Name: Modelo de ratón de la oclusión arteria cerebral media (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-02-13T17:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 43 s
Description: Aprende el modelo de oclusión de la arteria cerebral media en ratones mediante filamento intraluminal. Este protocolo quirúrgico permite inducir isquemia focal reproducible sin craneotomía y evaluar el infarto con tinción de TTC.

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Este trabajo fue apoyado por el NIH subvención NS057195, premio UCSF REAC, y Kent State University fondo inicial de WH Chou.

1. Método MCAO Este protocolo fue aprobado por el Comité Institucional y los Comités de Uso de la UCSF y la Universidad Estatal de Kent, y se rige por los Institutos Nacionales de Salud directrices para el uso de animales de experimentación. <ol></ol><ol><li> Cortar una sutura monofilamento 5-0 (Harvard Apparatus, Holliston, MA) en 20 segmentos mm. Alrededor de la punta de cada segmento por calentamiento cerca de un cauterizador (Braintree Scientific, Inc., Boston, MA). Mida el diámetro de la punta con un micrómetro (Applied Image Inc., Rochester, NY). Nosotros utilizamos una sutura con un diámetro de la punta final de 0,21-0,22 mm para un ratón con el peso corporal de 25 a 30 g. </li><li> Esterilizar todos los instrumentos quirúrgicos en autoclave (mínimo 121 ° C, 15 PSI, durante 15 minutos). Desinfectar la mesa de cirugía y el equipo asociado con etanol al 70%. </li><li> Anestesiar a un 8-12 semanas de edad del ratón (25-30 g) con 5% de isoflurano (Aerrane, Baxter, Deerfield, IL) en el 30% O 2 / 70% N 2 O con el sistema V-10 Anestesia (VetEquip, Inc ., Pleasanton, CA). Después de la inducción de la anestesia, reducir el nivel de isoflurano y mantenerlo en el 1,5%. </li><li> Coloque el ratón en la posición en decúbito supino sobre una almohadilla térmica. Insertar una sonda rectal, y vigilar y mantener la temperatura corporal entre 36,5 a 37,5 ° C con el TR-200 sistema de temperatura homeotermos (Fine Ciencia Tools Inc., Foster City, CA). </li><li> Afeitarse la piel en la región del cuello ventral con una maquinilla eléctrica (Braintree Científica) para exponer la piel. La desinfección de la zona quirúrgica con tres aplicaciones de etanol al 70%. </li><li> Bajo un microscopio estéreo de disección (Nikon, Japón), haga una incisión de 1 cm de largo la línea media del cuello. Utilice separadores (Braintree Scientific) para exponer el campo quirúrgico e identificar la arteria carótida común (CCA), arteria carótida externa (ACE), y la arteria carótida interna (ICA). Diseccionar cuidadosamente las arterias libres de alrededor de los nervios y la fascia. </li><li> Diseccionar la ECA más distal y la coagulación de la ECA y su arteria tiroidea superior (STA) rama con un coagulador bipolar (Howard Instrument Inc., Tuscaloosa, AL). Cortar la CEPA y la STA en el segmento de coagulación. </li><li> Vagamente eliminatoria a doble 8-0 suturas de seda alrededor del muñón ECA. Aplique una pinza vascular (Herramientas de Bellas Ciencia) en la bifurcación de la CCA en el Tribunal de Cuentas y de la ACI. </li><li> Haga una pequeña incisión en el extremo de la CEPA muñón con unas tijeras de primavera Vannas estilo (Herramientas de Bellas Ciencia). Medir y registrar la duración de una sutura monofilamento 5-0 redondeadas en la punta. Inserte la sutura en la incisión y avanzar a la abrazadera. Apriete los dos puntos de seda alrededor de la luz lo suficiente como para asegurar al mismo tiempo preservar la movilidad de la sutura monofilamento en vivienda. </li><li> Retire la abrazadera de la bifurcación. Suavemente avanzar en la sutura de monofilamento de la luz de la ECA en el ICA para una distancia de 9.10 mm más allá de la bifurcación de la CCA para ocluir el origen de la MCA. La duración de la cirugía es de aproximadamente 30-45 min. </li><li> Sutura de la incisión en el cuello y coloque el ratón en una caja de 35 ° C de enfermería para recuperarse de la anestesia, y devolverlo a la jaula. Generalmente se tarda 5-10 minutos para los ratones a recuperarse de la anestesia. Para llevar a cabo MCAO transitorios, el investigador puede volver a anestesiar el ratón y retirar la sutura de nuevo en el tronco de la CEPA después de un período de tiempo, generalmente entre 0,5 a 2 h. </li><li> Veinticuatro horas después de la inducción de MCAO, anestesiar el ratón con isoflurano 5% y la eutanasia por dislocación cervical. Decapitar el ratón y recoger el cerebro. Cortar el cerebro coronal en cuatro rodajas de 2 mm con una matriz de cerebro (Braintree Scientific) en el hielo. Se incuban las rodajas de cerebro en el 2% de cloruro de 2,3,5-trifenil tetrazolio (TTC) (Sigma-Aldrich) en 1X PBS durante 20 minutos a temperatura ambiente para determinar el tamaño y la extensión del infarto. Fijar las rodajas de cerebro en el 10% neutral solución de formalina tamponada (Sigma-Aldrich) a 4 ° C hasta que la imagen. La extensión del infarto se puede cuantificar como se describe en el protocolo JoVe 955 ( <a href="https://www.jove.com/index/Details.stp?ID=955">https://www.jove.com/index/Details.stp?ID=955</a> ) 9. </li></ol> 2. Resultados representante <ol></ol> Los infartos generados por MCAO se ven en el cuerpo estriado y la corteza dorsolateral. El estriado es más sensible a la isquemia de la corteza cerebral. Treinta minutos de MCAO producirá un infarto sólo en el cuerpo estriado, mientras que más de una hora de MCAO dañar tanto el cuerpo estriado y la corteza. Después de 24 h MCAO permanente, el porcentaje total de infarto es de ~ 40 ± 5% del hemisferio y la tasa de mortalidad después de la cirugía es de alrededor del 10%. Se excluye a los ratones de más estudios, si se produce un sangrado excesivo durante la cirugía, el tiempo de funcionamiento supera los 90 minutos, los ratones no recuperarse de la anestesia en los 15 minutos, o la hemorragia se encuentra en las secciones de cerebro o en la base del círculo de Willis durante el examen post-mortem . jove_content "&gt; <img src="/files/ftp_upload/2761/2761fig1.jpg" alt="Figura 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 1"> Figura 1. Imágenes representativas de las secciones de cerebro TTC-manchada (nivel coronal 1-4) después de 24 h de MCAO permanente. En el tejido vivo TTC es enzimáticamente reducido por deshidrogenasas de 1,3,5-triphenylformazan (TPF), que es de color rojo, mientras que en las áreas necróticas sigue siendo blanco debido a la ausencia de actividad enzimática tales. Por lo tanto, el área de infarto se puede identificar por su color blanco debido a la falta de conversión de TTC para TPF. Nota: TTC es un tanto calor y la luz inestable para proteger a las secciones teñidas de luz y calor tanto como sea posible.

