17, 81-106 (1988).</li>
<li>Kasana, R. C., Salwan, R., Dhar, H., Dutt, S., Gulati, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+rapid+and+easy+method+for+detection+of+microbial+cellulases+on+agar+plates+using+Gram%27s+Iodine%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Microbiology%22%5BJournal%5D)">A rapid and easy method for detection of microbial cellulases on agar plates using Gram's Iodine.</a> Curr. Microbiology. 57, 503-507 (2008).</li>
<li>Huang, J. S., Tang, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sensitive+assay+for+cellulase+and+dextranase%5BTitle%5D)+AND+%22Anal.+Biochem%22%5BJournal%5D)">Sensitive assay for cellulase and dextranase.</a> Anal. Biochem. 73, 369-377 (1976).</li>
<li>Tull, D., Withers, S. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanisms+of+cellulases+and+xylanases%3A+A+detailed+kinetic+study+of+the+exo-beta-1%2C4-glycanase+from+Cellulomonas+fimi%5BTitle%5D)+AND+%22Biochemistry%22%5BJournal%5D)">Mechanisms of cellulases and xylanases: A detailed kinetic study of the exo-beta-1,4-glycanase from Cellulomonas fimi.</a> Biochemistry. 33, 6363-6370 (1994).</li>
<li>Martinez, A., Bradley, A. S., Waldbauer, J. R., Summons, R. E., DeLong, E. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Proteorhodopsin+photosystem+gene+expression+enables+photophosphorylation+in+a+heterologous+host%5BTitle%5D)+AND+%22PNAS%22%5BJournal%5D)">Proteorhodopsin photosystem gene expression enables photophosphorylation in a heterologous host.</a> PNAS. 104, 5590-5595 (2007).</li>
<li>Taupp, M., Lee, S., Hawley, A., Yang, J., Hallam, S. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Large+Insert+Environmental+Genomic+Library+Production%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Large Insert Environmental Genomic Library Production.</a> J Vis Exp. , (2009).</li>
<li>Martinez, A., Tyson, G. W., DeLong, E. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Widespread+known+and+novel+phosphonate+utilization+pathways+in+marine+bacteria+revealed+by+functional+screening+and+metagenomic+analyses%5BTitle%5D)+AND+%22Environ+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Widespread known and novel phosphonate utilization pathways in marine bacteria revealed by functional screening and metagenomic analyses.</a> Environ Microbiol. 12, 222-238 (2010).</li>
<li>Wild, J., Hradecna, Z., Szybalski, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Conditionally+amplifiable+BACs%3A+Switching+from+single-copy+to+high-copy+vectors+and+genomic+clones%5BTitle%5D)+AND+%22Genome+Research%22%5BJournal%5D)">Conditionally amplifiable BACs: Switching from single-copy to high-copy vectors and genomic clones.</a> Genome Research. 12, 1434-1444 (2002).</li>
<li>Johnson, E. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sacchirification+of+complex+cellulosic+substrates+by+the+cellulase+system+from+Clostridium+thermocellum%5BTitle%5D)+AND+%22Appl+Environ+Microbiology%22%5BJournal%5D)">Sacchirification of complex cellulosic substrates by the cellulase system from Clostridium thermocellum.</a> Appl Environ Microbiology. 43, 1125-1132 (1982).</li>
<li>Stutzenberger, F. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cellulase+Production+by+Thermomonospora+curvata+isolated+from+municipal+solid+waste+compost%5BTitle%5D)+AND+%22Appl+Environ+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Cellulase Production by Thermomonospora curvata isolated from municipal solid waste compost.</a> Appl Environ Microbiol. 22, 147-152 (1971).</li>
</ol>

Una pantalla de alto rendimiento para la detección rápida de la actividad celulolítica de una biblioteca genómica de gran metagenómica insertar ADN expresado en E. coli se describe en este protocolo. Este método es una mejora con respecto a la prueba CMC / Rojo Congo de uso común en la literatura. Es una solución basada, y permite una olla de detección química en placas de 384 pocillos, con el resultado final de las lecturas de absorbancia de un lector de placas que permite el análisis cuantitativo. La automati...

