Name: ampliPHOX colorimétrico de detección de un microarray de ADN para la influenza (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-06-09T12:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 32 s
Description: Aprende a detectar subtipos virales de influenza mediante el método ampliPHOX colorimétrico con microarrays de ADN. Esta técnica de fotopolimerización ofrece resultados visibles rápidos y económicos para diagnóstico viral.

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InDevR reconoce NIH / NIAID U01AI070276 y R43AI077112 para la financiación de este trabajo.

1. Muestra de amplificación mediante RT-PCR <ol><li> Extraer el ARN viral a partir de material clínico o una. Aislado viral con el virus de Qiagen MinElute Kit girar en conjunto con la plataforma automatizada QIAcube extracción de ácidos nucleicos Las extracciones se llevan a cabo en 200 muestras l con un volumen de elución final de 60 microlitros. Extractos de almacenar a -70 ° C o menos para su uso posterior. </li><li> En una plantilla libre de la zona, preparar la mezcla de RT-PCR maestro en el hielo, según el protocolo del fabricante. Para incorporar biotina durante la RT-PCR, utilice una mezcla de dNTP biotinilado en lugar de la mezcla de dNTP suministrado por el fabricante. El costo de utilizar una mezcla de dNTP biotina es menos de $ 1 USD / ensayo. Métodos alternativos de incorporación de biotina como la utilización de una cartilla con biotina también se puede utilizar. Añadir cartilla mezcla a una concentración final de 1,0 M para la gripe A, 1,0 M de la gripe B, y 0,14 M para el control interno. La gripe A primer conjunto amplifica el segmento del gen de la matriz (1032 producto nt) y el conjunto B de imprimación gripe amplifica un segmento de gen no estructural (811 producto nt). Cada conjunto de cebadores FluChip contiene una imprimación con un 5 'grupo fosforilo para facilitar la generación de ADN de cadena sencilla a través de la digestión enzimática con exonucleasa lambda después de PCR. El producto resultante de cadena simple requiere mucho menos tiempo de hibridación que el equivalente de doble cadena y reduce significativamente el tiempo de ensayo general. Una mezcla previamente preparada de estas cartillas, así como el ARN de control interno de la plantilla están disponibles para los investigadores interesados ​​InDevR sobre una base limitada. </li><li> Agitar brevemente y distribución de 18 l de la mezcla maestra en tubos de pared delgada PCR. </li><li> La transferencia de los tubos en hielo a un área de trabajo adecuada para la adición de plantillas, la plantilla y añadir 2 l de cada tubo de reacción. </li><li> Transferencia de tubos PCR de un termociclador y ejecute el siguiente perfil térmico: la transcripción inversa a 50 ° C durante 30 minutos, la inactivación enzimática / activación a 95 ° C durante 15 min, 40 ciclos de PCR de 95 ° C durante 30 s, 55 ° C durante 30 años, y 72 ° C durante 1 minuto, y una extensión final a 72 ° C durante 10 min. </li></ol> 2. La hibridación de RT-PCR para microarrays de baja densidad <ol><li> Con el fin de generar una sola cadena de ADN para la hibridación FluChip, preparar la mezcla de digestión enzimática mediante la combinación de 1,0 l de enzimas exonucleasa lambda, 2,2 l de tampón de reacción que acompaña, y un 0,8 l de agua libre de nucleasa. Estas cantidades son para una sola muestra, pero puede ser simplemente reducido el número total de muestras para ser digeridos. Extraer muestras del termociclador y añadir 4 l de la mezcla preparada a cada reacción de digerir la cadena fosforilada del producto de PCR. Devolver las muestras para el termociclador y el programa del termociclador a 37 grados centígrados durante 15 minutos seguido de 95 grados centígrados durante 10 minutos para completar la digestión enzimática y los pasos de calor fragmentación. </li><li> Los microarrays de la gripe personalizados utilizados están impresos en láminas de vidrio aldehídos funcionalizados por Applied Microarrays Inc. (Tempe, AZ). 