<ol><li>Howard, G., Howard, V. J. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aHoward%2C+G+%22Distribution+of+stroke%3A+hetrogeneity+of+stroke+by+age%2C+and+sex%22">Distribution of stroke: hetrogeneity of stroke by age, and sex</a>. , Elsevier Inc. New York. 3-12 (2004).</li>
<li>Thom, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Heart+disease+and+stroke+statistics--2006+update%3A+a+report+from+the+American+Heart+Association+Statistics+Committee+and+Stroke+Statistics+Subcommittee%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Heart disease and stroke statistics--2006 update: a report from the American Heart Association Statistics Committee and Stroke Statistics Subcommittee.</a> Circulation. 113, e85-e151 (2006).</li>
<li>Mohr, J. P. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aMohr%2C+JP+%22Middle+cerebral+artery+disease%22">Middle cerebral artery disease</a>. , Elsevier Inc. New York. 123-166 (2004).</li>
<li>Longa, E. Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reversible+middle+cerebral+artery+occlusion+without+craniectomy+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Stroke%22%5BJournal%5D)">Reversible middle cerebral artery occlusion without craniectomy in rats.</a> Stroke. 20, 84-91 (1989).</li>
<li>Chou, W. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neutrophil+protein+kinase+Cdelta+as+a+mediator+of+stroke-reperfusion+injury%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Clin.+Invest%22%5BJournal%5D)">Neutrophil protein kinase Cdelta as a mediator of stroke-reperfusion injury.</a> J. Clin. Invest. 114, 49-56 (2004).</li>
<li>Hudgins, W. R., Garcia, J. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+effect+of+electrocautery%2C+atmospheric+exposure%2C+and+surgical+retraction+on+the+permeability+of+the+blood-brain-barrier%5BTitle%5D)+AND+%22Stroke%22%5BJournal%5D)">The effect of electrocautery, atmospheric exposure, and surgical retraction on the permeability of the blood-brain-barrier.</a> Stroke. 1, 375-380 (1970).</li>
<li>Carmichael, S. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rodent+models+of+focal+stroke%3A+size%2C+mechanism%2C+and+purpose%5BTitle%5D)+AND+%22NeuroRx%22%5BJournal%5D)">Rodent models of focal stroke: size, mechanism, and purpose.</a> NeuroRx. 2, 396-409 (2005).</li>
<li>Durukan, A., Tatlisumak, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Acute+ischemic+stroke%3A+overview+of+major+experimental+rodent+models%2C+pathophysiology%2C+and+therapy+of+focal+cerebral+ischemia%5BTitle%5D)+AND+%22Pharmacol.+Biochem.+Behav%22%5BJournal%5D)">Acute ischemic stroke: overview of major experimental rodent models, pathophysiology, and therapy of focal cerebral ischemia.</a> Pharmacol. Biochem. Behav. 87, 179-197 (2007).</li>
<li>Taniguchi, H., Andreasson, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+hypoxic-ischemic+encephalopathy+model+of+perinatal+ischemia%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">The hypoxic-ischemic encephalopathy model of perinatal ischemia.</a> J Vis Exp. , (2008).</li>
</ol>