<table><tbody><tr><td>qPix2</td><td>Genetix</td><td></td><td>Con cabezal de rejilla de 384 pines</td></tr><tr><td>qFill3</td><td>Genetix</td><td></td><td>Con manifold de 384 pocillos</td></tr><tr><td>Varioskan</td><td>Thermo Fisher Scientific, Inc.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>RapidStak</td><td>Thermo Fisher Scientific, Inc.</td><td></td><td>Conectado al Varioskan</td></tr><tr><td>Detergente Micro90</td><td>Cole-Parmer</td><td>18100-00</td><td>Diluido al 2% en agua</td></tr><tr><td>Ethanol</td><td>Major Lab Supplier</td><td></td><td>Diluido al 80% en agua</td></tr><tr><td>Cloranfenicol</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>C0378</td><td>12,5 mg/mL en etanol</td></tr><tr><td>Caldo LB, Miller</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP1426-2</td><td>25 g/L, autoclavado</td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Placas de fondo plano de 384 pocillos</td><td>Corning</td><td>3680</td><td></td></tr><tr><td>L-(+)-Arafinosa</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A3256</td><td>100 mg/mL en agua</td></tr><tr><td>Acetato de potasio</td><td>Fisher Scientific</td><td>P171</td><td>50 mM en agua, autoclavado, ajustado a pH 5,5 con HCl</td></tr><tr><td>Triton X-100</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP151</td><td></td></tr><tr><td>Clorhidrato de Trizma</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T3253</td><td>En solución tampón TE, 100 mM</td></tr><tr><td>Sal disódica de EDTA</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>E5134</td><td>En solución tampón TE, 10 mM</td></tr><tr><td>2,4-dinitrofenil celobiosido</td><td></td><td></td><td>Proporcionado por el Dr. Steve Withers, UBC</td></tr><tr><td>Dietilsulfóxido</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D8418</td><td></td></tr></tbody></table>

una pantalla de alto rendimiento para biominería actividad de celulasa de bibliotecas metagenómicas

A High Throughput Screen for Biomining Cellulase Activity from Metagenomic Libraries

Celulosa, la fuente más abundante de carbono orgánico en el planeta, tiene una amplia gama de aplicaciones industriales con creciente énfasis en la producción de biocombustibles 1. Métodos químicos para modificar o degradar la celulosa por lo general requieren ácidos fuertes y altas temperaturas. Por lo tanto, los métodos enzimáticos se han convertido en prominente en el proceso de bioconversión. Mientras que la identificación de las celulasas activa de los aislamientos de bacterias y hongos ha sido algo eficaz, la gran mayoría de los microbios en la naturaleza resistir el cultivo de laboratorio. Genómica medioambiental, también conocido como enfoques metagenómica, la selección tiene una gran promesa en la reducción de la brecha de cultivo en la búsqueda de enzimas bioconversión novela. Métodos de detección metagenómica ha recuperado celulasas novela de entornos tan variados como los suelos 2, 3 y búfalos rumen de las termitas traseras-gut 4 utilizando carboximetilcelulosa (CMC) placas de agar se tiñeron con colorante rojo Congo (basado en el método de Teatro y Madera 5). Sin embargo, el método CMC está limitado en el rendimiento, no es cuantitativo y se manifiesta una señal de baja a ruido 6. Otros métodos se han reportado 7,8, pero cada uno utiliza una placa de agar-ensayo basado, que es indeseable para la selección de alto rendimiento de las grandes bibliotecas de insertar genómica. Aquí les presentamos una solución basada en la pantalla de actividad de celulasa usando un dinitrofenol cromogénico (DNP)-cellobioside sustrato 9. Nuestra biblioteca fue clonado en el control de copia PCC1 fosmid para aumentar la sensibilidad del ensayo a través de la inducción de copiar el número 10. El método utiliza una olla de la química en 384 pocillos con la lectura final, siempre como una medida de la absorbancia. Esta lectura es cuantitativo, sensible y automatizada con un rendimiento de hasta 100 veces las placas de 384 pocillos al día usando un manejador de líquidos y lector de placas con sistema conectado de apilamiento.

Este protocolo describe una pantalla de alto rendimiento para la actividad celulolítica de una biblioteca metagenómica expresado en Escherichia coli. La pantalla es la solución de base y altamente automatizado, y utiliza una olla de la química en microplacas de 384 y con la lectura final como una medida de la absorbancia.

Una pantalla de alto rendimiento para Biominería actividad de celulasa de bibliotecas metagenómicas

La celulosa, la fuente de carbono orgánico más abundante del planeta, tiene aplicaciones industriales muy diversas, con un énfasis creciente en los biocombustibles...

El objetivo general de este procedimiento es identificar clones que expresen celulasa a partir de una biblioteca metagenómica. Esto se logra primero replicando una biblioteca metagenómica previamente construida mediante el uso de un robot, seguido de la incubación de la biblioteca replicada a 37 grados Celsius durante 24 horas. Se mide el crecimiento de los clones de E. coli, y luego se añaden buffer de lisis y sustrato a la biblioteca replicada.Finalmente, se pueden obtener resultados que muestran la actividad de celulasa mediante mediciones colorimétricas de absorbancia usando un lector de placas. Hola, soy Keith del laboratorio de Steven Hallam en el Departamento de Microbiología e Inmunología de la Universidad de Columbia Británica. Hoy les mostraremos un procedimiento para la selección funcional de alto rendimiento de bibliotecas metagenómicas.Utilizamos este procedimiento en nuestro laboratorio para estudiar la actividad de la celulasa biomin a partir de bibliotecas metagenómicas. Así que comencemos. Antes de iniciar este protocolo, prepare una biblioteca metagenómica almacenada en formato de placa de 384 pocillos.Este estudio utilizó el vector de control de una copia PCC SMI

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Investigación

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Biology

Biología

A gran escala de pantallas de bibliotecas metagenómicas

Hemos desarrollado completa e imparcial en todo el genoma para comprender las pantallas de genes de drogas y las interacciones genético-ambientales. Métodos para la detección de estas colecciones mutantes se presentan.