5'-amino terminada la captura de secuencias se combinan con un buffer optimizado detectar e impresos a una concentración final de 20 mM (a excepción de la secuencia de control positivo que, además, tiene una modificación 3'-biotina y se vio a una concentración final de 500 nM) . Un contacto no manchar el método utilizado, con un diámetro del punto óptimo de 300 micras y un centro de paso del centro de 700 micras. </li><li> Quitar microarrays de la caja de almacenamiento y aplicar un solo uso de pozos en todo el hibridación de microarrays mediante la eliminación de la lámina protectora y presionar firmemente alrededor del perímetro de bien. </li><li> Colocar los portaobjetos en un recipiente de lavado que contiene 110 ml de agua purificada para un 5 minutos antes de la hibridación de lavado utilizando un agitador orbital a 60-90 rpm. Seca la matriz tocando suavemente un limpiador de tejidos para el borde del pozo y permitiendo que el agua se evacua. </li><li> Combine 22 l de tampón de hibridación 2x ​​con cada uno de los productos fragmentados ssDNA, y una pipeta 40 ml de las soluciones de hibridación en los pozos de microarrays. </li><li> Permita que se desliza en la hibridación en cámara húmeda cerrada durante 60 minutos. </li><li> Eliminar las diapositivas de la cámara de humedad, una breve aclaración matrices con el tampón de lavado D en una botella de enjuague antes de colocar en el estante de diapositivas. Normalmente, el volumen de enjuague de tampón de lavado D es de 2 ml por cada matriz. Coloque la parrilla de diapositivas con diapositivas en un cubo de lavado que contiene 110 ml de tampón A. Wash bin Colocar en un agitador orbital a 60-90 rpm durante 1 minuto. </li><li> Quitar bastidor de diapositivas de tampón de lavado A, brevemente enjuague con el tampón de lavado D, rack de transferencia de diapositivas a un bin que contiene el tampón de lavado B, y agitar a 60-90 rpm durante 5 minutos. </li><li> Seque la matriz en cada diapositiva, y el lugar se desliza en la cámara de secado de humedad en la preparación de medidas ampliPHOX detección colorimétrica. </li></ol> 3. ampliPHOX: etiquetado de los productos híbridos y fichas de calibración con ampliTAG <ol><li> Combinar 10 l de ampliTAG, 20 l de tampón ampliTAG 2x, y 10 l de agua purificada para cada matriz para ser procesado. Volúmenes de reactivos puede ser simplemente reducido el número total de muestras. Asegúrese de preparar la mezcla de etiquetado suficiente para dar cuenta de todas las matrices de la muestra y las matrices de calibración necesarias. El número de fichas de calibración necesarios depende de si está realizando una calibración completa (para un nuevo instrumento o nuevo lote de reactivos), o simplemente un instrumento de comprobación. Para una calibración completa, 3 fichas de calibración deben ser etiquetados, y de un cheque de reactivo, a un chip de calibración de un solo deben ser etiquetados. Tenga en cuenta que antes de que las matrices de calibración están etiquetados, deben pasar por la etapa de lavado, antes de la hibridación que se describió anteriormente para los arreglos de la influenza. </li><li> Transferencia de 40 l de mezcla de etiqueta para cada conjunto y permite el etiquetado reacción tenga lugar en una cámara húmeda cerrada durante 5 minutos. </li><li> Lavar inmediatamente matrices con el tampón de lavado D en una botella de enjuague antes de colocar los portaobjetos en una gradilla para portaobjetos. Transferencia de rack en bandeja que contiene 110 ml de tampón de lavado C y agitar a 60-90 rpm durante 5 minutos. </li><li> El uso de un bin segundo lavado con agua purificada, realizar tres caídas sucesivas de agua breve para eliminar los residuos de sal. Seca las matrices tocando suavemente un limpiador de tejidos para el borde de los pozos. </li><li> Los microarrays están debidamente etiquetados con ampliTAG, y el resto del procedimiento de detección ampliPHOX se puede realizar. Fotoactivación y las imágenes de las matrices de etiquetado debe ser completado dentro de 24 horas, y las matrices se pueden almacenar en una caja de la oscuridad hasta su uso. </li></ol> 4. ampliPHOX: calibración, amplificación de la señal, y la imagen <ol><li> A su vez ampliPHOX lector y asegúrese de software ampliVIEW está listo para la fotoactivación. </li><li> Determinar el tiempo de fotoactivación óptimo el uso de chips de calibración. Además de la breve introducción que sigue, este procedimiento