No tenemos ningún interés en conflicto potencial de revelar.

MCAO en ratones se utiliza comúnmente para modelo de isquemia cerebral focal en los seres humanos. El uso de ratones para los estudios de tiempos cada vez más frecuente debido a la disponibilidad de las cepas de transgénicos y knock-out. Hay algunos detalles fundamental tener en cuenta en el protocolo: <ol><li> Es esencial para mantener la temperatura del cuerpo del ratón durante la cirugía y antes de que se recupere completamente de la anestesia. La temperatura corporal tiene efectos sobre la extensión del infarto, disminuye la hipotermia y la hipertermia aumenta el tamaño del infarto. </li><li> Mientras que la exposición y el aislamiento de la CCA y la CEPA, evitar daños en el nervio vago cerca y la tráquea, lo que podría aumentar el tamaño del infarto y la viabilidad de disminuir. </li><li> Nunca introduzca la sutura monofilamento de más de 10 mm de paso de la bifurcación. Una sutura insertado demasiado lejos puede perforar la arteria cerebral anterior y el resultado de una hemorragia cerebral. A la resistencia se puede sentir cuando la sutura se avanza unos 9-10 mm más allá del punto de bifurcación. Si esto ocurre, el investigador debe detener el avance de la sutura y confirmar la distancia. </li></ol>

<table><tbody><tr><td>Isoflurano</td><td>Producto químico</td><td>Baxter Internationl Inc.</td><td>95045-588</td><td></td></tr><tr><td>Sistema de anestesia V-10</td><td>Equipo</td><td>VetEquip</td><td>901807</td><td></td></tr><tr><td>Controlador de temperatura TR-200</td><td>Equipo</td><td>Fine Science Tools</td><td>21060</td><td></td></tr><tr><td>Afeitadora eléctrica</td><td>Equipo</td><td>Braintree Scientific, Inc.</td><td>CLP-9931</td><td></td></tr><tr><td>Micróscopio de disección</td><td>Equipo</td><td>Nikon Instruments</td><td>SMZ745T</td><td></td></tr><tr><td>Sistema de retractor</td><td>Equipo</td><td>Braintree Scientific, Inc.</td><td>ACD-014</td><td></td></tr><tr><td>Coagulador bipolar</td><td>Equipo</td><td>Howard Instrument</td><td>64000</td><td></td></tr><tr><td>Sutura de seda</td><td>Material</td><td>Harvard Apparatus</td><td>510479</td><td></td></tr><tr><td>Sutura monofilamento</td><td>Material</td><td>Harvard Apparatus</td><td>723351</td><td></td></tr><tr><td>Pinza vascular</td><td>Equipo</td><td>Fine Science Tools</td><td>00396-01</td><td></td></tr><tr><td>Tijeras de Vannas</td><td>Equipo</td><td>Fine Science Tools</td><td>15000-08</td><td></td></tr><tr><td>Matriz cerebral</td><td>Equipo</td><td>Braintree Scientific, Inc.</td><td>BS-2000C</td><td></td></tr><tr><td>Cloruro de 2,3,5-trifeniltetrazolio</td><td>Producto químico</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T8877</td><td></td></tr><tr><td>Formalina tamponada neutra al 10 %</td><td>Producto químico</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>HT5011</td><td></td></tr></tbody></table>