Pantallas competitiva Genómica de Bibliotecas de levadura con código de barras

Se describe un método de bajo costo, de alto rendimiento para la detección de hongos en la actividad...

Cribado de alto rendimiento de la actividad endoglucanasa por hongos en Escherichia coli</em

Un método simple, rápido para determinar el potencial de la sacarificación de un gran número de muestras de biomasa vegetal se describe. La plataforma automatizada para este análisis consiste en la preparación de la biomasa vegetal para su análisis en placas de 96 pozos y la realización posterior de pretratamiento, hidrólisis y la cuantificación de los azúcares liberados.

De alto rendimiento de sacarificación de ensayo para materiales lignocelulósicos

Fuente: Kim, H. et al., Cribado Multienzimático usando un sistema de cribado enzimático genético de alto consumo. J. Vis. Exp. (2016)Este vídeo demuestra un método de cribado genético para detectar la expresión enzimática utilizando bibliotecas metagenómicas de fosmid y sustratos cromogénicos. La citometría de flujo identifica y aísla células individuales que producen productos coloreados, permitiendo la selección de alto rendimiento de células activas que expresan enzimas.

Detección de la expresión de enzimas objetivo en células bacterianas genéticamente modificadas

Las plantas de tabaco se usaron para producir una celulasa fúngica, TrCel5A, a través de un sistema de expresión transitorio. La expresión podría ser monitoreado usando una proteína de fusión fluorescente, y la actividad de la proteína se caracterizó después de la expresión.

Expresión recombinante de celulasa de Cel5A<em&gt; Trichoderma reesei</em&gt; En plantas de tabaco

Se evalúan la estructura de la pared celular de la planta y los rasgos químicos para identificar las materias primas ideales para biocombustibles y biomateriales. Los métodos estándar tienen limitaciones cuando se aplican a grandes conjuntos de datos. Estos métodos de pretratamiento de alto rendimiento, sacarificación enzimática y espectrometría de masas de haz molecular de pirólisis comparan un gran número de muestras de biomasa con una disminución del tiempo y el costo experimental.

Selección de alto rendimiento de las Variaciones obstinación en lignocelulósica Biomasa: Total lignina, lignina Monómeros y enzimática Azúcar de lanzamiento

Este trabajo presenta un método de cribado de alto rendimiento utilizando un sistema universal de cribado genético de enzimas que teóricamente puede aplicarse a más de 200 enzimas. En este caso, el sistema de cribado único identifica tres enzimas diferentes (lipasa, celulasa y fosfatasa alcalina) simplemente cambiando el sustrato utilizado (acetato de p-nitrofenilo, p-nitrofenil-β-D-celobiósido y fosfato de fenilo).

Multienzimático de detección sistemática mediante un sistema de cribado genético de la enzima de alto rendimiento

Se describe un ensayo de alto rendimiento para el cribado enzimático. Este kit de ensayo multiplexado y listo para usar se compone de sustratos Chromogenic Polymer Hydrogel (CPH) preseleccionados y sustratos C insolubles complejos C hromogenicB iomass (ICB). Las enzimas diana son endoenzimas degradadoras de polisacáridos y proteasas.

La selección de alto rendimiento de los hidratos de carbono-El uso de enzimas que degradan la novela insoluble cromogénico sustrato de ensayo Kits

La tecnología CRISPR-Cas9 proporciona un método eficiente para editar con precisión el genoma de mamíferos en cualquier tipo de célula y representa un medio novedoso para realizar pantallas genéticas en todo el genoma. Aquí se proporciona un protocolo detallado que analiza los pasos necesarios para el buen rendimiento de las pantallas CRISPR-Cas9 agrupadas para todo el genoma.

Pantallas genéticas basadas en CRISPR en células de mamíferos

Este protocolo presenta un flujo de trabajo estándar de cribado de alto rendimiento para microorganismos industriales. Consiste en construir una biblioteca mutante mediante mutagénesis ARTP, realizar cribado positivo de gotas con microfluidica automatizada y, posteriormente, verificar los resultados. La fiabilidad del flujo de trabajo se validó mediante el cribado de cepas de B. coagulans de alto rendimiento.

Cribado de alto rendimiento de mutantes de Bacillus coagulans hiperproductores de ácido L-láctico utilizando una plataforma microfluídica automatizada de gotas

Descubre un método de cribado automatizado para identificar clones expresores de celulasa en bibliotecas metagenómicas usando Escherichia coli. Esta técnica permite medir la actividad celulolítica mediante lecturas de absorbancia.

Una pantalla de alto rendimiento para Biominería actividad de celulasa de bibliotecas metagenómicas

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