también se describen en detalle en el Manual de Operación ampliPHOX. Las fichas de calibración contiene una serie de diluciones de una secuencia de control de biotina que se utilizan para optimizar la sensibilidad de la prueba, con el objetivo de maximizar el número de filas de la ficha de calibración que produce una señal positiva según lo determinado por el software. </li><li> Quitar ampliPHY de 4 ° C, permite a la temperatura ambiente, y agitar brevemente para mezclar. Pipeta de 3 l de ampliPHY potenciador en el vial ampliPHY, y agitar bien durante 10 segundos. </li><li> De manera uniforme la transferencia de 40 ml de solución ampliPHY en el microarray y que contiene el ampliTAG marcado amplia, asegurando que no hay burbujas. Cerrar el vial ampliPHY entre cada aplicación. Insertar la diapositiva de microarrays en la bahía de fotoactivación del lector ampliPHOX. </li><li> Para la matriz de la primera calibración, el uso del tiempo de fotoactivación por defecto en el 'Time' caja en el panel izquierdo del software, y haga clic en el verde botón "Inicio" para iniciar la fotoactivación. Una vez terminado, quitar la matriz y enjuague con agua purificada para eliminar el exceso de ampliPHY. Clara la formación de polímeros en algunos de los puntos debe ser visible. </li><li> Permita que los puntos de polímero que se seque durante 2 minutos, luego distribuir dos gotas de ampliRED en la matriz y permiten tinción para continuar durante 2 minutos. </li><li> Luego, enjuague rápidamente microarrays con agua purificada y seca con un pañuelo limpie. </li><li> Introduzca los microarrays en la bahía de imágenes del lector ampliPHOX, y haga clic en el botón "nueva imagen de captura" en la pestaña de imágenes. Una vez fotografiado, ajustar la cosecha y guardar la imagen. </li><li> En la ficha de análisis, seleccione la máscara de chip de calibración y el botón "Auto de colocación" para iniciar el análisis. El software automáticamente se producirá un "Resumen" que muestra los resultados cuantificados. Basándose en estos resultados, el tiempo de fotoactivación tiene 10 segundos para que la matriz de calibración de segundo y se repite el procedimiento. </li><li> Una vez que el tiempo óptimo de fotoactivación se ha determinado, las matrices de la muestra puede ser procesada usando la amplificación de la señal misma imagen y el protocolo utilizado para la calibración de las matrices. </li><li> Una vez que la imagen es capturada por los paneles de la muestra, una máscara para su distribución amplia en particular, como el diseño conjunto de influenza descrito aquí puede ser created.The ampliVIEW software es capaz de realizar análisis automatizado de imágenes y generación de resultados de la gripe de subtipos para cada muestra. </li></ol> 5. Los resultados representativos: <img src="/files/ftp_upload/2682/2682fig1.jpg" alt="Figura 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 1"> Figura 1. Esquema del método de detección ampliPHOX colorimétrico. (A) ADN diana biotinilado se hibrida con cada punto de la matriz, y (B) marcadas con ampliTAG. (C) ampliPHY solución se añade, y (D) expone a la luz para formar manchas visibles polímero. (E) Los puntos de polímero se forman posteriormente teñidas con un colorante no tóxico para mejorar el contraste. CONTENIDO "&gt; <img src="/files/ftp_upload/2682/2682fig2.jpg" alt="Figura 2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 2"> Figura 2. (A) La influenza de baja densidad de diseño de microarrays. Secuencias de 1-7 y 10-13 de la gripe A de destino, y las secuencias de 8, 9 objetivo de la gripe B. (B) ampliPHOX y (C) imágenes de fluorescencia de una novela de la gripe H1N1 2009 ("gripe porcina") que indiquen el mismo patrón de detección tanto por métodos. <img src="/files/ftp_upload/2682/2682fig3.jpg" alt="Figura 3" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 3"> Figura 3. De izquierda a derecha las imágenes, el representante de ampliPHOX para la influenza A H3N2, H1N1 de origen humano, 2009 H1N1 (de origen porcino), y una muestra negativa. Todos los 3 subtipos muestran patrones visualmente distintos en la matriz. Observe en el negativo que sólo el control interno de MS2 se ve, lo que indica la amplificación de RT-PCR no se inhibió.