modelo de ratón de la oclusión arteria cerebral media

Mouse Model of Middle Cerebral Artery Occlusion

El accidente cerebrovascular es la más común enfermedad neurológica mortal en los Estados Unidos 1. La mayoría de los accidentes cerebrovasculares (88%) son el resultado de la obstrucción de los vasos sanguíneos en el cerebro (apoplejía isquémica) 2. Como la mayoría de los accidentes cerebrovasculares isquémicos (80%) se producen en el territorio de la arteria cerebral media (ACM) 3, muchos modelos animales tiempos que se han desarrollado se han centrado en esta arteria. El modelo de monofilamento intraluminal de arteria cerebral media oclusión (MCAO) consiste en la inserción de un filamento de cirugía en la arteria carótida externa y los hilos que a la arteria carótida interna (ACI) hasta que la punta ocluye el origen de la MCA, dando lugar a un cese del flujo sanguíneo e infarto cerebral posterior en el territorio de la ACM 4. La técnica puede ser utilizada para modelar la oclusión permanente o transitoria 5. Si la sutura se retira después de un intervalo determinado (30 min, 1 h, o h 2), se logra la reperfusión (transitoria MCAO), si el filamento se deja en su lugar (24 h) el procedimiento es adecuado como un modelo de permanente MCAO . Esta técnica no requiere la craniectomía, un procedimiento neuroquirúrgico para eliminar una parte del cráneo, que puede afectar la presión intracraneal y la temperatura 6. Se ha convertido en el método más frecuentemente utilizado para imitar permanentes y transitorios de isquemia cerebral focal en ratas y ratones 7,8. Para evaluar la extensión del infarto cerebral, que mancha las secciones de cerebro con cloruro de 2,3,5-trifenil tetrazolio (TTC) para identificar el tejido cerebral isquémico 9. En este vídeo, se demuestra el método MCAO y la determinación del tamaño del infarto por tinción con TTC.

Se demuestra en el video de un método para producir una oclusión de arteria cerebral media en ratones adultos con un monofilamento intraluminal. También mostrará cómo evaluar la extensión del infarto cerebral por el cloruro de 2,3,5-trifenil tetrazolio (TTC) tinción.

Modelo de ratón de la oclusión arteria cerebral media

El accidente cerebrovascular es la enfermedad neurológica mortal más común en los Estados Unidos 1. La mayoría de los accidentes cerebrovasculares (88 %) son consecuencia de la obstrucción de los vasos sanguíneos en el...

Hola, mi nombre es Terrence Jam. Mi nombre es Hai Joe. Hoy les mostraremos cómo realizar un modelo de oclusión de la arteria cerebral media en ratón.Así que comencemos. Este experimento comienza con la preparación de la sutura. Empiece cortando la sutura en trozos de 20 milímetros.A continuación, redondee la punta acercando la sutura a un cauterizador. Posteriormente, mida la punta de la sutura. Ahora estamos listos para comenzar la cirugía con la mascarilla colocada sobre su espalda.Realice una incisión a lo largo de la línea media. Utilice pinzas para exponer la AEC. A lo largo de la AEC hay muchas ramas.Una de estas ramas es la arteria tiroidea superior (STA). La STA debe coagularse con pinzas bipolares. A continuación, la STA debe seccionarse para permitir una mejor aislamiento de la arteria carótida externa (ECA).A continuación, se coagula la AEC y se posiciona lo más alejada posible de la ACC. En este momento, puede ser conveniente aislar la AEC para obtener un mejor acceso. Luego, se atan flojamente dos suturas alrededor de la AEC a pocos milímetros de distancia entre sí.Aplique la pinza en la bifurcación de la ACC hacia la ACE y la ACI. Luego, proceda a cortar la punta del muñón de la ACE. A continuación, reposicione la ACE para alinearla con la ACI.Esto permite que la sutura tenga una entrada continua desde la AEC hasta la AIC. Mida la longitud total de la sutura antes de la inserción. Introduzca la sutura en la abertura hecha al cortar el muñón de la AEC.Mientras la sutura pasa el nudo distal, asegure el nudo apretándolo. A continuación, retire la pinza e inserte la sutura más profundamente en la ECA. Mientras la sutura pasa el nudo proximal, asegure el nudo apretándolo.Después de asegurar ambos nudos, inserte cuidadosamente la sutura a lo largo de la arteria hasta pasar entre nueve y diez milímetros de sutura. El punto de bifurcación, esto puede hacerse restando la longitud de la sutura hasta el punto de bifurcación de la longitud total de la sutura. A medida que la sutura llega al origen de la MCA.La ACM se ocluye. Después de 24 horas, se sacrifican los animales y se aísla el cerebro. Para la tinción con TTC, el cerebro aislado se coloca en un molde y se corta con una cuchilla de afeitar.Luego, el cerebro se coloca en TTC al 2% durante 20 minutos a temperatura ambiente. Finalmente, el cerebro se fija, de forma neutra y tamponada, durante la noche.La preparación de la sutura es un proceso delicado. A continuación se presentan algunos consejos útiles. Coloque la sutura y el cauterizador de la siguiente manera.Luego, manteniendo el cauterizador en posición fija, acerque lentamente la sutura. A continuación, mida la sutura para asegurarse de que tenga el tamaño adecuado. El tamaño de la sutura que utilizamos en este experimento es de aproximadamente 0,21 a 0,22 milímetros.Para comenzar la cirugía, coloque la mascarilla en posición supina e induzca la anestesia con 30% de oxígeno y 70% de nitrógeno. Realice una incisión a lo largo de la línea media y luego coloque los retractores para ampliar el acceso a la zona. Debe verse así.Separar el tejido con la pinza cuidadosamente. Luego exponer y aislar la AEC con la pinza; en el proceso de aislamiento de la AEC, la AST debe coagularse y cortarse. Esto permite aislar un fragmento más largo de AEC.A continuación, la AEC debe coagularse con la ayuda de fórceps bipolares. Tras la coagulación, hay que cortar la AEC. Luego, aislar la AEC y colocar dos suturas alrededor de esta, aproximadamente a unos pocos milímetros de distancia entre sí. El resultado debe tener un aspecto similar a este.Ahora aplique la pinza en la bifurcación de la CCA a la ICA y la ECA. Asegúrese de que la pinza obstruya completamente el flujo sanguíneo hacia la ECA. Luego, coloque una pinza en el extremo del muñón de la ECA.Mida la sutura antes de la inserción, tras realizar una abertura en la ECA. Introduzca la sutura y cierre la abertura más allá del nudo distal. Una vez que la sutura haya pasado el nudo distal, apriete el nudo.A continuación, retire la pinza. Después de verificar que el nudo distal esté seguro, introduzca la sutura más allá del nudo proximal a lo largo de la ECA. A continuación, apriete el nudo proximal.Ahora inserte cuidadosamente la sutura a lo largo de la ECA hacia la ICA. Continúe insertando la sutura por la ICA hasta que la sutura haya avanzado entre nueve y diez milímetros más allá del punto de bifurcación. Esto puede hacerse restando la longitud de la sutura hasta el punto de bifurcación de la longitud total de la sutura.A continuación, corte el punto de manera que no dañe el tejido circundante. Luego, cierre la incisión con puntos y permita que el ratón se recupere. Prepárese para la tinción con TTC 24 horas después de la cirugía.Comience sacrificando el ratón mediante dislocación cervical. A continuación, aísle el cerebro del cráneo y colóquelo en un molde. Luego córtelo con una cuchilla de afeitar y tiña el cerebro en TTC al 2% durante 20 minutos a temperatura ambiente.Luego, fije durante toda la noche y al 10 % amortiguado neutro para melina. Eso es todo. Gracias por ver y buena suerte con sus experimentos.

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Investigación

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Oclusión filamentosa de la arteria cerebral media es un modelo común para el estudio de ACV isquémico en los ratones.