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</ol>

Todos los autores son empleados de InDevR, Inc., una entidad sin fines de lucro. InDevR está comercializando la tecnología ampliPHOX aquí se describen.

La tecnología de detección de ampliPHOX colorimétrico que aquí se presenta es una alternativa rápida y económica para la detección de un solo color de fluorescencia para aplicaciones de baja densidad de microarrays. Se muestra esquemáticamente en la Figura 1, el principio de detección se basa en el uso de una etiqueta fotoiniciador (1B). En presencia de una solución de monómero que contiene (1C), exposición a la luz hace que el fotoiniciador (ampliTAG) para desencadenar una reacción de polimerización só...

<table border="1"><tbody><tr><th> Reactivo / equipo </th><th> Fabricante </th><th> Catálogo # </th><th> Comentarios </th></tr><tr><td> Qiagen Virus MinElute girar Kit </td><td> Qiagen </td><td> 57704 </td><td> única de 60 l de elución </td></tr><tr><td> QIAcube </td><td> Qiagen </td><td> 9001292 </td><td> opcional </td></tr><tr><td> ABI 9800 termociclador rápido </td><td> Applied Biosystems </td><td> 4441166 </td><td></td></tr><tr><td> Qiagen OneStep RT-PCR kit </td><td> Qiagen </td><td> 210210 </td><td> Kit dNTPs no se utiliza </td></tr><tr><td> Buffer 2x Spotting </td><td> InDevR Inc. </td><td> MI-5007 </td><td></td></tr><tr><td> Biotinilado dNTP Mix </td><td> InDevR Inc. </td><td> MI-5009 </td><td></td></tr><tr><td> Lambda exonucleasa </td><td> Epicentro Biotecnologías </td><td> LE032K </td><td> 2500 U, 10U/μl </td></tr><tr><td> FluChip mezcla de cebadores </td><td> InDevR </td><td> N / A </td><td> todavía no está disponible para la venta </td></tr><tr><td> Agitador orbital </td><td> Madell Tecnología </td><td> ZD-9556-A </td><td></td></tr><tr><td> Lávese las Papeleras </td><td> InDevR Inc. </td><td> MI-4002 </td><td></td></tr><tr><td> Lave Bastidores </td><td> InDevR Inc. </td><td> MI-4003 </td><td></td></tr><tr><td> Tampón de hibridación 2x </td><td> InDevR Inc. </td><td> MI-5004 </td><td></td></tr><tr><td> Fichas de calibración </td><td> InDevR Inc. </td><td> AP-5006 </td><td></td></tr><tr><td> Lave Buffers AD </td><td> InDevR Inc. </td><td> MI-5005 </td><td></td></tr><tr><td> ampliRED </td><td> InDevR Inc. </td><td> AP-5004 </td><td></td></tr><tr><td> ampliTAG </td><td> InDevR Inc. </td><td> AP-5001 </td><td></td></tr><tr><td> 2x ampliTAG Buffer </td><td> InDevR Inc. </td><td> AP-5002 </td><td></td></tr><tr><td> ampliPHY, ampliPHY potenciador </td><td> InDevR Inc. </td><td> AP-5003 </td><td></td></tr></tbody></table>