Modelado de accidente cerebrovascular en ratones - Oclusión arteria cerebral media con el modelo de filamento

El intraluminal de arteria cerebral media oclusión (MCAO) es el modelo más empleado entre los modelos experimentales de ictus isquémico. Aquí vamos a demostrar todo el modelo en detalle con la guía de la flujometría láser Doppler, y sus resultados representativos.

Intraluminal la arteria cerebral media de oclusión (MCAO) Modelo para el ictus isquémico con Orientación flujometría láser Doppler en ratones

El medio de oclusión intraluminal modelo cerebral en ratones se presentan en la presente memoria. La extensión del infarto cerebral se evaluó mediante una puntuación neurológica y tinción con violeta de cresilo, una alternativa a la tinción con TTC, que ofrece la gran ventaja de prueba en paralelo marcadores de interés muchos.

Modelo de ratón de MCAO intraluminal: Evaluación del infarto cerebral mediante tinción con violeta de cresilo

Varios modelos murinos de oclusión de la arteria cerebral media (MCAO) son ampliamente utilizados en la investigación experimental cerebro. Aquí, nos demuestran el modelo de transcraneal permanente MCAO distal que produce infarto cortical consistente de un tamaño correspondiente a los daños impuesta por la mayoría de los accidentes cerebrovasculares isquémicos humanos.

Carrera Modelado en ratones: Coagulación permanente de la arteria cerebral media Distal

Un modelo murino de isquemia-reperfusión cerebral es establecido para investigar la patofisiología del accidente cerebrovascular. Distal, ligar la arteria cerebral media derecha y la arteria carótida común derecha y restablecer el flujo sanguíneo después de 10 o 40 min de isquemia.

Oclusión de los vasos dos ratón modelo de isquemia-reperfusión Cerebral

Diferentes modelos de oclusión de la arteria cerebral media (MCAo) se utilizan en la investigación experimental del accidente cerebrovascular. Aquí, se describe un modelo experimental de accidente cerebrovascular de MCAo transitorio a través de la arteria carótida externa (ECA), que tiene como objetivo imitar el accidente cerebrovascular humano, en el que el trombo cerebrovascular se elimina debido a la lisis o terapia espontánea del coágulo.

Modelado del accidente cerebrovascular en ratones: oclusión transitoria de la arteria cerebral media a través de la arteria carótida externa

Este protocolo demuestra un modelo único de brazada de ratón con un infarto de tamaño medio y una excelente tasa de supervivencia. Este modelo permite a los investigadores preclínicos de accidentes cerebrovasculares extender la duración de la isquemia, utilizar ratones de edad avanzada y evaluar los resultados funcionales a largo plazo.

Un modelo de oclusión transcraneal modificado de la arteria cerebral media para estudiar los resultados del accidente cerebrovascular en ratones ancianos

Este protocolo describe el modelo de isquemia cerebral focal transitoria en ratones a través de la oclusión intraluminal de la arteria cerebral media. Además, se muestran ejemplos de evaluación de resultados mediante resonancia magnética y pruebas de comportamiento.

Modelo de oclusión transitoria de la arteria cerebral media de accidente cerebrovascular

En este trabajo, presentamos un protocolo para establecer un modelo de oclusión distal de la arteria cerebral media (dMCAO) mediante electrocoagulación transcraneal en ratones C57BL/6J y evaluamos el comportamiento neurológico y las características histopatológicas posteriores.

Inducción de ictus isquémico agudo en ratones mediante la técnica de oclusión de la arteria media distal

El protocolo actual describe un modelo de rata de oclusión/reperfusión de la arteria cerebral media que preserva la estructura anatómica de los vasos cerebrales sin causar daño.

Un modelo en ratas de oclusión/reperfusión de la arteria cerebral media sin dañar la estructura anatómica de los vasos cerebrales

El objetivo de este estudio fue establecer un método reproducible para realizar una craneectomía seguida de una oclusión permanente y selectiva de la arteria cerebral media en ratas, para su aplicación en estudios experimentales de déficits de memoria motora y espacial.

Oclusión selectiva y permanente de la arteria cerebral media en ratas: un enfoque experimental para estudiar déficits de memoria motora y espacial

Aprende el modelo de oclusión de la arteria cerebral media en ratones mediante filamento intraluminal. Este protocolo quirúrgico permite inducir isquemia focal reproducible sin craneotomía y evaluar el infarto con tinción de TTC.

Modelo de ratón de la oclusión arteria cerebral media

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