ampliphox colorimétrico de detección de un microarray de adn para la influenza

ampliPHOX Colorimetric Detection on a DNA Microarray for Influenza

Microarrays de ADN se han convertido en una poderosa herramienta para la detección de patógenos. 1.5 Por ejemplo, muchos ejemplos de la capacidad de escribir y subtipo de virus de la influenza se ha demostrado. 11.6 La identificación y subtipificación de la influenza en microarrays de ADN tiene aplicaciones tanto en público la salud y la clínica para la detección temprana, intervención rápida, y minimizar el impacto de una pandemia de influenza. Fluorescencia tradicionales es actualmente el método de detección de microarrays de uso más común. Sin embargo, como la tecnología de microarrays avanza hacia el uso clínico, una sustitución de instrumentos caros, con tecnología de bajo costo de detección que presentan características de rendimiento similares a la fluorescencia se hacen ensayos de microarrays más atractivo y rentable. La tecnología de detección colorimétrica ampliPHOX está diseñado para aplicaciones de investigación, y tiene un límite de detección dentro de un orden de magnitud de fluorescencia tradicionales 11, con una ventaja de ser un aproximado de diez veces menor coste en comparación con el instrumento de los escáneres de microarrays confocal de fluorescencia necesaria para microarrays detección. Otra ventaja es el tamaño compacto del instrumento que permite la portabilidad y flexibilidad, a diferencia de los instrumentos tradicionales de la fluorescencia. Debido a que la tecnología de polimerización no es tan intrínsecamente lineal, como la detección por fluorescencia, sin embargo, es el más adecuado para aplicaciones de baja densidad de microarrays en el que se desea una respuesta sí / no a la presencia de una cierta secuencia, por ejemplo, para matrices de detección de patógenos. En la actualidad la densidad de punto máximo compatible con la detección de ampliPHOX es de ~ 1800 puntos / matriz. Debido a las limitaciones de densidad lugar, una mayor densidad de microarrays no son adecuados para la detección de ampliPHOX. A continuación, presentamos la tecnología de detección colorimétrica ampliPHOX como un método de amplificación de la señal en un microarray de baja densidad para la detección y caracterización de los virus de la influenza (FluChip). Aunque este protocolo utiliza el FluChip (un microarray de ADN) como una aplicación específica de ampliPHOX detección, los microarrays de la incorporación de meta con biotina puede ser etiquetada y se detecta de manera similar. El diseño de microarrays y biotinilación de la meta de ser capturados son responsabilidad del usuario. Una vez que el objetivo de biotina ha sido capturado en la matriz, la detección ampliPHOX se puede realizar mediante el etiquetado de la primera serie con un conjugado de estreptavidina-etiqueta (ampliTAG). Tras la exposición de luz mediante el instrumento ampliPHOX Reader, la polimerización de una solución de monómero (ampliPHY) sólo se produce en las regiones que contienen ampliTAG marcado objetivos. El polímero formado puede ser posteriormente se tiñeron con una solución no tóxica para mejorar el contraste visual, seguido por imágenes y análisis con un paquete de software simple (ampliVIEW). El ensayo FluChip, desde la no-extraídos de la muestra de resultados se puede realizar en unas 6 horas, y las medidas de detección ampliPHOX descrito anteriormente se puede completar en unos 30 min.

ampliPHOX tecnología de detección colorimétrica se presenta como una alternativa económica a la detección por fluorescencia de microarrays. Sobre la base de fotopolimerización, ampliPHOX produce manchas de polímero sólido visible a simple vista en tan sólo unos minutos. Resultados son imágenes e interpretado de forma automática con un paquete de software simple pero poderosa.

ampliPHOX colorimétrico de detección de un microarray de ADN para la influenza

Los microarrays de ADN han surgido como una herramienta poderosa para la detección de patógenos.1-5 Por ejemplo, existen numerosos casos que demuestran la capacidad de tipificar y subtipificar el virus de la influenza...

El objetivo general del siguiente experimento consiste en utilizar un método nuevo y rápido de amplificación de señales para detectar y caracterizar subtipos virales de la gripe en la plataforma de microarreglo de baja densidad denominada «flu chip». Esto se logra incorporando DTP biotinilados y utilizando cebadores con un extremo fosfato en la posición cinco prima para amplificar el segmento del gen matriz y un segmento del gen no estructural a partir de extractos de ARN de influenza. A la PCR le sigue una digestión enzimática y fragmentación para generar un producto viral amplificado, monocatenario, biotinilado y corto, el cual luego se hibrida con el arreglo tras la hibridación.La detección Fox utiliza la fotopolimerización para generar grandes manchas poliméricas donde ocurre la hibridación, y se emplean patrones diferenciales de hibridación para detectar subtipos virales de la influenza. La principal ventaja de esta técnica frente a métodos existentes como la detección estándar mediante fluorescencia es que es bastante económica y proporciona un resultado rápido visible a simple vista, con una sensibilidad analítica similar a la de la fluorescencia. Aunque este método puede ap

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Research

Investigación

JoVE Journal

Immunology and Infection

Inmunología e Infección

El Virochip es un microarray de pan-viral diseñada para detectar de forma simultánea todos los virus conocidos, así como nuevos virus sobre la base de la homología de secuencia conservada. Aquí se demuestra cómo ejecutar un ensayo de Virochip para analizar las muestras clínicas para determinar la presencia de virus conocidos y desconocidos.

El uso de un ensayo de microarrays Pan-viral (Virochip) a la pantalla de muestras clínicas de los patógenos virales

Este método describe el uso de infrarrojos sistema colorante formación de imágenes basada para la detección de H1N1 en bronquioalveolar lavado (BAL) de líquidos de los ratones infectados en una alta sensibilidad. Esta metodología se puede realizar en un 96 - o 384-así placa, requiere &lt;10 l de volumen material de prueba y tiene el potencial para el cribado simultáneo de múltiples patógenos.

De alto rendimiento Método de detección de virus de la influenza

En este video, demostramos el proceso para detectar isotipos de anticuerpos en múltiples muestras de suero humano utilizando un portaobjetos de microarray impreso con subtipos antigénicos de cepas del virus de la influenza.

Ensayo de microarrays de antígenos virales para detectar isotipos de anticuerpos en suero contra antígenos virales

El video muestra un ensayo para cuantificar los virus de la influenza A y B. Este ensayo emplea la amplificación de endonucleasas con cebadores específicos para la influenza y la detección de objetivos mediante sondas de balizas moleculares.

Un ensayo molecular para cuantificar los virus de la influenza A y B

Un sistema integrado de chip microfluídico termoplástico ha sido desarrollado para su uso como un diagnóstico molecular. El chip realiza la extracción de ácido nucleico, la transcriptasa inversa y la PCR. Los métodos para fabricar y ejecutar el chip se describen.

Fabricación de chips de microfluidos y método para detectar la influenza

Un microarray de la amplificación de PCR asimétrica combina la amplificación y la hibridación de microarrays en una sola cámara, lo que simplifica significativamente microarrays de flujo de trabajo para el usuario final. La simplificación de los microarrays de flujo de trabajo es un primer paso necesario para la creación de diagnósticos basados ​​en microarrays que se pueden utilizar de forma rutinaria en los entornos más bajos recursos.

Demostración de un resistente a múltiples fármacos<em&gt; Mycobacterium tuberculosis</em&gt; Microarray Amplificación

Utilizando una estrategia de microarrays de glicanos impresos, se miniaturizó un ensayo convencional de placa de 96 pocillos para analizar la avidez de hemaglutinina del virus de la influenza A y la especificidad de los receptores que contienen ácido siálico.

Un ensayo de microarrays miniaturizada glicanos para la evaluación de avidez y especificidad del virus de la gripe A Hemaglutininas

Se describe un ensayo rápido, a base de molecular Influenza A y B. El ensayo detecta la influenza cada objetivo en los 15 minutos mediante el empleo de amplificación isotérmica con cebadores específicos de la influenza, seguido de la detección de objetivos con sondas de baliza molecular. El ensayo de la gripe A y B es fácil de usar y requiere práctica en un mínimo de tiempo para llevar a cabo.

Detección Molecular rápida y diferenciación de virus gripales A y B

Corriente de multiplexado de diagnóstico para detectar los Zika, chikungunya y dengue virus requieren preparación compleja y costosa instrumentación y son difíciles de usar en entornos de bajos recursos. Se muestra un diagnóstico que utiliza amplificación isotérmica con sondas desplazable filamento blanco específico para detectar y diferenciar estos virus con alta sensibilidad y especificidad.

La amplificación isotérmica multiplexada basado en plataforma de diagnóstico para detectar Zika, Chikungunya y Dengue 1

Presentamos un protocolo para el uso de un microarray proteico construido mediante la impresión de antígenos de la gripe en diapositivas recubiertas de nitrocelulosa para sondear simultáneamente el suero de múltiples anótipos de anticuerpos contra más de 250 antígenos de diferentes cepas de virus, por lo tanto permitiendo la medición de la amplitud de los anticuerpos séricos a través de los subtipos de virus.

Uso de un microarreglo antigonagen antigripal para medir la amplitud de los anticuerpos séricos a través de los subtipos de virus

Aquí se presenta un protocolo para un enfoque de imágenes de fluorescencia, multiplex immunofluorescent cell-based detection of DNA, RNA y protein (MICDDRP), un método capaz de la visualización simultánea de fluorescencia unicelular de proteínas virales y ácidos nucleicos de diferente tipo y varamiento. Este enfoque se puede aplicar a una amplia gama de sistemas.

Imágenes de fluorescencia multiplexada de una sola célula para visualizar ácidos nucleicos y proteínas virales y monitorear el VIH, el HTLV, el VHB, el VHC, el virus del Zika y la infección por influenza

Aprende a detectar subtipos virales de influenza mediante el método ampliPHOX colorimétrico con microarrays de ADN. Esta técnica de fotopolimerización ofrece resultados visibles rápidos y económicos para diagnóstico viral.

ampliPHOX colorimétrico de detección de un microarray de ADN para la influenza

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